Summary

糖肽捕获的细胞表面蛋白组学

Published: May 09, 2014
doi:

Summary

细胞表面蛋白的生物学上重要的和广泛的糖基化。我们在这里介绍一个糖肽捕获的方法来溶解,丰富,并且这些去糖基化蛋白质浅显的LC-MS基础的蛋白质组学分析。

Abstract

细胞表面蛋白,包括胞外基质蛋白,参与所有主要的细胞过程和功能,例如生长,分化和增殖。这些蛋白质的综合表征为生物标志物的发现,细胞类型识别和药物靶点的选择,以及帮助推动我们的细胞生物学和生理学的了解丰富的信息。表面蛋白,然而,构成,因为它们固有的低丰度,高疏水性,并且重的翻译后修饰显著分析挑战。采取上表面蛋白的糖基化常见的优点,我们在这里介绍一种高通量糖肽捕获方法,集成的现有的几种N-glycoproteomics装置的优点。我们的方法可以丰富从表面的蛋白质所产生的糖肽,并删除其聚糖,使用LC-MS浅显的蛋白质组学研究。该解决N-glycoproteome包括INFormation蛋白质的身份和数量,以及糖基化他们的网站。此方法已被应用到了一系列的研究领域,包括癌症,神经干细胞,和药物毒性。该方法的局限性在于表面的膜蛋白,这样,需要相对大量的样品进行该分析相比,研究集中于胞质蛋白的丰度低。

Introduction

细胞表面蛋白与细胞外环境进行交互并从外部中继信号到细胞的内部。因此,这些蛋白,包括细胞外基质蛋白,在细胞生物学和生理学不等的增殖,生长,迁移,分化老化等各方面发挥关键作用。表面蛋白的功能通过与其他细胞,蛋白质和小分子1-3交互。细胞表面蛋白的分子特性是极大的兴趣不仅为生物学家也为制药公司,药品60%以上是针对细胞表面蛋白4。

串联质谱(MS),以其卓越的灵敏度,准确度和吞吐量鉴定蛋白质和多肽,一直是一个强大的工具,用于全球蛋白质组学研究5,6。然而,表面的蛋白质会对质谱为基础的蛋白质组学显著挑战,在低量的重金属修改存在最表面的蛋白质。表面蛋白的跨膜区呈现它们的疏水性;这是特别适用于多通道的跨膜蛋白的情况。因此,这是难以溶解在水溶液中的膜蛋白无洗涤剂的帮助;然而清洁剂的使用普遍抑制高效液相色谱法和质谱1,7,8的蛋白质鉴定的表现。因此,膜蛋白已被鉴定中直接LC-MS基于蛋白质组学很差。

糖基化是发生在细胞表面蛋白9的最重要和最丰富的翻译后修饰之一。聚糖的巨大复杂性和异质性阻碍肽'MS信号10。然而,一些蛋白质组的方法已经使用这个唯一的修改,以丰富的表面蛋白,并从之前的LC-MS分析的蛋白质除去糖部分。这些方法s包括凝集素亲和捕获11和酰肼基或硼酸基化学捕获12以及亲水性色谱分离8,13。聚糖的去除转化膜蛋白常规的蛋白质,并大幅简化了MS表征。因为糖基化还发生在分泌蛋白具有高的溶解度在对比膜蛋白,许多glycoproteomic方法对可溶性蛋白进行了优化,并趋向于具有较低的糖肽的选择性和时被部署到膜蛋白8,14灵敏度。其他的方法也存在丰富,尤其细胞表面蛋白,例如那些使用超速离心15和标记策略16。表征膜蛋白我们的方法和现有的其他方法之间的详细比较了最近进行的17,结果表明,我们的方法可以执行同样出色,如果不是更好,比所有被比较的膜蛋白质组的方法,但具有更高的简易性。

为了帮助研究人员使用这种方法,我们这里详细的一般协议。这种方法综合了现有的glycoproteomics战略几个优点,特别适用于膜糖蛋白构想,但该方法同样适用于分泌蛋白。该方法的特征包括:1)膜蛋白的完全溶解,2)糖肽的糖蛋白,而不是使用固体摄像基板时,以消除潜在的空间位阻的富集,3)使用酰肼化学组成之间的共价键糖肽和捕集基板上,使得键合的糖肽可以容忍严格洗涤的高glycoselectivity,和4)的能力,以对整个捕获过程中一个管用于减少样品损失和缩短操作时间。实施这一方法来研究一个变量后,生物样品包括细胞和组织的ETY,我们观察到的高选择性(> 90%),以糖蛋白8,17,18。

Protocol

1,嘉实膜添加低渗缓冲液(10mM的Tris-HCl,10mM的氯化钾,1.5毫摩尔MgCl 2,pH 8.0)中与蛋白酶抑制剂混合物到细胞沉淀(〜10 8个细胞),并培育在冰上15-30分钟。裂解细胞通过使样品通过注射器针头(5-10遍),或通过一个Dounce匀浆(15-30冲程)破碎样品。使用血细胞计数器和台盼蓝染色来检查裂解的效率。 由裂解物的差速离心获得的微粒体部分在3000 GX 15分钟,然后在…

Representative Results

在实验过程中的代表性流程图总结在图1的标签,并进一步分馏步骤是可选的,细节将在近期公布18描述。另一种方法是分析未修饰的肽,其不与树脂反应。分析所述未修饰的肽的优点包括:非糖基化的肽类和蛋白质,例如在紧密连接claudins的电位标识;一个附加的优点是更准确的定量。基于这些优势,我们称之为这种方法 g lycocapture – 一个ssisted-G的叶形q uantitative…

Discussion

在这里,我们介绍一种糖肽捕获策略分析细胞表面蛋白。可以应用该方法来研究分泌蛋白,如血液中,以及在其他体液或细胞培养基中。

该方法的成功依赖于样本的完全消化;因此,消化效率的SDS-PAGE鉴定是必要的,尤其是对于样品的第一次分析。一个完整的消化可具有挑战性的膜蛋白,并可以仅在膜级分的彻底的溶解是可能的。当洗涤剂引入增溶过程开始和尿素的孵育后结?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

这项研究已经由西蒙·弗雷泽大学的启动资金支持。

Materials

DTT Sigma 646563
TCEP Sigma 646547
Iodoacetamide Sigma A3221
Rapigest SF Waters 186001860
Sodium periodate Sigma 311448
PNGase F New England Biolabs P0704S
Affi-Gel Hz Hydrazide gel Bio-Rad 153-6047
Trypsin Worthington Biomedical LS02115
Sep-Pak C-18 cartridge Waters WAT054955
Oasis MCX cartridge Waters 186000252
Protease inhibitor coctail Sigma P8340
Urea Amersco 568
Sodium sulphite Caledon 8360-1
Invertase Sigma I0408
Alpha-1 trypsin Sigma F2006
Ribonulease B Sigma R7884
Avidin Sigma A9275
Ovalbumin Sigma A5503
Conalbumin Sigma C0755

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Cite This Article
Lee, M. C. G., Sun, B. Glycopeptide Capture for Cell Surface Proteomics. J. Vis. Exp. (87), e51349, doi:10.3791/51349 (2014).

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