Summary

Выделение и Культура Стоматологическая эпителиальных стволовых клеток из взрослых мышей резца

Published: May 01, 2014
doi:

Summary

Постоянно растет резец мыши обеспечивает модель для изучения обновление тканей зуба из зубного эпителия стволовых клеток (десков). Надежная система для последовательно и надежно получения этих клеток из резца и расширение их в пробирке, как сообщается здесь.

Abstract

Понимание клеточные и молекулярные механизмы, лежащие в основе регенерации зубов и продление стала тема представляет большой интерес 1-4, а резец мыши обеспечивает модель для этих процессов. Этот замечательный орган постоянно растет в течение всей жизни животного и генерирует все необходимые типы клеток из активных пулов взрослых стволовых клеток, расположенных в его губной (к губе) и язычной (в сторону языка) шейки петли (CL) регионы. Только стоматологические стволовые клетки из губной CL привести к ameloblasts, которые генерируют эмаль, внешнее покрытие зубов, на губной поверхности. Это образование асимметричный эмаль позволяет истиранию на кончике резца, и клетки-предшественники и стволовые клетки в проксимальном резца гарантировать, что зубные ткани постоянно пополняется. Возможность изолировать и вырастить эти предшественники или стволовые клетки в пробирке позволяет их расширение и открывает двери для многочисленных экспериментов не достижимых в естественных условиях, например, чкайф пропускная тестирование регуляторных факторов потенциал стволовых клеток. Здесь мы описываем и продемонстрировать надежную и последовательный метод для культивирования клеток от губной CL резца мыши.

Introduction

Одной из уникальных характеристик позвоночных является эволюция зубов. Зуб стал важным модельной системой для многих областях исследований, как молекулярные пути и морфологические специализации, имеющих отношение к этому органу были исследованы с нескольких точек зрения, в том числе путем развития и эволюционных биологов 5. Совсем недавно, в поле регенеративной медицины начал получить ценную информацию с помощью зуб в качестве модели. В частности, открытие стоматологических эпителиальных стволовых клеток была важным шагом вперед 6-13.

Все грызуны обладают постоянно растущих резцов, чей рост подпитывается стволовых клеток, что делает эти зубы доступную модель системы для изучения регуляции взрослых стволовых клеток. Эксперименты маркировки в 1970-х годах 10,11, а затем генетической линии розыска экспериментов 8,9,12,14, показали, что десков проживают в проксимальной области резца. Стебельклеток потомство в эпителиальной отсек на губной стороны выйти из предполагаемого нише, известный как губной шейки петли (CL), и внести вклад в популяции клеток, называемых транзитных усиления (TA) клетки (рис. 1). В частности, десков проживают в наружной эмали эпителия (OEE) и звездчатого ретикулума (СР) 8,9,14, а внутренний эмаль эпителий (НВО) приводит к клеткам TA, что прогресс через ограниченное число циклов клеток, а затем ход дистально по длине резца (рис. 1). , Отличительным ameloblasts в резца мыши продолжать двигаться дистально вдоль резца на замечательной скоростью около 350 мкм в один день 15,16. Как они двигаются, клетки дифференцируются в зрелые ameloblasts и слой Intermedium (СИ) клеток. После нанесения полную толщину эмаль-матки, многие из ameloblasts апоптоз, а остальные клетки уменьшаться в размерах и регулируют созревание эмали <вир> 17. Родословная других типов клеток в губной CL, например, СР, менее ясно, и данные, касающиеся стволовых клеток в мезенхиме 18 и в языковой CL только начинают появляться.

Использование резцов модель мыши, ряд групп работали, чтобы выяснить генетические пути и биологические процессы клеток, участвующих в естественной основе клеток возобновления органов штока. Тем не менее, губной CL содержит относительно небольшое количество клеток, по оценкам, около 5000 за мыши резца, что делает работу с первичные элементы сложной. Таким образом, были предприняты усилия к культуре и расширить эти клетки в пробирке 6,16,19,20, чтобы открыть новые двери для экспериментальных подходов, которые не достижимы в естественных условиях. Самое последнее исследование продемонстрировало, что эти клетки могут как самообновлению и дифференцировке в амелогенина экспрессирующих клеток при культивировании 13. Здесь мы описываем и продемонстрировать способ-гоэ надежным и последовательным культура клеток из мыши губной CL.

Protocol

1. Препарировать Нижние Hemi-челюсти от взрослой мыши Перед выполнением этого протокола, получить необходимую институциональную одобрение и обязательно соблюдать все правила ухода за животными. Усыпить животное с использованием стандартных IACUC утвержденные процедуры. Для этой ра…

Representative Results

Мышь полуизотактическую челюсть состоит одна постоянно растет резца и три укоренившиеся моляров (рис. 1а). Все зубы состоят из дентина и эмали, двух минерализованных компонентов коронки зуба (фиг.1А и 1а '). Резца дома две стволовых клеток ниши называется губн…

Discussion

Эпителиальные клетки были впервые успешно культивируют более 40 лет назад 21-24, а в последнее время, успешный изоляция эпителиальных стволовых клеток 25-27 продвинулась наши знания о эпителиальной биологии. Мы сообщаем протокол для выделения десков резца взрослых мышей, относ?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Авторы благодарят Сю-Ping Wang и проконсультироваться с DESC культур. Авторы частично финансируется за счет стипендий и грантов от Национального института здоровья (K99-DE022059 до AHJ, К12-GM081266 в MGC, K08-DE022377-02 до О, и R01-DE021420 к ОДК).

Materials

Forceps, size 5 Fine Science Tools 11251-30 FST by Dumont, Dumoxel, 
Forceps Straight, fine, 3.5 Roboz RS5070
Razorblades Electron Microscopy Services #71960
Scalpel Handle No.3 VWR
Feather Blade No. 15 Electron Microscopy Services #72044-15 Surgical Stainless Steel
Collagenase Type-1 filtered Worthington Biochemical Corporation #4214
Insulin syringe BD #329424
Accumax EMD Millipore #SCR006
DMEM/F12 Gibco 11320-033
EGF R&D 2028-EG-200
FGF2 R&D 233-FB-025
B27 Supplement Gibco 10889-038

References

  1. Sharpe, P. T., Young, C. S. Test-tube teeth.. Sci Am. 293, 34-41 (2005).
  2. D’Souza, R. N., Klein, O. D. Unraveling the molecular mechanisms that lead to supernumerary teeth in mice and men: Current concepts and novel approaches. Cells Tissues Organs. 186, 60-69 (2007).
  3. Jernvall, J., Thesleff, I. Tooth shape formation and tooth renewal: evolving with the same signals. Development. 139, 3487-3497 (2012).
  4. Yen, A. H., Yelick, P. C. Dental Tissue Regeneration A Mini-Review. Gerontology. 57, 85-94 (2011).
  5. Jheon, A. H., Seidel, K., Biehs, B., Klein, O. D. From molecules to mastication: the development and evolution of tooth development. WIREs Dev Biol. 2, 165-182 (2013).
  6. Wang, X. P., et al. An integrated gene regulatory network controls stem cell proliferation in teeth. PLoS Biol. 5, (2007).
  7. Harada, H., et al. Localization of putative stem cells in dental epithelium and their association with Notch and FGF signaling. J Cell Biol. 147, 105-120 (1999).
  8. Juuri, E., et al. Sox2+ stem cells contribute to all epithelial lineages of the tooth via Sfrp5+ progenitors. Dev Cell. 23, 317-328 (2012).
  9. Seidel, K., et al. Hedgehog signaling regulates the generation of ameloblast progenitors in the continuously growing mouse incisor. Development. 137, 3753-3761 (2010).
  10. Smith, C. E., Warshawsky, H. Cellular renewal in the enamel organ and the odontoblast layer of the rat incisor as followed by radioautography using 3H-thymidine. Anat Rec. 183, 523-561 (1975).
  11. Smith, C. E., Warshawsky, H. Quantitative analysis of cell turnover in the enamel organ of the rat incisor. Evidence for ameloblast death immediately after enamel matrix secretion. Anat Rec. 187, 63-98 (1977).
  12. Parsa, S., et al. Signaling by FGFR2b controls the regenerative capacity of adult mouse incisors. Development. 137, 3743-3752 (2010).
  13. Chang, J. Y., et al. Self-renewal and multilineage differentiation of mouse dental epithelial stem cells. Stem Cell Res. 11, 990-1002 (2013).
  14. Biehs, B., et al. Bmi1 represses Ink4a/Arf and Hox genes to regulate stem cells in the rodent incisor. Nat Cell Biol. 15, 846-852 (2013).
  15. Hwang, W. S., Tonna, E. A. Autoradiographic Analysis of Labeling Indices and Migration Rates of Cellular Component of Mouse Incisors Using Tritiated Thymidine (H3tdr). J Dent Res. 44, 42-53 (1965).
  16. Li, C. Y., et al. E-cadherin regulates the behavior and fate of epithelial stem cells and their progeny in the mouse incisor. Dev Biol. 366, 357-366 (2012).
  17. Smith, C. E. Cellular and chemical events during enamel maturation. Crit Rev Oral Biol Med. 9, 128-161 (1998).
  18. Lapthanasupkul, P., et al. Ring1a/b polycomb proteins regulate the mesenchymal stem cell niche in continuously growing incisors. Dev Biol. 367, 140-153 (2012).
  19. Chavez, M. G., et al. Characterization of dental epithelial stem cells from the mouse incisor with two-dimensional and three-dimensional platforms. Tissue Eng Part C Methods. 19, 15-24 (2013).
  20. Kawano, S., et al. Establishment of dental epithelial cell line (HAT-7) and the cell differentiation dependent on Notch signaling pathway. Connect Tissue Res. 43, 409-412 (2002).
  21. Briggaman, R. A., Abele, D. C., Harris, S. R., Wheeler, C. E. Preparation and characterization of a viable suspension of postembryonic human epidermal cells. J Invest Dermatol. 48, 159-168 (1967).
  22. Fusenig, N. E. Isolation and cultivation of epidermal cells from embryonic mouse skin. Naturwissenschaften. 58, 421 (1971).
  23. Fusenig, N. E., Worst, P. K. Mouse epidermal cell cultures. I. Isolation and cultivation of epidermal cells from adult mouse skin. J Invest Dermatol. 63, 187-193 (1974).
  24. Rheinwald, J. G., Green, H. Serial cultivation of strains of human epidermal keratinocytes: the formation of keratinizing colonies from single cells. Cell. 6, 331-343 (1975).
  25. Barrandon, Y., Green, H. Three clonal types of keratinocyte with different capacities for multiplication. Proc Natl Acad Sci U S A. 84, 2302-2306 (1987).
  26. Blanpain, C., et al. Self-renewal, multipotency, and the existence of two cell populations within an epithelial stem cell niche. Cell. 118, 635-648 (2004).
  27. Toma, J. G., et al. Isolation of multipotent adult stem cells from the dermis of mammalian skin. Nat Cell Biol. 3, 778-784 (2001).
  28. Nowak, J. A., Fuchs, E. Isolation and culture of epithelial stem cells. Methods Mol Biol. 482, 215-232 (2009).
  29. Rheinwald, J. G., Green, H. Epidermal growth factor and the multiplication of cultured human epidermal keratinocytes. Nature. 265, 421-424 (1977).
  30. Brewer, G. J., Torricelli, J. R., Evege, E. K., Price, P. J. Optimized survival of hippocampal neurons in B27-supplemented Neurobasal, a new serum-free medium combination. J Neurosci Res. 35, 567-576 (1993).
  31. Lesuisse, C., Martin, L. J. Long-term culture of mouse cortical neurons as a model for neuronal development, aging, and death. J Neurobiol. 51, 9-23 (2002).
  32. Felszeghy, S., Suomalainen, M., Thesleff, I. Notch signalling is required for the survival of epithelial stem cells in the continuously growing mouse incisor. Differentiation. 80, 241-248 (2010).
  33. Fujimori, S., et al. Wnt/beta-catenin signaling in the dental mesenchyme regulates incisor development by regulating Bmp4. Dev Biol. 348, 97-106 (2010).
  34. Klein, O. D., et al. An FGF signaling loop sustains the generation of differentiated progeny from stem cells in mouse incisors. Development. 135, 377-385 (2008).
check_url/kr/51266?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Chavez, M. G., Hu, J., Seidel, K., Li, C., Jheon, A., Naveau, A., Horst, O., Klein, O. D. Isolation and Culture of Dental Epithelial Stem Cells from the Adult Mouse Incisor. J. Vis. Exp. (87), e51266, doi:10.3791/51266 (2014).

View Video