Zwei Methoden zur Festlegung von primären humanen Endometrium Stromazellen aus Hysterektomie Proben
Summary
Aufbau primären Endometrium-Stroma-Zellkultursysteme von Hysterektomie Proben ist eine wertvolle biologische Technik und ein entscheidender Schritt vor der Verfolgung einer Vielzahl von Forschungszielen. Hier beschreiben wir zwei Verfahren verwendet, um stromale Kulturen von chirurgisch entfernten endometrialen Geweben menschlichen Patienten zu etablieren.
Abstract
Es wurden viele Anstrengungen gewidmet, in vitro Zellkultursystemen zu schaffen. Diese Systeme sind für eine große Anzahl von in-vivo-Prozesse zu modellieren. Zellkultursystemen aus humanen endometrialen Proben sind keine Ausnahme. Die Anwendungen reichen von normalen zyklischen physiologischen Prozesse Endometrium-Krankheiten wie gynäkologischen Krebserkrankungen, Infektionskrankheiten, und der Fortpflanzung. Hier bieten wir zwei Methoden zur Festlegung primären Endometrium Stromazellen aus chirurgisch entfernten Endometrium Hysterektomie Proben. Das erste Verfahren wird als "Schaben-Verfahren" bezeichnet und beinhaltet mechanisches Abkratzen mit chirurgischen oder Rasierklingen, während das zweite Verfahren wird als "die Trypsin-Verfahren". Dieses letztere Verfahren verwendet, das die enzymatische Aktivität von Trypsin, um die Trennung von Zellen und primäre Förderung Zellauswuchs. Wir veranschaulichen die Schritt-für-Schritt-Methode durch digitale Bilder und Mikroskopie. Wir auch provide Beispiele für die Validierung von Endometrium-Stroma-Zelllinien über quantitative Echtzeit-Polymerase-Kettenreaktion (qPCR) und Immunfluoreszenz (IF).
Introduction
Die menschlichen Uterus Korpus besteht aus drei Schichten, die Perimetrium (bzw. Serosa), Myometrium und Endometrium besteht. Unterscheiden jeder dieser Schichten ist ein wichtiger Schritt, um endometriale Zelllinien zu etablieren. Die Perimetrium ist die äußerste Schicht des Uterus und von dünnen, serösen Zellen. Myometrium ist die dicke, mittlere Schicht des Uterus und der glatten Muskelzellen besteht. Das Endometrium wird als die innere Schicht des Uterus identifiziert und enthält Epithel-und Stroma-Zellpopulationen.
Das Endometrium wird weiter in die basalis Schicht, deren Stammzellpopulation wird die Hypothese aufgestellt, um die Schicht functionalis besiedeln etwa alle 28 Tage 1 unterteilt. Die functionalis Schicht der menschlichen Endometrium erfährt wesentliche biochemische und morphologische Veränderungen als Reaktion auf zirkulierende Hormone. Diese Hormone werden aus der Hypophyse und Eierstöcke abgeleitet.
Diekoordiniert die Produktion und Freisetzung von Hormonen zu einer Fortpflanzungszyklus. Der Fortpflanzungszyklus ist entworfen, um das Endometrium für mögliche Einnistung des Embryos Ereignisse vorzubereiten. Beim Menschen wird der Fortpflanzungszyklus als "Menstruationszyklus" bekannt und in drei Phasen unterteilt – proliferative, sekretorischen und Menstruations. Die proliferative Phase beinhaltet die Proliferation des Endometrium functionalis Schicht, während der sekretorischen Phase wird durch functionalis Reifung markiert. Insbesondere extrazelluläre Veränderungen, Sekrete und die zelluläre Differenzierung Signal ein Potential Implantation. Wenn Implantation nicht vor dem Ende des sekretorischen Phase auftreten, wird der functionalis Endometrium-Schicht während des Menstruationsphase zu vergießen. Die Bedeutung der Menstruation und die Ereignisse, die das Ablösen des functionalis Schicht auslösen, werden noch diskutiert. Beim Menschen wurde gestellt, dass die Menstruation ist das Ergebnis einer bestimmten mittleren sekretorischen Phase Differenzierung Ereignis bekanntals "spontane Dezidualisierung" 2. In diesem Manuskript, bieten wir detaillierte Methodik für beide Endometrium-Stroma-Zellisolationsverfahren, und verwenden eine Kombination von Immunfluoreszenz und digitale Bilder, um die Wirksamkeit dieser Ansätze zu demonstrieren. Darüber hinaus wenden wir eine häufig in vitro-Modell der spontanen Dezidualisierung zur Endometrium-Stroma-Zellisolierung bestätigen.
Protocol
Representative Results
Discussion
Andere Gruppen sind für die Herstellung von Endometrium-Stromazellen Kulturen, von denen die meisten zu nutzen Kollagenase 4,12,13,15-18 beschriebenen Methodik und angepasst. In diesem Manuskript haben wir Methoden und Beweise für zwei vereinfachte primären Endometrium-Stroma-Kulturmethoden, die beide von unserem Labor aus wirtschaftlichen Gründen und der günstigen Verfügbarkeit von Trypsin und / oder einer Rasierklinge verwendet werden, vorausgesetzt.
Beim Vergleich unserer…
Disclosures
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
Wir danken den gemeinsamen Bemühungen von Dr. Thao Dang und Mitglieder ihr Labor für die Nutzung ihrer Bild und Mikroskoptechnik. Wir danken auch der Biobanken und Tissue Research Facility (BTRF) Kern, Jeff Harper, und die Bewohner an der Universität von Virginia für uns mit Gebärmuttergewebe. Wir danken Karol Szlachta für die Hilfe bei Schematische Übersicht.
Materials
| 0.25 Trypsin or 0.05% Trypsin | Hyclone | SH3023602 or SH30004202 | |
| 1.7 micro Centrifuge Tube | Genesee Scientific | 22-272A | |
| 1µl,20µl, 200ml and 1000µl Pipette | Genesee Scientific | 24-401,24-402, 24-412, 24-430 | |
| 15ml Conical Tube | Hyclone | 339650 | |
| 50ml Conical Tube | Hyclone | 339652 | |
| 6cm Cell Culture Dish | Thermo scientific | 12-556-002 | |
| 8 well Chambers | Thermo Scientific | AB-4162 | |
| Acetate | Fisher scientific | C4-100 | |
| AMV RT Enzyme/Buffer | Bio Labs | M077L | |
| Bovine Serum Albumin (BSA) | Fisher Scientific | BP-1605-100 | |
| Buffered Zinc Formalin | Thermo | 59201ZF | |
| Charcoal strip FBS | Fisher | NC9019735 | |
| Chloroform | Fisher Scientific | BP1145-1 | |
| Cover slip | Fisher Brand | 12-544D | |
| Cyclic AMP (cAMP) | Sigma | B7880 | |
| DMEM/High Glucose | Hyclone | SH30243FS | |
| dNTP | Bioline | BIO-39025 | |
| Donkey Anti Goat -TRITC | Santa Cruz | SC-3855 | |
| Donkey Serum | Jackson’s lab | 017-000-002 | |
| E Cadherin Antibody | Epitomics | 1702-1 | |
| Ethanol | Fisher Scientific | BP2818-1 | |
| Fetal Bovine Serum (FBS) | Fisher Scientific | 03-600-511 | |
| Fungizone Amphotericin B | Gibco | 15290-018 | |
| GAPDH Probe | Life Technologies | HS99999905 | |
| Glycogen | 5Prime | 2301440 | |
| Goat Anti Mouse -FITC | Jackson’s Lab | 115-096-003 | |
| Isopropanol | Fisher Scientific | BP2618-1 | |
| Kanamycin | Fisher Scientific | BP906-5 | |
| Medroxyprogesterone acetate (MPA) | Sigma | M1629 | |
| MeOH (Methanol) | Fisher Scientific | A4-08-1 | |
| Mounting Media (w/DAPI) | Vector Labratories | H-1500 | |
| N6 DNA Oligos | Invitrogen | ||
| Number 15 Scraper | BD | 371615 | |
| Pan Cytokeratin Mouse mAB | Cell Signaling | 4545 | |
| PBS (phosphate buffered saline) | Fisher Scientific | BP-399-4 | |
| Penicillin-Streptomycin Glutamine Solution 100X | Hyclone | SV30082.01 | |
| PML Anti Goat Anti body | Santa Cruz | SC-9862 | |
| Primer(s) | Eurofins | ||
| RPMI | Hyclone | SH30027FS | |
| RPMI (Phenol free) | Gibco | 11835 | |
| Sybr Green | Thermo Scientific | AB-4162 | |
| Taqman | Thermo | AB-4138 | |
| Trizol | Life Technologies | 15596018 | |
| Vimentin Antibody | Epitomics | 4211-1 |
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