Summary

Microfluidic Jetting का प्रयोग लिपिड bilayer पुटिका पीढ़ी

Published: February 21, 2014
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Summary

एक छोटी बूंद इंटरफ़ेस लिपिड bilayer के खिलाफ microfluidic jetting झिल्ली विषमता, transmembrane प्रोटीन का समावेश, और सामग्री के encapsulation पर नियंत्रण के साथ vesicles उत्पन्न करने के लिए एक विश्वसनीय तरीका प्रदान करता है. इस तकनीक को बंटे biomolecules वांछित हैं जहां जैविक प्रणालियों की एक किस्म का अध्ययन करने के लिए लागू किया जा सकता है.

Abstract

नीचे अप सिंथेटिक जीव विज्ञान संभावित जैव रासायनिक प्रणालियों और, कम से कम जीवों की जांच और पुनर्गठन के लिए एक उपन्यास दृष्टिकोण प्रस्तुत करता है. इस उभरते हुए क्षेत्र नीचे से जटिल कार्य कर प्रणाली में बुनियादी जैविक घटकों के डिजाइन और इकट्ठा करने के लिए इंजीनियर, दवा की दुकानों, जीव, और भौतिकविदों संलग्न है. इस तरह के नीचे अप सिस्टम मौलिक जैविक जांच और अभिनव चिकित्सा 1,2 के लिए कृत्रिम कोशिकाओं के विकास को ले जा सकता है. विशालकाय unilamellar पुटिका (GUVs) की वजह से उनके सेल की तरह झिल्ली संरचना और आकार को सिंथेटिक जीव विज्ञान के लिए एक मॉडल के मंच के रूप में काम कर सकते हैं. Microfluidic jetting, या microjetting, नियंत्रित आकार, झिल्ली संरचना, transmembrane प्रोटीन समावेश, और encapsulation 3 के साथ GUVs की पीढ़ी के लिए अनुमति देता है एक तकनीक है. इस विधि के बुनियादी सिद्धांत एक निलंबित एल ख़राब करने के लिए एक piezo actuated इंकजेट डिवाइस द्वारा उत्पन्न एकाधिक, उच्च आवृत्ति द्रव दालों का प्रयोग होता हैएक guv में ipid bilayer. प्रक्रिया एक साबुन फिल्म से साबुन के बुलबुले उड़ाने जैसा है. Jetted समाधान, को शामिल समाधान की रचना, और / या घटकों की रचना से अलग bilayer में शामिल, शोधकर्ताओं अनुकूलित पुटिका बनाने के लिए इस तकनीक को लागू कर सकते हैं. इस पत्र microjetting से एक छोटी बूंद इंटरफ़ेस bilayer से सरल vesicles उत्पन्न करने के लिए प्रक्रिया का वर्णन है.

Introduction

यह कोशिका जीव विज्ञान अणुओं से कोशिकाओं के लिए हमारी समझ को एकीकृत शामिल है कि एक बहु पैमाने पर समस्या यह है कि तेजी से स्पष्ट हो गया है. नतीजतन, अणुओं व्यक्तिगत काम ठीक कैसे जानते हुए भी जटिल सेलुलर व्यवहार को समझने के लिए पर्याप्त नहीं है. इस 5 निकालने Xenopus में लिपिड bilayer पुटिका 4, mitotic धुरा विधानसभा साथ actin नेटवर्क बातचीत के पुनर्गठन के उदाहरण के रूप में, आंशिक रूप से बहु घटक प्रणालियों के आकस्मिक व्यवहार के अस्तित्व के लिए है, और बैक्टीरिया कोशिका विभाजन मशीनरी 6 के स्थानिक गतिशीलता. जी प्रणालियों के आणविक प्रक्रियाओं विदारक के न्यूनकारी के दृष्टिकोण के पूरक के लिए एक तरह जैविक घटकों की एक न्यूनतम सेट का उपयोग सेलुलर व्यवहार पुनर्गठन के विपरीत दृष्टिकोण ले रहा है. इस दृष्टिकोण का एक महत्वपूर्ण हिस्सा एक सीमित मात्रा में biomolecules के विश्वसनीय encapsulation, एक सेल की एक प्रमुख विशेषता शामिल है.

e_content "> कई रणनीतियों biomimetic प्रणालियों के अध्ययन के लिए biomolecules encapsulating के लिए मौजूद हैं. सबसे biologically प्रासंगिक प्रणाली सेल के प्लाज्मा झिल्ली द्वारा लगाए गए जैव रासायनिक और भौतिक बाधाओं की नकल है. electroformation 7 से विशाल unilamellar पुटिका (GUVs) के गठन के लिपिड bilayer झिल्ली, है, शुद्ध प्रोटीन के साथ काम करने के लिए एक समस्या हो सकती है, जो guv पीढ़ी 14 के लिए सबसे व्यापक रूप से इस्तेमाल किया तकनीकों में से एक, आम तौर पर उच्च नमक बफर 8 के साथ अपनी असंगति के कारण एक गरीब encapsulation उपज है. Electroformation भी बड़ा नमूना संस्करणों की आवश्यकता है (> 100 μl), , और निकम्मेपन से निकट दूरी लिपिड परतों के बीच प्रसार की कठिनाई की वजह से बड़े अणुओं को शामिल किया गया. लिपिड vesicles पैदा करने के लिए कई microfluidic दृष्टिकोण. w / ओ (परतों पानी तेल पानी के बीच दो इंटरफेस के माध्यम से घटकों पारित जो डबल पायस तरीकों, विकसित किया गया है / डब्ल्यू), एक Vo के वाष्पीकरण पर निर्भर करता हैलिपिड bilayer गठन 9 ड्राइव करने latile विलायक. दूसरों लिपिड bilayer पुटिका 10 या दो स्वतंत्र चरणों में 11 में से एक सतत प्रवाह है कि उत्पादन एक microfluidic विधानसभा लाइन का इस्तेमाल किया है. हम तेजी से नियंत्रित आकार, संरचना, और encapsulation के GUVs निर्माण करने के लिए एक छोटी बूंद इंटरफ़ेस bilayer 12 के खिलाफ द्रव दालों को लागू करने पर आधारित एक वैकल्पिक तकनीक विकसित की है. Microfluidic jetting के रूप में जाना जाता है हमारा दृष्टिकोण, जैविक समस्याओं की एक किस्म की जांच के लिए कार्यात्मक biomolecular सिस्टम बनाने के लिए एक दृष्टिकोण प्रदान करने, कई मौजूदा पुटिका पीढ़ी की तकनीक से संयुक्त लाभ प्रदान करता है.

Protocol

1. इन्फिनिटी चैंबर निर्माण एक कंप्यूटर असिस्टेड डिजाइन (सीएडी) सॉफ्टवेयर का उपयोग कर (अपने आकार के लिए नाम) अनंत कक्ष डिजाइन, और यह एक लेजर कटर के साथ संगत है कि इस तरह की फाइल को बचाने. लेजर कटर के साथ स…

Representative Results

हम machined भागों और मैनुअल micrometers से इकट्ठे एक कस्टम मंच (चित्रा 1) के साथ एक पारंपरिक औंधा प्रतिदीप्ति खुर्दबीन पर एक microfluidic jetting सेटअप को इकट्ठा किया है. इंकजेट की विशेषता पुटिका पीढ़ी प्रक्रिया में अंतर्?…

Discussion

कई तकनीकों electroformation, पायस, और छोटी बूंद पीढ़ी 14-16 सहित पुटिका पीढ़ी के लिए विकसित किया गया है. बहरहाल, नए प्रयोगात्मक तकनीक रहने वाले सिस्टम के लिए बढ़ समानता के साथ जैविक प्रणालियों के डिजाइन के लिए अन?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

हम microjetting मापदंडों पर सलाह के लिए कैलिफोर्निया, बर्कले विश्वविद्यालय में फ्लेचर लैब से माइक Vahey धन्यवाद. इस काम एनआईएच अनुदान DP2 HL117748-01 के द्वारा प्रायोजित किया गया था.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Piezoelectric Inkjet MicroFab Technologies MJ-AL-01-xxx xxx denotes orifice diameter in microns
Jet Drive III Controller MicroFab Technologies CT-M3-02
High-speed camera Vision Research MiroEX2
DPhPC lipid in chloroform Avanti 850356C Ordered in small aliquots in vials
33mm PVDF filters, 0.2 µm Fisher Scientific SLGV033RS
1ml syringes Fisher Scientific 14823434
n-Decane Acros Organics 111871000
Glucose Acros Organics 410950010
Sucrose Sigma-Aldrich S7903-1KG
Methylcellulose Fisher Scientific NC9084958
1/8" Acrylic McMaster Carr 8560K239 CAD designs for the infinity-shaped chamber are available upon request
0.2 mm Acrylic Astra Products Clarex clear 001
Acrylic Cement TAP Plastics 10693
Loctite 495 Superglue Fisher Scientific NC9011323
Loctite 3494 UV Strengthening Adhesive Strobels Supply 30765
Natural rubber McMaster Carr 85995K14
Custom stage Home made N/A CAD designs are available upon request

References

  1. Liu, A. P., Fletcher, D. A. Biology under construction: in vitro reconstitution of cellular function. Nature reviews. Mol. Cell Biol. 10, 644-650 (2009).
  2. Yeh, B. J., Lim, W. A. Synthetic biology: lessons from the history of synthetic organic chemistry. Nat. Chem. Biol. 3, 521-525 (2007).
  3. Richmond, D. L., et al. Forming giant vesicles with controlled membrane composition, asymmetry, and contents. Proc. Natl. Acad. Soc. U.S.A. 108, 9431-9436 (2011).
  4. Liu, A. P., et al. Membrane-induced bundling of actin filaments. Nat. Phys. 4, 789-793 (2008).
  5. Brown, K. S., et al. Xenopus tropicalis egg extracts provide insight into scaling of the mitotic spindle. J. Cell Biol. 176, 765-770 (2007).
  6. Loose, M., Fischer-Friedrich, E., Ries, J., Kruse, K., Schwille, P. Spatial regulators for bacterial cell division self-organize into surface waves in vitro. Science. 320, 789-792 (2008).
  7. Angelova, M. I., Dimitrov, D. S. Liposome electroformation. Faraday Disc. Chem. Soc. 81, 301-311 (1986).
  8. Bucher, P., Fischer, A., Luisi, L. P., Oberholzer, T., Walde, P. Giant Vesicles as Biochemical Compartments: The Use of Microinjection Techniques. Langmuir. 14, 2712-2721 (1998).
  9. Shum, H. C., Lee, D., Yoon, I., Kodger, T., Weitz, D. A. Double emulsion templated monodisperse phospholipid vesicles. Langmuir. 24, 7651-7653 (2008).
  10. Matosevic, S., Paegel, B. M. Stepwise Synthesis of Giant Unilamellar Vesicles on a Microfluidic Assembly Line. J. Am. Chem. Soc. 133, 2798-2800 (2011).
  11. Hu, P. C. C., Li, S., Malmstadt, N. Microfluidic Fabrication of Asymmetric Giant Lipid Vesicles. ACS Appl. Mater. Inter. 3, 1434-1440 (1021).
  12. Hwang, W. L., Chen, M., Cronin, B., Holden, M. A., Bayley, H. Asymmetric droplet interface bilayers. J. Am. Chem. Soc. 130, 5878-5879 (2008).
  13. Stachowiak, J. C., Richmond, D. L., Li, T. H., Brochard-Wyart, F., Fletcher, D. A. Inkjet formation of unilamellar lipid vesicles for cell-like encapsulation. Lab Chip. 9, 2003-2009 (2009).
  14. Meleard, P., Bagatolli, L. A., Pott, T. Giant unilamellar vesicle electroformation from lipid mixtures to native membranes under physiological conditions. Methods Enzymol. 465, 161-176 (2009).
  15. Nishimura, K., Suzuki, H., Toyota, T., Yomo, T. Size control of giant unilamellar vesicles prepared from inverted emulsion droplets. J. Colloid Interface Sci. 376, 119-125 (2012).
  16. Teh, S. Y., Lin, R., Hung, L. H., Lee, A. P. Droplet Microfluidics. Lab Chip. 8, 198-220 (2008).
  17. Stachowiak, J. C., et al. Unilamellar vesicle formation and encapsulation by microfluidic jetting. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 105, 4697-4702 (2008).
  18. Osaki, T., Yoshizawa, S., Kawano, R., Sasaki, H., Takeuchi, S. Lipid-coated microdroplet array for in vitro protein synthesis. Anal. Chem. 83, 3186-3191 (2011).
  19. Liu, A. P., Fletcher, D. A. Actin polymerization serves as a membrane domain switch in model lipid bilayers. Biophys. J. 91, 4064-4070 (2006).
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Coyne, C. W., Patel, K., Heureaux, J., Stachowiak, J., Fletcher, D. A., Liu, A. P. Lipid Bilayer Vesicle Generation Using Microfluidic Jetting. J. Vis. Exp. (84), e51510, doi:10.3791/51510 (2014).

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