Summary

Ultralydsvejledt Transtorakal intramyocardial Injektion i mus

Published: August 05, 2014
doi:

Summary

Ekkokardiografi-guidede perkutan intramyocardial injektion er en effektiv, pålidelig og målrettes modalitet til levering af genoverførsel agenter eller celler i murine hjerte. Efter trinene i denne protokol, kan operatøren hurtigt blive kompetent i denne alsidige, minimalt invasiv teknik.

Abstract

Murine modeller af hjerte-kar-sygdom er vigtige for at undersøge patofysiologiske mekanismer og udforske potentielle regenererende behandlinger. Eksperimenter med myokardie injektion i øjeblikket udføres af direkte kirurgisk adgang gennem en torakotomi. Mens praktisk, når udført på tidspunktet for en anden eksperimentel manipulation såsom kranspulsåreombinding, behovet for en invasiv procedure til intramyocardial levering begrænser potentielle eksperimentelle design. Med stadigt forbedre ultralyd opløsning og avancerede invasive billeddiagnostiske metoder, er det nu muligt at rutinemæssigt udføre ultralyd-vejledt perkutan intramyocardial injektion. Denne modalitet effektivt og pålideligt leverer midler til et målrettet region myokardiet. Fordele ved denne teknik omfatter undgåelse af kirurgisk morbiditet, mulighed for at målrette områder af myocardium selektivt ved hjælp af ultralyd, og muligheden for at levere injektionsmidlet til myocardium ved multiple, forudbestemte tidsintervaller. Med praktiseres teknik, komplikationer fra intramyocardial injektion er sjældne, og mus hurtigt vende tilbage til normal aktivitet på nyttiggørelse fra bedøvelsesmiddel. Efter trinene i denne protokol, kan operatøren med grundlæggende ekkokardiografi erfaring hurtigt blive kompetent i denne alsidige, minimalt invasiv teknik.

Introduction

Hjertesygdom er den hyppigste dødsårsag for både mænd og kvinder i USA, der tegner sig for 600.000 dødsfald årligt 1. Murine modeller af hjerte-kar-sygdom er kritisk vigtige for at undersøge patofysiologiske mekanismer og for at udforske mulige behandlinger. Myocardial levering af genterapivektorer stamceller, modificerede RNA og andre terapeutiske midler tillader undersøgelse af deres terapeutiske potentiale for hjertesygdomme 2-7. I øjeblikket er der begrænsede muligheder for myokardie levering af terapeutiske midler i musemodeller 6. Intramyocardial injektion under direkte visualisering er almindeligt anvendt, men kræver en sternotomi eller torakotomi og er begrænset til det belyste område af hjertet. Mens praktisk, når udført på tidspunktet for en anden eksperimentel manipulation såsom LAD-ligering, der er behov for en invasiv procedure til intramyocardial levering begrænser potentielle eksperimentelle design og indfører enDERLIGERE effekter fra proceduren (f.eks fibrose skyldes thoracotomi). Perkutan perikardial levering af virale vektorer er blevet rapporteret, men stedet og distribution af terapeutisk middel ikke er homogen og er vanskelig at kontrollere 8. Perkutan koronar injektion resulterer i mere homogen fordeling af injicerede materiale, men effektiv og reproducerbar koronar levering er udfordrende i murine modeller.

Her beskriver vi en lukket kiste intramyocardial indsprøjtning teknik, der gør det muligt for minimalt invasiv, operatør kontrolleret målretning af terapeutiske midler ved hjælp af ultralyd. Teknikken er let at lære, overflødiggør behovet for torakotomi eller sternotomi og deres ledsagende eksperimentelle komplikationer, og giver større fleksibilitet med hensyn til tidspunktet og steder af intramyocardial injektion. Således ekkokardiografi-assisteret intramyocardial injektion udgør en teknisk enkel og meget effektiv metode til at manipuleremyokardiet i murine eksperimentelle modeller.

Protocol

Alle beskrevne trin blev udført under protokoller, der er godkendt af Institutional Animal Care og brug Udvalg Boston Børnehospital. 1. Fremstilling Udfør baseline hjerteundersøgelser anatomisk og funktionel vurdering af ekkokardiografi før begynder injektionsprotokollen, som den optimale faste transducer position intramyocardial injektion ikke kan give de optimale standard udsigt til afgrænsning anatomi og vurdering af funktion. Setup injektion er vist i f…

Representative Results

Murine intramyocardial Injektion med blåt farvestof eller fluorescerende mikrosfærer Injektion af Evans blåt farvestof er nyttig med henblik på uddannelse. Snart efter injektion, aflive mus og fjerne hjertet til at visualisere placeringen af den injicerede blåt farvestof. Figur 5 viser et eksempel på en succesfuld injektion med blåt farvestof infiltrerer myokardiet mid-papillære muskel niveau (figur 5A, område indesluttet den stiplede linje). Evans-bl?…

Discussion

Biologics kan leveres til myokardiet ved direkte intramyocardial injektion, intrapericardial injektion eller indirekte indgivelse via blodbanen. Nylige cellebaserede terapi forsøg i myokardieinfarkt modeller har beskrevet en åben torakotomi tilgang til levering af injektat 12-14. En vigtig faktor for succesen af ​​en myocardial terapeutisk intervention afhænger valget af levering rute. Den højeste lokale dosis biologisk opnås ved intramyocardial levering 15,16. Intramyocardial injektion un…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

TWP was funded by the Irish Cardiac Society Brian McGovern Travelling Fellowship. WTP was funded by R01 HL095712 and an AHA Established Investigator Award.

Materials

Vevo 2100 ultrasound imaging system  Visualsonics
Vevo Integrated Rail System III Visualsonics
Microscan MS400 transducer Visualsonics
Microscan MS550D transducer Visualsonics
PrecisionGlide needles BD 305128 30G x 1 inch
1cc slip tip syringe Exel International  26048 or equivalent
Gastight 50ul glass syringes Hamilton  1705
Trypan blue stain (0.4%) Gibco  15250 or equivalent
Isoflurane Baxter AHN3640 or equivalent
Aquasonic 100 Parker Laboratories (01-08) or equivalent
Polystyrene microspheres (red fluorescent) Life Technologies F-8842 or equivalent

References

  1. Kochanek, K. D., et al. Deaths: final data for 2009. Natl Vital Stat Rep. 60 (3), 1-117 .
  2. Strauer, B. E., Steinhoff, G. 10 years of intracoronary and intramyocardial bone marrow stem cell therapy of the heart: from the methodological origin to clinical practice. J Am Coll Cardiol. 58, 1095-1104 (2011).
  3. Cheng, K., et al. Intramyocardial autologous cell engraftment in patients with ischaemic heart failure: a meta-analysis of randomised controlled trials. Heart Lung Circ. 22 (11), 887-894 (2013).
  4. Fischer-Rasokat, U., et al. A pilot trial to assess potential effects of selective intracoronary bone marrow-derived progenitor cell infusion in patients with nonischemic dilated cardiomyopathy: final 1-year results of the transplantation of progenitor cells and functional regeneration enhancement pilot trial in patients with nonischemic dilated cardiomyopathy. Circ Heart Fail. 2, 417-423 (2009).
  5. Seth, S., et al. Percutaneous intracoronary cellular cardiomyoplasty for nonischemic cardiomyopathy: clinical and histopathological results: the first-in-man ABCD (autologous bone marrow cells in dilated cardiomyopathy) trial. J Am Coll Cardiol. 48, 2350-2351 (2006).
  6. Ladage, D., et al. Percutaneous methods of vector delivery in preclinical models. Gene Ther. 19, 637-641 (2012).
  7. Zangi, L., et al. Modified mRNA directs the fate of heart progenitor cells and induces vascular regeneration after myocardial infarction. Nat Biotechnol. 31, 898-907 (2013).
  8. Laakmann, S., et al. Minimally invasive closed-chest ultrasound-guided substance delivery into the pericardial space in mice. Naunyn Schmiedebergs Arch Pharmacol. 386 (3), 227-238 (2013).
  9. Respress, J. L., Wehrens, X. H. Transthoracic echocardiography in mice. J Vis Exp. (39), e1738 (2010).
  10. Wang, G., et al. Characterization of cis-regulating elements and trans-activating factors of the rat cardiac troponin T gene. J Biol Chem. 269, 30595-30603 (1994).
  11. Shimshek, D. R., et al. Codon-improved Cre recombinase (iCre) expression in the mouse. Genesis. 32, 19-26 (2002).
  12. Lichtenauer, M., et al. Intravenous and intramyocardial injection of apoptotic white blood cell suspensions prevents ventricular remodelling by increasing elastin expression in cardiac scar tissue after myocardial infarction. Basic Res Cardiol. 106 (4), 645-655 (2011).
  13. Herrmann, J. L., et al. Postinfarct intramyocardial injection of mesenchymal stem cells pretreated with TGF-alpha improves acute myocardial function. Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol. 299 (1), 371-378 (2010).
  14. Zhou, Y., et al. Direct injection of autologous mesenchymal stromal cells improves myocardial function. Biochem Biophys Res Commun. 390 (3), 902-907 (2009).
  15. Campbell, N. G., Suzuki, K. Cell delivery routes for stem cell therapy to the heart: current and future approaches. J Cardiovasc Transl Res. 5 (5), 713-726 (2012).
  16. Hou, D., et al. Radiolabeled cell distribution after intramyocardial, intracoronary, and interstitial retrograde coronary venous delivery: implications for current clinical trials. Circulation. 112, 150-156 (2005).
  17. Dib, N., et al. Recommendations for successful training on methods of delivery of biologics for cardiac regeneration: a report of the International Society for Cardiovascular Translational Research). JACC Cardiovasc Interv. 3 (3), 265-275 (2010).
  18. Dib, N., et al. Cell therapy for cardiovascular disease: a comparison of methods of delivery. J Cardiovasc Transl Res. 4 (2), 177-181 (2011).

Play Video

Cite This Article
Prendiville, T. W., Ma, Q., Lin, Z., Zhou, P., He, A., Pu, W. T. Ultrasound-guided Transthoracic Intramyocardial Injection in Mice. J. Vis. Exp. (90), e51566, doi:10.3791/51566 (2014).

View Video