Summary

En analyse for Lateral Linje Regeneration i voksen sebrafisk

Published: April 08, 2014
doi:

Summary

Fordi mange sebrafisk modeller av nevrologiske og ikke-nevrologiske sykdommer er studert i voksen fisk snarere enn embryo / larver, har vi utviklet en kvantitativ lateral linje regenerativ assay som kan brukes til voksne sebrafisk sykdomsmodeller. Analysen involvert oppløsning på 1) neuromast og 2) individuelle hår cellenivå.

Abstract

På grunn av den kliniske betydningen av hørsel og balanse lidelser i mennesket, har modellorganismer som sebrafisk blitt brukt til å studere lateral linje utvikling og fornyelse. Sebrafisk er spesielt attraktivt for slike studier på grunn av sin raske utvikling tid og høy evne til reproduksjon. Hittil har sebrafisk studier av sidelinje regenerering hovedsak benyttes fisk av embryonale og larvestadiet på grunn av lavere antall neuromasts på disse stadiene. Dette har gjort kvantitativ analyse av lateral linje regenerering og / eller utvikling lettere i de tidligere utviklingsstadier. Fordi mange sebrafisk modeller av nevrologiske og ikke-nevrologiske sykdommer er studert i voksen fisk og ikke i embryoet / larver, fokuserte vi på å utvikle en kvantitativ sidelinje regenerativ analysen i voksen sebrafisk, slik at en analyse var tilgjengelig som kan brukes på strøm voksen sebrafisk sykdom modeller. Bygger på tidligere studier av Van Trump et al. 17 som beskrevet prosedyrer for ablasjon av hårcellene i voksen meksikanske blind hulefisk og sebrafisk (Danio rerio), ble analysen vår utviklet for å tillate kvantitativ sammenligning mellom kontroll og eksperimentelle grupper. Dette ble oppnådd ved å utvikle en regenerativ neuromast standard kurve basert på prosenten av neuromast tilbakekomst over en 24 timers periode etter gentamicin-indusert nekrose av hår celler i et definert område av den laterale linje. Analysen ble også konstruert for å tillate forlengelse av analysen til den enkelte hår cellespenning når en høyere oppløsning er nødvendig.

Introduction

Sidelinjen (LL) system er en mechanosensory organ finnes i både fisk og amfibier som er ansvarlig for hørsel, balanse, rheotaxis og medier atferd som for eksempel skolegang og predator unngåelse 1-5. Det er sammensatt av klynger av hårceller omgitt av støttelegemer, som begge er plassert i konstruksjoner kalles neuromasts 6. Disse neuromasts er vanligvis ordnet i vertikale linjer (kalt masker) langs lengdeaksen av legemet og hale med noen små hull ble observert i hodet av fisken. I den voksne, neuromasts er betydelig større i antall i løpet av de masker som i forhold til embryonale eller larve fisk seks. Biomedisinske studier i sebrafisk har fokusert på effekten av antibiotikabehandling, støy-indusert trauma, kronisk infeksjon, etc. på hårcellene 7,8 i et forsøk på å bedre forstå sine effekter hos mennesker.

I motsetning til de fleste virveldyr, teleosts, for eksempel sebrafisk (Danio rerio), har evnen til å regenerere tapte hårcellene. Sebrafisk er spesielt nyttige på grunn av deres raske utvikling tid og høy evne til reproduksjon. Til dags dato, men; sebrafisk studier på sidelinjen utvikling og / eller regenerering har hovedsakelig benyttet den embryonale og larvestadiet fisk på grunn av redusert antall lateral linje neuromasts som gjør det lettere å telle og analyse 6,9,10.

Men er så mange sebrafisk modeller av nevrologiske og ikke-nevrologiske sykdommer 11-16 studert i voksen fisk og ikke larvene, fokuserte vi på å utvikle en sidelinje regenerativ analysen i voksen sebrafisk ved hjelp av gentamicin (et aminoglykosid tidligere brukt i sebrafisk larver og Mer nylig brukt sammen med voksen fisk 17), slik at en analyse var tilgjengelige som kunne anvendes på aktuelle voksne sebrafisk sykdomsmodeller. Mens tidligere utgitt prosedyrer ved Van Trump et al. 17 etablerte betingelsene for hårcelle ablasjon i voksen fisk, gjorde de ikke etablere en standardkurve for neuromast regenerering som er nødvendig for kvantitativ sammenligning mellom kontroll og eksperimentelle grupper som ved bruk av transgene sebrafisk linjer eller farmakologisk indusert sykdomstilstander i sebrafisk 18. Vi har derfor fulgt prosedyrene for Van Trump et al. 17 for hårcelle ablasjon, men bygget på deres arbeid for å etablere en standardkurve for neuromast regenerering slik at etterforskerne å bruke våre data når man sammenligner kontroll og eksperimentelle grupper som med voksne sebrafisk sykdom modeller . Analysen ble også konstruert for å tillate forlengelse av analysen til den enkelte hår cellen når en høyere oppløsning er nødvendig.

Protocol

Alle prosedyrer er utført i henhold til retningslinjene som er beskrevet i "Principles of Laboratory Animal Care" (National Institutes of Health publikasjon ingen. 85-23, revidert 1985) og den godkjente Rosalind Franklin Institutional Animal Care og bruk komité dyr protokollen 08-19. En. Gentamicin-induksjon av Hair cellenekrose Forbered gentamicin sulfat i normal saltoppløsning ved en endelig konsentrasjon på 0,004% (4,32 mM). Plasser voksen fisk (D. r…

Representative Results

Optimalisering av prosedyrene for å kvantifisere neuromast regenerering av sidelinjen i voksen sebrafisk. De neuromasts av larvesebrafisk er lett kvantifiserbare; har imidlertid den laterale linje av den voksne sebrafisk et mye større antall neuromasts pr søm gjør kvantitative analyser vanskeligere 6,17,19,20. Som vist i figur 1A, har hodet en betydelig høyere antall neuromasts i forhold til enten den midtre del eller hale; med hale område s…

Discussion

Basert på den omfattende mengde litteratur som har blitt etablert for analyse av sidelinje (LL) regenerering i embryo-og larvesebrafisk 8,24,25, målet med vår studie var å utvikle en kvantitativ analyse for sidelinje regenerering i sebrafisk som kunne påføres sykdom modeller som er best studert i voksen fisk. Vi fant ut at visse kritiske punkter er viktig når du søker prosedyrer utviklet for embryo / larve fisk til voksen fisk. Den viktigste av disse punkter betraktes: 1) antall laterale linje neuroma…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The authors have nothing to disclose.

Materials

Gentamicin sulfate solution (50mg/ml) Sigma Aldrich G1397
2 Phenoxyethanol Sigma Aldrich P1126
4-4-diethylaminostryryl-N-methylpyridinium iodide (4-Di-2-Asp) Aldrich D-3418 485 nm excitation λ and 603 nm emission λ
in methanol
6 well plates Mid Sci TP92006
Petri Dishes Fisher Scientific 08-757-13
Glass Bottom Microwell Dishes Matek Corporation P35G-1.5-14-C
Sodium Chloride Sigma Aldrich S3014
Dissecting  Microscope Nikon TMZ-1500 Any dissecting microscope is fine.
Camera for Imaging Nikon Q imaging Any camera is suitable.
Image J software National Institutes of Health NIH Image
NIS Elements Nikon Any imaging software is suitable.
Confocal microscope Olympus FV10i Any high resolution fluorescent microscope is suitable
Aquatic System  KG Aquatics ZFS Rack System. Any aquatic system can be used

References

  1. Dambly-Chaudire, C., Sapde, D., Soubiran, F., Decorde, K., Gompel, N., Ghysen, A. The Lateral Line of Zebrafish: a Model System for the Analysis of Morphogenesis and Neural Development in Vertebrates. Biol. Cell. 95 (9), 579-587 (2003).
  2. Montgomery, J., Carton, G., Voigt, R., Baker, C., Diebel, C. Sensory Processing of Water Currents by Fishes. Phil. Trans. Royal Soc. London B Biol. Sci. 355 (1401), 1325-1327 (2000).
  3. Buck, L. M., Winter, M. J., Redfern, W., Whitfield, T. T. Ototoxin-Induced Cellular Damage in Neuromasts Disrupts Lateral Line Function in Larval Zebrafish. Hearing Res. 284 (1-2), 1-2 (2012).
  4. Engelmann, J., Hanke, W., Mogdans, J., Bleckmann, H. Hydrodynamic Stimuli and the Fish Lateral Line. Nature. 408 (6808), 51-52 (2000).
  5. Olszewski, J., Haehnel, M., Taguch, M., Liao, J. C. Zebrafish Larvae Exhibit Rheotaxis and Can Escape a Continuous Suction Source Using Their Lateral Line. PloS One. 7 (5), e36661 (2012).
  6. Raible, D. W., Kruse, G. J. Organization of the Lateral Line System in Embryonic Zebrafish. J. Comp. Neurol. 421 (2), 189-198 (2000).
  7. Coffin, A. B., Reinhart, K. E., Owens, K. N., Raible, D. W., Rubel, E. W. . Extracellular Divalent Cations Modulate Aminoglycoside-Induced Hair Cell Death in the Zebrafish Lateral. 253 (1-2), 1-2 (2009).
  8. Harris, J. A., Cheng, A. G., Cunningham, L. L., MacDonald, G., Raible, D. W., Rubel, E. W. . Neomycin-Induced Hair Cell Death and Rapid Regeneration in the Lateral Line of Zebrafish (Danio. 4 (2), 219-234 (2003).
  9. Ma, E. Y., Rubel, E. W., Raible, D. W. Notch Signaling Regulates the Extent of Hair Cell Regeneration in the Zebrafish Lateral Line). J. Neurosci. 28 (9), 2261-2273 (2008).
  10. Brignull, H. R., Raible, D. W., Stone, J. S. Feathers and Fins: Non-Mammalian Models for Hair Cell Regeneration. Brain Res. 1277, 12-23 (2009).
  11. Bibliowicz, J., Tittle, R. K., Gross, J. M. Toward a Better Understanding of Human Eye Disease Insights From the Zebrafish, Danio Rerio. Prog. Mol. Biol. Transl. Sci. 100, 287-330 (2011).
  12. Mione, M. C., Trede, N. S. The Zebrafish As a Model for Cancer. Dis. Model. Mech. 3 (9-10), 9-10 (2010).
  13. Norton, W., Bally-Cuif, L. Adult Zebrafish As a Model Organism for Behavioural Genetics. BMC. Neurosci. 11, (2010).
  14. Mathur, P., Guo, S. Use of Zebrafish As a Model to Understand Mechanisms of Addiction and. Complex Neurobehavioral Phenotypes. Neurobiol. Dis. 40 (1), 66-72 (2010).
  15. Ignatius, M. S., Langenau, D. M. Zebrafish As a Model for Cancer Self-Renewal. Zebrafish. 6 (4), 377-387 (2009).
  16. Milan, D. J., MacRae, C. A. Zebrafish Genetic Models for Arrhythmia. Prog. Biophys. Mol. Biol. 98 (2-3), 2-3 (2008).
  17. Van Trump, W. J., Coombs, S., Duncan, K., McHenry, M. J. Gentamicin Is Ototoxic to All Hair Cells in the Fish Lateral Line System. Hear. Res. 261 (1-2), 1-2 (2010).
  18. Littleton, R. M., Hove, J. R. Zebrafish: a Nontraditional Model of Traditional Medicine. J. Ethnopharmacol. 145 (3), 677-685 (2013).
  19. Harris, J. A., Cheng, A. G., Cunningham, L. L., MacDonald, G., Raible, D. W., Rubel, E. W. . Neomycin-Induced Hair Cell Death and Rapid Regeneration in the Lateral Line of Zebrafish (Danio. 4 (2), 219-234 (2003).
  20. Olszewski, J., Haehnel, M., Taguchi, M., Liao, J. C. Zebrafish Larvae Exhibit Rheotaxis and Can Escape a Continuous Suction Source Using Their Lateral Line). PLoS One. 7 (5), 36661-36 (2012).
  21. Liang, J., Wang, D., Renaud, G., Wolfsberg, T. G., Wilson, A. F., Burgess, S. M. The Stat3/Socs3a Pathway Is a Key Regulator of Hair Cell Regeneration in Zebrafish [Corrected. J. Neurosci. 32 (31), 10662-10673 (2012).
  22. Nakae, M., Asaoka, R., Wada, H., Sasaki, K. Fluorescent Dye Staining of Neuromasts in Live Fishes: An Aid to Systematic Studies. Ichthyol Res. , 286-290 (2012).
  23. Magrassi, L., Purves, D., Lichtman, J. W. Fluorescent Probes That Stain Living Nerve Terminals. The J. Neurosci. 7 (4), 1207-1214 (1987).
  24. Owens, K. N., Coffin, A. B., Hong, L. S., Bennett, K. O., Rubel, E. W., Raible, D. W. Response of Mechanosensory Hair Cells of the Zebrafish Lateral Line to Aminoglycosides Reveals Distinct Cell Death Pathways. Hear. Res. 253 (1-2), 1-2 (2009).
  25. Namdaran, P., Reinhart, K. E., Owens, K. N., Raible, D. W., Rubel, E. W. . Identification of Modulators of Hair Cell Regeneration in the Zebrafish Lateral. 32 (10), 3516-3528 (2012).
  26. Herrera, A. A., Banner, L. R. The Use and Effects of Vital Fluorescent Dyes: Observation of Motor Nerve Terminals and Satellite Cells in Living Frog Muscles. J. Neurocytol. 19 (1), 67-83 (1990).
  27. Hickey, P. C., Jacobson, D., Read, N. D., Louise Glass, ., L, N. Live-Cell Imaging of Vegetative Hyphal Fusion in Neurospora Crassa. Fungal. Genet. Biol. 37 (1), 109-119 (2002).
  28. Olsen, A. S., Sarras, M. P., Intine, R. V. Limb Regeneration Is Impaired in an Adult Zebrafish Model of Diabetes Mellitus. Wound Repair Regen. 18 (5), 532-542 (2010).
  29. Olsen, A. S., Sarras, M. P., Leontovich, A., Intine, R. V. Heritable Transmission of Diabetic Metabolic Memory in Zebrafish Correlates With DNA Hypomethylation and Aberrant Gene Expression. Diabetes. 61 (2), 485-491 (2012).

Play Video

Cite This Article
Pisano, G. C., Mason, S. M., Dhliwayo, N., Intine, R. V., Sarras, Jr., M. P. An Assay for Lateral Line Regeneration in Adult Zebrafish. J. Vis. Exp. (86), e51343, doi:10.3791/51343 (2014).

View Video