Summary

En metode for generering av Lunge neutrofili Bruke aerosolized Lipopolysaccharide

Published: December 15, 2014
doi:

Summary

Vi beskriver en fremgangsmåte for indusering av nøytrofil lungebetennelse ved utfordring for aerosoli lipopolysakkarid ved forstøvning, for å modellere akutt lungeskade. I tillegg er basis kirurgiske teknikker for isolering lunge, trakeal intubasjon og bronkoalveolar lavage også beskrevet.

Abstract

Akutt skade lunge (ALI) er en alvorlig sykdom som kjennetegnes ved alveolar neutrofili, med begrenset behandlingstilbud og høy dødelighet. Eksperimentelle modeller av ALI er nøkkelen i å forbedre vår forståelse av sykdom patogenesen. Lipopolysakkarid (LPS) avledet fra gram-positive bakterier induserer nøytrofil inflammasjon i luftveiene og lunge parenchyma av mus. Effektiv pulmonal levering av forbindelser slik som LPS er imidlertid vanskelig å oppnå. I tilnærmingen som beskrives her, er pulmonal levering i mus oppnås ved utfordring til aeroPseudoMonas aeruginosa LPS. LPS ble oppløst aerosoliseres ved hjelp av en forstøver som er koblet til trykkluft. Mus ble utsatt for en kontinuerlig strøm av LPS aerosol i en pleksiglassboks i 10 minutter, etterfulgt av 2 minutter kondisjonering etter at aerosolen ble avbrutt. Trakeal intubasjon og påfølgende bronkoalveolar lavage, fulgt av formalin perfusjon ble deretter utført, noe som gjør det mulig for karakterisering av den sterile pulmonary betennelse. Aerosoliseres LPS genererer en lungebetennelse preget av alveolar neutrofili, oppdaget i bronchoalveolar kylling og ved histologisk vurdering. Denne teknikken kan settes opp på en liten kostnad med noen apparater, og krever minimalt med opplæring og kompetanse. Eksponeringssystemet kan dermed gjennomføres rutinemessig på noe laboratorium, med potensial til å forbedre vår forståelse av lunge patologi.

Introduction

Lipopolysakkarid (LPS) er en celleveggkomponent av gramnegative bakterier 1. Utfordring til LPS er en veldokumentert modell av akutt lungeskade, et syndrom karakterisert ved akutt nøytrofil inflammasjon og ødem 2. I tillegg er lunge neutrofili også et kjennetegn på kronisk obstruktiv lungesykdom (KOLS) 3, og LPS utfordring hos mennesker har blitt brukt til å modellere KOLS eksaserbasjoner 4. Dermed eksperimentelle modeller av LPS eksponering er klinisk relevante og verdifulle verktøy for å forstå menneskelig patologi.

Målet for pulmonal avlevering av aerosoliserte LPS som er beskrevet her, er å generere en nøytrofil inflammatorisk respons i det ledende og luftveiene, uten systemiske reaksjoner. Flere teknikker for LPS utfordringen har vært beskrevet tidligere. Intra-venøs injeksjon av LPS er den mest brukte administrasjonsmåte. Selv om denne teknikken er lett tilgjengelig, tHan primære skaden er til endotelet, med sekundær ødeleggelse av lunge epitel følgende nøytrofil migrering til lungen. Intra-venøs administrering induserer også systemisk inflammasjon 2, noe som kan komplisere det kliniske bildet i dyremodeller. Systemisk inflammasjon er i motsetning ikke observert med intratrakeal administrering. Denne teknikk er imidlertid arbeidskrevende og krever anestetika samt betydelig trening 5, 6. Videre er lunge deponering av denne administrasjons avhengig puste 7. Således er lungeavsetning påvirkes av anestesidybden som er nødvendig for intra tracheal administrering og variabel deponering i luftveiene kan observeres. I motsetning til dette, med aerosolis LPS pulmonal levering krever minimal opplæring, og kan lett oppnås på et stort antall av dyr med liten eller ingen variasjon mellom individer 5, 8.En fersk studie bekrefter at aerosol levering er overlegen den intratrakealt med hensyn til deponering, og at mer relevante doser av LPS indusere nøytrofil inflammasjon med denne modellen 8.

Tidligere studier har vist at utfordring å aerosoliseres Pseudomonas aeruginosa LPS genererer en markert inflammatorisk respons i luftveislumen og lunge parenchyma, inkludert de alveolare rom 9, 10. Betennelsen er preget av en overvekt av nøytrofile og tilstedeværelse av lungeødem, og kan dermed brukes til å adressere patogenesen av akutt lungeskade og få ytterligere kunnskap om mekanismene som bidrar til sykdom patologi.

Protocol

De dyrestudier ble godkjent av Northern Stockholm dyrevelferds etikkomité. De eksperimentelle prosedyrer ble utført i samsvar med svensk lov. 1. Generere en LPS Aerosol Oppløse 0,5 g renset P. aeruginosa LPS i 50 ml sterilt saltvann med forsiktig omrøring og verifisere oppløsning. Fortynn 1 ml LPS oppløst i 9 ml sterilt saltvann til en sluttkonsentrasjon på 1 mg / ml. Beskytt mot lys med aluminiumsfolie og oppbevar ved -20 ° C. Tine oppløseliggjorte LPS…

Representative Results

Utfordring til aero P. aeruginosa LPS gir vanligvis en markert inflammatorisk respons i luftveislumen og alveolar plass, karakterisert ved en overvekt av nøytrofiler på både tidlige og sene tidspunkter. Aerosoliseres LPS induserer lunge neutrofili C57BL / 6BY og BALB / c mus ble utsatt for aerosolisert P. aeruginosa LPS eller bærer alene, og nøytrofiler ble nummerert i Balf. Det totale celletall i Balf av C57BL / 6BY mus eksponert for en aeros…

Discussion

Aero LPS genererer en inflammatorisk respons i luftveiene, kjennetegnet ved neutrofiler i epithelial submucosa, mellomrom som omgir de ledende luftveier, så vel som de alveolære områder. Dette er, sammen med den økte totale proteininnhold i Balf, en indikasjon på plasmalekkasje, er representative for patologien av akutt lungeskade. Som LPS induserer en steril inflammasjon, er reaksjonen uavhengig av den adaptive immunrespons, og det er begrensninger i relevans for bakterielle infeksjoner. Teknikken kan imidlertid b…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi vil gjerne takke Kerstin Thim (Astrazeneca, Lund, Sverige), Benita Dahlberg og Dr. Anders Eklund (Karolinska Institutet, Stockholm, Sverige) samt Dr. Martin Stampfli (McMaster University, Hamilton, ON, Canada) for dyktig assistanse og ekspertråd.

Materials

Name of the material/equipment  Company Catalog number Comments/Description
Purified Pseudomonas aeruginosa LPS  Sigma-Aldrich Harmful. Recomended purification. LPS purified from other bactria may be used.
Pari LC sprint star nebulizer PARI Respiratory Equipment Inc.  023G1250
TSI mass flowmeter 4040 TSI 4040 Alternative product from supplier may be used.
Saint-Gobain 15.9 mm Tygon tube Sigma-Aldrich Z685704 Recomended brand.
Plexiglas boxes with removable lids Custom built N/A 150 x 163 x 205 mm (a 2 mm hole on the side). 
3M Half Facepiece Reusable Respirator 3M 7503 Recomended brand.
3M Advanced Particulate Filters (P100)  3M 2291 Recomended brand.
Sissors VWR 233-1104 Preferred scissors may be used.
Forceps  VWR 232-1313 Preferred forceps may be used.
Intramedic PE50 polyethylene tube BD 427411 Recomended brand.
Ethicon 2-0 Perma-hand silk tread  VWR 95056-992 Recomended brand.
26 ½  gage needle  Alternative suppliers exist.
1 mL BD slip-tip syringe, non-sterile BD 301025 Alternative suppliers exist.
60 mL BD Luer-Lok syringe, non-sterile, polypropolene  BD 301035 Alternative suppliers exist.
Fluka Hematoxylin-Eosin Sigma-Aldrich 3972 Alternative suppliers exist.
Türk's solution Merck Millipore 109277
Table top centrifuge Alternative manufacturers exist.
Cytospin 4 cytocentrifuge Thermo Scientific A78300003 Alternative centrifuge can be used. 
HEMA-3 stat pack Fisher Scientific 23-123-869 Alternative staining kits exists.
Formalin solution, neutral buffered, 10% Sigma-Aldrich HT501128  Alternative suppliers exist.

References

  1. King, J. D., Kocincova, D., Westman, E. L., Lam, J. S. Review: Lipopolysaccharide biosynthesis in Pseudomonas aeruginosa. Innate Immun. 15, 261-312 (2009).
  2. Grommes, J., Soehnlein, O. Contribution of neutrophils to acute lung injury. Mol Med. 17, 293-307 (2011).
  3. Pesci, A., et al. Inflammatory cells and mediators in bronchial lavage of patients with chronic obstructive pulmonary disease. Eur Respir J. 12, 380-386 (1998).
  4. Hoogerwerf, J. J., et al. Lung Inflammation Induced by Lipoteichoic Acid or Lipopolysaccharide in Humans. Am. J. Respir. Crit. Care Med. 178, 34-41 (2008).
  5. Scheuchenzuber, W. J., Eskew, M. L., Zarkower, A. Comparative humoral responses to Escherichia coli and sheep red blood cell antigens introduced via the respiratory tract. Exp Lung Res. 13, 97-112 (1987).
  6. Asti, C., et al. Lipopolysaccharide-induced lung injury in mice. I. Concomitant evaluation of inflammatory cells and haemorrhagic lung damage. Pulm Pharmacol Ther. 13, 61-69 (2000).
  7. Brand, P., et al. Total deposition of therapeutic particles during spontaneous and controlled inhalations. Journal of pharmaceutical sciences. 89, 724-731 (2000).
  8. Liu, F., Li, W., Pauluhn, J., Trubel, H., Wang, C. Lipopolysaccharide-induced acute lung injury in rats: comparative assessment of intratracheal instillation and aerosol inhalation. Toxicology. 304, 158-166 (2013).
  9. Skerrett, S. J., et al. Role of the type 1 TNF receptor in lung inflammation after inhalation of endotoxin or Pseudomonas aeruginosa. American Journal of Physiology – Lung Cellular and Molecular Physiology. 276, L715-L727 (1999).
  10. Roos, A. B., et al. Lung epithelial-C/EBPbeta contributes to LPS-induced inflammation and its suppression by formoterol. Biochem Biophys Res Commun. 423, 134-139 (2012).
  11. Didon, L., et al. Lung epithelial CCAAT/enhancer-binding protein-beta is necessary for the integrity of inflammatory responses to cigarette smoke. Am J Respir Crit Care Med. 184, 233-242 (2011).
  12. Silverpil, E., et al. Negative feedback on IL-23 exerted by IL-17A during pulmonary inflammation. Innate Immunity. 19, 479-492 (2013).
  13. Mercer, P. F., et al. Proteinase-Activated Receptor-1, CCL2 and CCL7 Regulate Acute Neutrophilic Lung Inflammation. American Journal of Respiratory Cell and Molecular Biology. , (2013).
  14. Korkmaz, B., Horwitz, M. S., Jenne, D. E., Gauthier, F. . Neutrophil Elastase, Proteinase 3, and Cathepsin G as Therapeutic Targets in Human Diseases. Pharmacological Reviews. 62, 726-759 (2010).
  15. Bafadhel, M., et al. Acute Exacerbations of COPD: Identification of Biological Clusters and Their Biomarkers. Am. J. Respir. Crit. Care Med. , 201104-200597 (2011).
  16. Hurst, J. R., Perera, W. R., Wilkinson, T. M. A., Donaldson, G. C., Donaldson, G. C., Wedzicha, G. C. Systemic and Upper and Lower Airway Inflammation at Exacerbation of Chronic Obstructive Pulmonary. Am. J. Respir. Crit. Care Med. 173, 71-78 (2006).
  17. Rabe, K. F., et al. Global Strategy for the Diagnosis, Management, and Prevention of Chronic Obstructive Pulmonary Disease: GOLD Executive Summary. Am. J. Respir. Crit. Care Med. 176, 532-555 (2007).
check_url/kr/51470?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Roos, A. B., Berg, T., Ahlgren, K. M., Grunewald, J., Nord, M. A Method for Generating Pulmonary Neutrophilia Using Aerosolized Lipopolysaccharide. J. Vis. Exp. (94), e51470, doi:10.3791/51470 (2014).

View Video