Summary

성인 마우스 앞니의 치아 상피 줄기 세포의 분리 및 문화

Published: May 01, 2014
doi:

Summary

지속적으로 성장 마우스 앞니는 치아 상피 줄기 세포 (DESCs)에서 치아 조직의 재생을 연구하기위한 모델을 제공합니다. 일관되고 안정적으로 앞니에서 이러한 세포를 획득하고 체외에서 그 확장을위한 강력한 시스템은 여기에보고됩니다.

Abstract

치아 재생 및 갱신 기초가되는 세포 및 분자 메커니즘을 이해하는 것은 큰 관심을 1-4의 화제가되고, 마우스의 앞니는 이러한 프로세스에 대한 모델을 제공하고있다. 이 놀라운 기관은 동물의 삶 전반에 걸쳐 지속적으로 성장하고 (혀 쪽) (입술 쪽)으로 아랫 입술과 언어 자궁 루프 (CL) 지역에 자리 성체 줄기 세포의 활성 풀에서 필요한 모든 종류의 세포를 생성합니다. 순측 CL로부터 남은 치과 줄기 세포 순측 표면에 에나멜, 치아의 외피를 생성 ameloblasts로 야기. 이 비대칭 에나멜 형성 절치 팁에서 마모를 허용하고, 근위 앞니의 원종 줄기 세포는 치아 조직이 지속적으로 보충되도록. 체외에서이 전구 또는 줄기 세포를 분리하고 성장하는 능력은 자신의 확장을 허용하고 시간과 같은 생체 내에서 달성 할 수없는 수많은 실험에 문을 엽니 다잠재적 인 줄기 세포 규제 요인 고등학교의 처리량 테스트. 여기, 우리는 설명하고 마우스 앞니의 입술 CL에서 문화 세포에 안정적이고 일관성있는 방법을 보여줍니다.

Introduction

척추 동물의 독특한 특징 중 하나는 치아의 진화이다. 분자 경로와이 기관과 관련된 형태의 전문 분야가 발달하고 진화 생물 학자 (5)에 의해를 포함하여, 여러 가지 관점에서 조사 된 바와 같이 치아는, 연구의 많은 분야에 대한 중요한 모델 시스템이되고있다. 최근 재생 의학의 필드는 모델로서 치아를 사용하여 귀중한 통찰력을 얻기 위해 시작했다. 특히, 치과 상피 줄기 세포의 발견은 중요 미리 6-13왔다.

모든 설치류는 성체 줄기 세포의 조절을 연구하기 위해 이러한 치아에게 접근 모델 시스템을 만들고, 그 성장 줄기 세포에 의해 연료가 공급되어 지속적으로 성장 앞니를 가지고있다. 유전 적 혈통 추적 실험 8,9,12,14 다음에 1970 년대, 11의 레이블 실험, DESCs은 앞니의 인접 지역에 거주하는 것을 증명하고있다. 줄기세포 입술 자궁 루프 (CL)로 알려진 추정 틈새 시장 중 입술 측면 이동 상피 구획의 자손, 그리고 대중 교통 증폭 (TA) 세포 (그림 1)라는 세포의 인구에 기여한다. 특히, DESCs는 외부 에나멜 상피 (OEE) 및 성상 세망 (SR) 8,9,14에 상주하고, 내부 에나멜 상피 (IEE)의 다음 움직임을 세포 횟수에 제한을 통해 진행 TA 세포에 상승을 제공하고 원심 앞니의 길이 (그림 1)을 따라. 마우스 앞니의 차별화 ameloblasts는 하루 (15, 16)에 약 350 ㎛의 놀라운 속도로 앞니를 따라 원심 이동을 계속합니다. 그들이 움직일 때, 세포는 성숙한 ameloblasts 및 지층 매개물 (SI) 세포로 분화. 에나멜 매트릭스의 전체 두께를 증착 한 후, ameloblasts 많은 아폽토시스를 받아야하고, 나머지 셀의 크기가 축소 및 에나멜 성숙 조절 <> 17 일 저녁을 먹다. 이러한 SR 등 순측 CL,에 다른 세포 유형의 계보는 덜 선명하고 간엽 18 및 설측 CL의 줄기 세포에 관한 데이터 만 등장하기 시작하고있다.

절치 마우스 모델을 사용하여, 그룹의 개수는 유전 경로 및 천연 줄기 세포 기반 장기 내구성에 관련된 세포 생물학적 과정을 명료하게하기 위해 노력했다. 그러나, 입술 CL은 약 5,000 일차 전지는 도전 작업을하게 마우스 앞니, 당 것으로 추정 세포의 상대적으로 적은 수를 포함합니다. 따라서, 노력은 문화에 만들어 생체 내에서 달성 할 수없는 실험적인 접근 방식에 새로운 문을 열기 위해 체외 6,16,19,20에서 이러한 세포를 확장하고 있습니다. 가장 최근의 연구는이 세포가 자기 갱신 때 배양 13 세포를 발현하는 유전자 성별 감식로 분화 할 수있는 것을 모두 보여 주었다. 여기, 우리는 일하기위한 방법을 설명하고 보여마우스 입술 CL에서 세포의 전자 신뢰할 수 있고 일관성있는 문화.

Protocol

성인 마우스 1. 해부 낮은 헤미 – 턱 이전에이 프로토콜을 수행하기에 필요한 기관의 승인을 받아야하고 모든 동물 보호 지침을 준수해야합니다. 표준 IACUC이 절차를 승인하여 동물을 안락사. 이 작품에 대한 CO 2 질식 자궁 전위 다음에 사용되었다. OPTIONAL : 면도날을 사용하여 신체의 나머지 부분으로부터 분리 된 헤드. 목 둘레에 아랫 입술로부터 피부를 제거…

Representative Results

마우스 헤미 – 하악 하나에게 연속적 성장 앞니와 삼 뿌리 어금니 (도 1a)를 포함한다. 모든 치아는 상아질과 에나멜, 치아 크라운의 두 광물 구성 요소 (그림 1A 및 1A ')로 구성되어 있습니다. 앞니의 집은 두 개의 줄기 세포 틈새는 입술 CL 및 언어를 구사하는 CL이라고 에나멜은 입술 쪽 (그림 1A ')에 독점적으로 형성되어있다. DESCs는 앞니의 ?…

Discussion

상피 세포 40 년 전 21 ~ 24에 걸쳐 성공적으로 첫 번째 배양, 그리고 더 최근의, 상피 줄기 세포 25 ~ 27의 성공적인 분리 상피 생물학에 대한 우리의 지식을 전진했다. 우리는 성인 마우스 전치 DESCs 치과 생물학 및 에나멜 형성에 중요한 통찰력을 얻을 수있는 잠재력을 가지고 줄기 세포의 상대적 understudied 아르 집단을 분리하기위한 프로토콜을보고한다. 이 프로토콜은 처음에 모낭 <…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

저자는 DESC 문화와 초기 도움을 수수 핑 왕 감사합니다. 저자는 (OH에 MGC, K08-DE022377-02 AHJ, K12-GM081266에 K99-DE022059 및 만듭니다에 R01-DE021420) 건강의 국립 연구소에서 장학금과 보조금에 의해 부분적으로 투자됩니다.

Materials

Forceps, size 5 Fine Science Tools 11251-30 FST by Dumont, Dumoxel, 
Forceps Straight, fine, 3.5 Roboz RS5070
Razorblades Electron Microscopy Services #71960
Scalpel Handle No.3 VWR
Feather Blade No. 15 Electron Microscopy Services #72044-15 Surgical Stainless Steel
Collagenase Type-1 filtered Worthington Biochemical Corporation #4214
Insulin syringe BD #329424
Accumax EMD Millipore #SCR006
DMEM/F12 Gibco 11320-033
EGF R&D 2028-EG-200
FGF2 R&D 233-FB-025
B27 Supplement Gibco 10889-038

References

  1. Sharpe, P. T., Young, C. S. Test-tube teeth.. Sci Am. 293, 34-41 (2005).
  2. D’Souza, R. N., Klein, O. D. Unraveling the molecular mechanisms that lead to supernumerary teeth in mice and men: Current concepts and novel approaches. Cells Tissues Organs. 186, 60-69 (2007).
  3. Jernvall, J., Thesleff, I. Tooth shape formation and tooth renewal: evolving with the same signals. Development. 139, 3487-3497 (2012).
  4. Yen, A. H., Yelick, P. C. Dental Tissue Regeneration A Mini-Review. Gerontology. 57, 85-94 (2011).
  5. Jheon, A. H., Seidel, K., Biehs, B., Klein, O. D. From molecules to mastication: the development and evolution of tooth development. WIREs Dev Biol. 2, 165-182 (2013).
  6. Wang, X. P., et al. An integrated gene regulatory network controls stem cell proliferation in teeth. PLoS Biol. 5, (2007).
  7. Harada, H., et al. Localization of putative stem cells in dental epithelium and their association with Notch and FGF signaling. J Cell Biol. 147, 105-120 (1999).
  8. Juuri, E., et al. Sox2+ stem cells contribute to all epithelial lineages of the tooth via Sfrp5+ progenitors. Dev Cell. 23, 317-328 (2012).
  9. Seidel, K., et al. Hedgehog signaling regulates the generation of ameloblast progenitors in the continuously growing mouse incisor. Development. 137, 3753-3761 (2010).
  10. Smith, C. E., Warshawsky, H. Cellular renewal in the enamel organ and the odontoblast layer of the rat incisor as followed by radioautography using 3H-thymidine. Anat Rec. 183, 523-561 (1975).
  11. Smith, C. E., Warshawsky, H. Quantitative analysis of cell turnover in the enamel organ of the rat incisor. Evidence for ameloblast death immediately after enamel matrix secretion. Anat Rec. 187, 63-98 (1977).
  12. Parsa, S., et al. Signaling by FGFR2b controls the regenerative capacity of adult mouse incisors. Development. 137, 3743-3752 (2010).
  13. Chang, J. Y., et al. Self-renewal and multilineage differentiation of mouse dental epithelial stem cells. Stem Cell Res. 11, 990-1002 (2013).
  14. Biehs, B., et al. Bmi1 represses Ink4a/Arf and Hox genes to regulate stem cells in the rodent incisor. Nat Cell Biol. 15, 846-852 (2013).
  15. Hwang, W. S., Tonna, E. A. Autoradiographic Analysis of Labeling Indices and Migration Rates of Cellular Component of Mouse Incisors Using Tritiated Thymidine (H3tdr). J Dent Res. 44, 42-53 (1965).
  16. Li, C. Y., et al. E-cadherin regulates the behavior and fate of epithelial stem cells and their progeny in the mouse incisor. Dev Biol. 366, 357-366 (2012).
  17. Smith, C. E. Cellular and chemical events during enamel maturation. Crit Rev Oral Biol Med. 9, 128-161 (1998).
  18. Lapthanasupkul, P., et al. Ring1a/b polycomb proteins regulate the mesenchymal stem cell niche in continuously growing incisors. Dev Biol. 367, 140-153 (2012).
  19. Chavez, M. G., et al. Characterization of dental epithelial stem cells from the mouse incisor with two-dimensional and three-dimensional platforms. Tissue Eng Part C Methods. 19, 15-24 (2013).
  20. Kawano, S., et al. Establishment of dental epithelial cell line (HAT-7) and the cell differentiation dependent on Notch signaling pathway. Connect Tissue Res. 43, 409-412 (2002).
  21. Briggaman, R. A., Abele, D. C., Harris, S. R., Wheeler, C. E. Preparation and characterization of a viable suspension of postembryonic human epidermal cells. J Invest Dermatol. 48, 159-168 (1967).
  22. Fusenig, N. E. Isolation and cultivation of epidermal cells from embryonic mouse skin. Naturwissenschaften. 58, 421 (1971).
  23. Fusenig, N. E., Worst, P. K. Mouse epidermal cell cultures. I. Isolation and cultivation of epidermal cells from adult mouse skin. J Invest Dermatol. 63, 187-193 (1974).
  24. Rheinwald, J. G., Green, H. Serial cultivation of strains of human epidermal keratinocytes: the formation of keratinizing colonies from single cells. Cell. 6, 331-343 (1975).
  25. Barrandon, Y., Green, H. Three clonal types of keratinocyte with different capacities for multiplication. Proc Natl Acad Sci U S A. 84, 2302-2306 (1987).
  26. Blanpain, C., et al. Self-renewal, multipotency, and the existence of two cell populations within an epithelial stem cell niche. Cell. 118, 635-648 (2004).
  27. Toma, J. G., et al. Isolation of multipotent adult stem cells from the dermis of mammalian skin. Nat Cell Biol. 3, 778-784 (2001).
  28. Nowak, J. A., Fuchs, E. Isolation and culture of epithelial stem cells. Methods Mol Biol. 482, 215-232 (2009).
  29. Rheinwald, J. G., Green, H. Epidermal growth factor and the multiplication of cultured human epidermal keratinocytes. Nature. 265, 421-424 (1977).
  30. Brewer, G. J., Torricelli, J. R., Evege, E. K., Price, P. J. Optimized survival of hippocampal neurons in B27-supplemented Neurobasal, a new serum-free medium combination. J Neurosci Res. 35, 567-576 (1993).
  31. Lesuisse, C., Martin, L. J. Long-term culture of mouse cortical neurons as a model for neuronal development, aging, and death. J Neurobiol. 51, 9-23 (2002).
  32. Felszeghy, S., Suomalainen, M., Thesleff, I. Notch signalling is required for the survival of epithelial stem cells in the continuously growing mouse incisor. Differentiation. 80, 241-248 (2010).
  33. Fujimori, S., et al. Wnt/beta-catenin signaling in the dental mesenchyme regulates incisor development by regulating Bmp4. Dev Biol. 348, 97-106 (2010).
  34. Klein, O. D., et al. An FGF signaling loop sustains the generation of differentiated progeny from stem cells in mouse incisors. Development. 135, 377-385 (2008).
check_url/kr/51266?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Chavez, M. G., Hu, J., Seidel, K., Li, C., Jheon, A., Naveau, A., Horst, O., Klein, O. D. Isolation and Culture of Dental Epithelial Stem Cells from the Adult Mouse Incisor. J. Vis. Exp. (87), e51266, doi:10.3791/51266 (2014).

View Video