Summary

Demonstrerer en multiresistent<em> Mycobacterium tuberculosis</em> Amplification Mikromatrise

Published: April 25, 2014
doi:

Summary

En forsterkning microarray kombinerer asymmetrisk PCR forsterkning og microarray hybridisering til en enkelt kammer, som i betydelig grad strømlinjemicroarray arbeidsflyt for sluttbrukeren. Forenkling microarray arbeidsflyt er et nødvendig første skritt for å skape microarray-baserte diagnostikk som kan brukes rutinemessig i lavere ressursmiljøer.

Abstract

Forenkling microarray arbeidsflyt er et nødvendig første skritt for å skape MDR-TB microarray-baserte diagnostikk som kan brukes rutinemessig i lavere ressursmiljøer. En forsterkning microarray kombinerer asymmetrisk PCR forsterkning, target størrelse valg, target merking, og microarray hybridisering innen en enkelt løsning og inn i en enkelt microfluidic kammer. En gruppebehandling metoden er demonstrert med en 9-plex asymmetrisk mester mix og lav tetthet gel element microarray for genotyping multiresistent Mycobacterium tuberculosis (MDR-TB). Protokollen er beskrevet her kan være ferdig i 6 timer og gi korrekt genotyping med minst 1000 celle ekvivalenter av genomisk DNA. Innlemming on-chip vasketrinn er mulig, noe som vil føre til en helt lukket fragment fremgangsmåte og et system. Omfanget av multipleksing med en forsterkning microarray er slutt begrenset av antall primer parene som kan kombineres til en enkelt master mix og likevel oppnå ønsket følsomhet og spesifisitet resultattall, snarere enn antall sonder som er immobilisert i matrisen. På samme måte kan den totale analysetiden forkortes eller forlenges avhengig av den spesifikke tiltenkte bruk, problemstilling, og ønskede deteksjonsgrenser. Likevel, den generelle tilnærmingen betydelig strømlinjemicroarray arbeidsflyt for sluttbrukeren ved å redusere antall manuelt intensive og tidkrevende behandlingstrinn, og gir en forenklet biokjemisk og microfluidic banen for å oversette microarray-baserte diagnostikk i rutinemessig klinisk praksis.

Introduction

Tidlig tilfelle oppdagelse og rask behandling er ansett som de mest effektive kontrollstrategier for å redusere Mycobacterium tuberculosis (MTB) overføring ett, og det er nå bred enighet i TB fellesskap som et poeng av omsorg (POC) eller i nærheten av POC test for å samtidig diagnostisere tuberkulose og legemiddelresistens (DR) er nødvendig. Teknologier som Cepheid største GeneXpert og andre nukleinsyre-amplifikasjon tester redusere tiden til diagnose for mange TB-pasienter, og gir en hurtig avlesing som indikerer resistens overfor rifampicin eller utvalgte mutasjoner som gir resistens til andre første eller andre medikamenter 2. Selv om sanntids-og isotermisk nukleinsyre-amplifikasjon testene er utformet for å identifisere medikament-resistente mutasjoner som fører til MDR-TB, er spekteret av mutasjoner de registrerer ofte utilstrekkelig til å utforme en individuell medikamentregime som svarer til den legemiddelresistens profilen av pasienten, og tekniske begrensninger knyttettil optisk cross-talk eller kompleksiteten av forsterkning og rapporterings kjemi 3 til 7 mai begrense antall loci eller mutasjoner som blir funnet. Dermed er sporingsteknologien med høyere multipleksing kapasitet som kreves for å løse kjente hull i MDR-TB POC diagnostikk.

Mikromatriser og WHO-godkjent Hain linjen prØveassays kan adressere "multiple genet, flere mutasjoner" utfordring å diagnostisere MDR-TB 8-29. Dessverre er disse hybridisering-basert, multipleksede deteksjons plattformer bruker multistep, komplisert, og open-fragment protokoller som krever betydelig opplæring og kompetanse i molekylære teknikker. Forsterkningen microarray 30 er designet for å ta opp noen av disse microarray arbeidsflyt og operasjonelle hensyn. De forenkler fluidic prinsipper er å forsterke, hybridisere, og detektere nukleinsyre-mål innen en enkelt mikrofluidkammer. Brukeren introduserer nukleinsyre og forsterkning master blandes inn i et virvelkammer med en pipette og starter termisk sykling protokollen. For satsvis behandling metode som er vist her, er mikromatriser deretter vasket i bulkløsning, tørket og fotografert. Denne studien viser funksjonaliteten til en forsterkning microarray ved hjelp av en MDR-TB microarray test for rpoB (30 mutasjoner), katG (2 mutasjoner), Inha (4 mutasjoner), rpsL (2 mutasjoner), embB (en mutasjon), IS1245, IS6110 , og en intern forsterkning og hybridisering kontroll. Minst en matchende par av microarray prober (villtype (WT) og mutant enkelt-nukleotid (MU)) er inkludert for hver mutasjon av interesse. Rensede nukleinsyrer fra multi-legemiddelresistent M. tuberkulose er fra TDR Tuberkulose Strain Bank 31. Gel element mikromatriser er fremstilt på glass-substrater ved kopolymerisasjon i det vesentlige som beskrevet andre steder 32, bortsett fra at vi bruker 4% monomer og 0,05 mM av hver sonde i polymerisasjonskatalysatorenasjon blanding. Matriser er omgitt med en 50 ml pakning før bruk. Etter termisk sykling, hybridisering, og vasketrinn, er forsterkning mikromatriser avbildes på en Akonni bærbar analysator. Bakgrunn-korrigert, integrerte signalintensitet er hentet fra den rå. Tif bilder ved hjelp av en fast sirkel algoritme. Støy for hver gel element beregnes som tre ganger standardavviket for de lokale spot-bakgrunn. Genet mål er vanligvis betraktet påvisbare for signal til støy-forhold (SNR) verdier ≥ 3. For å bestemme nærvær eller fravær av en spesifikk mutasjon i hvert gen eller kodon, er en diskriminant forhold beregnet fra SNR verdiene som (WT-MU) / (WT + MU). Diskriminant forholdstall <0 er en indikasjon på en medikamentresistens-mutasjonen ved locus, mens forholdstall> 0 er beskrivende for villtype-sekvensen.

Protocol

For laboratorier som følger universelle forholdsregler PCR, er det operasjonelt mer effektivt å inkludere flere forsterkning mikromatriser og pakninger per substrat og vaske alle forsterkning mikromatriser samtidig i en bulk container, som beskrevet her. Forbruks formater er tilgjengelige for å utføre post-forsterkning microarray vasketrinn i en helt lukket, lukket fragment test, som rapportert andre steder 30,33. En. Setup Ekstraher og rense nukleinsyrer fra prøve…

Representative Results

Kvalitativ bildeanalyse kan gi innsikt i kilder til eksperimentell støy eller variasjon som er utfordrende å identifisere i datatabeller generert av automatisert bildeanalyse programvare. Dermed kan det være nyttig å visuelt konstatere at 1) alle gel elementer er intakt og uskadet, 2) den globale bakgrunnen er fri fra fluorescerende gjenstander som kan påvirke enkelte signal til støy-forhold () verdier SNR, 3) det er ingen bevis for bobledannelse eller ujevn forsterkning / hybridisering tvers over matrisen, og 4) …

Discussion

Omfanget av multipleksing med en forsterkning microarray har sin endelige diktert av effektiviteten av PCR multipleks asymmetrisk, ikke microarray. I vår erfaring, kan 10-12 unike primer parene lett multiplekset i en forsterkning microarray-format. Konvensjonelle primer og probe design kriterier gjelder derfor nye analyser, bortsett fra at man trenger også å vurdere mulige interaksjoner mellom løsningsorientert fase nukleinsyrer og immobilisert microarray sonder, den termiske effektiviteten av termisk cycler, og son…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble støttet av National Institutes of Health (NIH) i henhold til tildelings RC3 AI089106.

MDR-TB nukleinsyrer ble gitt av FNs barnefond / FNs utviklingsprogram / Verdensbanken / World Health Organization Special Program for forskning og opplæring i tropiske sykdommer (TDR), Genève, Sveits.

Vi takker Dr. Tom Shinnick av US Centers for Disease Control and Prevention for veiledning på spesifikke gener og mutasjoner som skal inkluderes i prototype-analysen.

Materials

MDR-TB amplification microarrays, with applied gasket and pre-cut cover slips Akonni Biosystems Inquire
Multiplex PCR kit, containing 2X PCR buffer with HotStar Taq plus Qiagen #206143
Taq polymerase Qiagen #201207
RNAse-free water Qiagen #206143 
Formamide Thermo Fisher Scientific, Inc. #BP227-500
20 mg mL-1 non-acetlyated bovine serum albumin (BSA) Sigma-Aldrich #3B6917
5X concentrated MDR-TB primer mix Akonni Biosystems Inquire
500 fg uL-1 amplification and inhibition control Akonni Biosystems Inquire
20X SSPE Thermo Fisher Scientific, Inc. #BP1328-4
Triton X-100 Thermo Fisher Scientific, Inc. #BP151-500
Disinfecting Spray  Current Technologies, Inc. #BRSPRAY128
70% Isopropyl Alcohol Decon Labs, Inc. #8416
Equipment Company  Catalog Number 
Microarray imager, with automated image and data analysis software Akonni Biosystems 100-20011
Thermal cycler with flat block insert Akonni Biosystems 100-10021
High-throughput wash station and slide holder ArrayIt HTW
Dissecting forceps Thermo Fisher Scientific, Inc. #10-300
Mini Vortexer VWR #3365040
Mini-centrifuge VWR #93000-196
Airbrush Compressor Kit Central Pneumatic #95630

References

  1. Lemaire, J. -. F., Casenghi, M. New diagnostics for tuberculosis: fulfilling patient needs first. J. Int. AIDS Soc. 13, 40 (2010).
  2. World Health Organization. . Tuberculosis diagnostic technology landscape. 42, (2012).
  3. Notomi, T., Okayama, H., et al. Loop-mediated isothermal amplification of DNA. Nucl. Acids Res. 28, e63 (2000).
  4. Vincent, M., Xu, Y., Kong, H. Helicase-dependent isothermal DNA amplification. EMBO Rep. 5, 795-800 (2004).
  5. Pritchard, C. G., Stefano, J. E. Amplified detection of viral nucleic acid at subattomole levels using Q beta replicase. Ann. Biol. Clin. 48, 492-497 (1990).
  6. Compton, J. Nucleic acid sequence-based amplification. Nature. 350, 91-92 (1991).
  7. Guatelli, J. C., Whitfield, K. M., et al. Isothermal, in vitro amplification of nucleic acids by a multienzyme reaction modeled after retroviral replication. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 87, 1874-1878 (1990).
  8. Shi, X. C., Liu, X. Q., Xie, X. L., Xu, Y. C., Zhao, Z. X. Gene chip array for differentiation of mycobacterial species and detection of drug resistance. Chin. Med. J. , 3292-3297 (2012).
  9. Troesch, A., Nguyen, H., et al. Mycobacterium species identification and rifampin resistance testing with high-density DNA probe arrays. J. Clin. Microbiol. 37, 49-55 (1999).
  10. Caoili, J. C., Mayorova, A., et al. Evaluation of the TB-biochip oligonucleotide microarray system for rapid detection of rifampin resistance in Mycobacterium tuberculosis. J. Clin. Microbiol. 44, 2378-2381 (2006).
  11. Waddell, S., Laing, K., Senner, C., Butcher, P. Microarray analysis of defined Mycobacterium tuberculosis populations using RNA amplification strategies. BMC Genomics. 9, 94 (2008).
  12. Fukushima, M., Kakinuma, K., et al. Detection and identification of mycobacterium species isolates by DNA microarray. J. Clin. Microbiol. 41, 2605-2615 (2003).
  13. Park, H., Jang, H., et al. Detection and genotyping of Mycobacterium species from clinical isolates and specimens by oligonucleotide array. J. Clin. Microbiol. 43, 1782-1788 (2005).
  14. Yao, C., Zhu, T., et al. Detection of rpoB, katG and inhA gene mutations in Mycobacterium tuberculosis clinical isolates from Chongqing as determined by microarray. Clin. Microbiol. Infect. 16, 1639-1643 (2010).
  15. Sun, A. H., Fan, X. L., et al. Rapid detection of rpoB gene mutations in rif-resistant M. tuberculosis isolates by oligonucleotide microarray. Biomed. Environ. Sci. 22, 253-258 (2009).
  16. Volokhov, D. V., Chizhikov, V. E., Denkin, S., Zhang, Y. Molecular detection of drug-resistant Mycobacterium tuberculosis with a scanning-frame oligonucleotide microarray. Methods Mol. Biol. 465, 395-417 (2009).
  17. Fu, L., Shinnick, T. M. Understanding the action of INH on a highly INH-resistant Mycobacterium tuberculosis strain using Genechips. Tuberculosis. 87, 63-70 (2007).
  18. Fu, L. M., Shinnick, T. M. Genome-wide exploration of the drug action of capreomycin on Mycobacterium tuberculosis using Affymetrix oligonucleotide GeneChips. J. Infect. 54, 277-284 (2007).
  19. Denkin, S., Volokhov, D., Chizhikov, V., Zhang, Y. Microarray-based pncA genotyping of pyrazinamide-resistant strains of Mycobacterium tuberculosis. J. Med. Microbiol. 54, 1127-1131 (2005).
  20. Gryadunov, D. A., Mikhailovich, V., et al. Evaluation of hybridisation on oligonucleotide microarrays for analysis of drug-resistant Mycobacterium tuberculosis. Clin. Microbiol. Infect. 11, 531-539 (2005).
  21. Tang, X., Morrix, S. L., Langone, J. J., Bockstahler, L. E. Microarray and allele specific PCR detection of point mutations in Mycobacterium tuberculosis genes associated with drug resistance. J. Microbiol. Methods. 63, 318-330 (2005).
  22. Wade, M. M., Volokhov, D., Peredelchuk, M., Chizhikov, V., Zhang, Y. Accurate mapping of mutations of pyrazinamide-resistant Mycobacterium tuberculosis strains with a scanning-frame oligonucleotide microarray. Diagn. Microbiol. Infect. Dis. 49, 89-97 (2004).
  23. Yue, J., Shi, W., et al. Detection of rifampin-resistant Mycobacterium tuberculosis strains by using a specialized oligonucleotide microarray. Diagn. Microbiol. Infect. Dis. 48, 47-54 (2004).
  24. Kim, S. Y., Park, Y. K., et al. Evaluation of the CombiChip Mycobacteria Drug-Resistance detection DNA chip for identifying mutations associated with resistance to isoniazid and rifampin in Mycobacterium tuberculosis. Diagn. Microbiol. Infect. Dis. 54, 203-210 (2006).
  25. Brown, T. J., Herrera-Leon, L., Anthony, R. M., Drobniewski, F. A. The use of macroarrays for the identification of MDR Mycobacterium tuberculosis. J. Microbiol. Methods. 65, 294-300 (2006).
  26. Brossier, F., Veziris, N., Truffot-Pernot, C., Jarlier, V., Sougakoff, W. Performance of the genotype MTBDR line probe assay for detection of resistance to rifampin and isoniazid in strains of Mycobacterium tuberculosis with low- and high-level resistance. J. Clin. Microbiol. 44, 3659-3664 (2006).
  27. Padilla, E., Gonzalez, V., et al. Comparative evaluation of the new version of the INNO-LiPA Mycobacteria and GenoType Mycobacterium assays for identification of Mycobacterium species from MB/BacT liquid cultures artificially inoculated with mycobacterial strains. J. Clin. Microbiol. 42, 3083-3088 (2004).
  28. Barnard, M., Gey van Pittius, N. C., et al. The diagnostic performance of the GenoType MTBDRplus Version 2 line probe assay is equivalent to that of the Xpert MTB/RIF assay. J. Clin. Microbiol. 50, 3712-3716 (2012).
  29. Sekiguchi, J. -. I., Nakamura, T., et al. Development and evaluation of a line probe assay for rapid identification of pncA mutations in pyrazinamide-resistant Mycobacterium tuberculosis strains. J. Clin. Microbiol. 45, 2802-2807 (2007).
  30. Chandler, D. P., Bryant, L., et al. Integrated amplification microarrays for infectious disease diagnostics. Microarrays. 1, 107-124 (2012).
  31. Vincent, V., Rigouts, L., et al. The TDR Tuberculosis Strain Bank: a resource for basic science, tool development and diagnostic services. Int. J. Tuberc. Lung Dis. 16, 24-31 (2012).
  32. Golova, J. B., Chernov, B. K., et al. Non-volatile copolymer compositions for fabricating gel element microarrays. Anal. Biochem. 421, 526-533 (2012).
  33. Cooney, C. G., Sipes, D., Thakore, N., Holmberg, R., Belgrader, P. A plastic, disposable microfluidic flow cell for coupled on-chip PCR and microarray detection of infectious agents. Biomed. Microdevices. 14, 45-53 (2012).
  34. Lane, S., Evermann, J., Loge, F., Call, D. R. Amplicon secondary structure prevents target hybridization to oligonucleotide microarrays. Biosens. Bioelectron. 20, 728-735 (2004).
  35. El-Hajj, H. H., Marras, S. A. E., et al. Use of sloppy molecular beacon probes for identification of Mycobacterial species. J. Clin. Microbiol. 47, 1190-1198 (2009).
  36. Boehme, C. C., Nabeta, P., et al. Rapid molecular detection of tuberculosis and rifampin resistance. N. Engl. J. Med. 363, 1005-1015 (2010).
check_url/kr/51256?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Linger, Y., Kukhtin, A., Golova, J., Perov, A., Qu, P., Knickerbocker, C., Cooney, C. G., Chandler, D. P. Demonstrating a Multi-drug Resistant Mycobacterium tuberculosis Amplification Microarray. J. Vis. Exp. (86), e51256, doi:10.3791/51256 (2014).

View Video