Summary

Ultralydveiledet Transtorakal Intramyocardial Injeksjon i Mus

Published: August 05, 2014
doi:

Summary

Ekkokardiografi styrt perkutan intramyocardial injeksjon representerer en effektiv, pålitelig og målrettbar modalitet for levering av genoverføring agenter eller celler inn i murine hjerte. Følge fremgangsmåten i denne protokollen, kan operatøren raskt bli kompetente i denne allsidige, minimal invasiv teknikk.

Abstract

Murine modeller av hjerte-og karsykdommer er viktig for å undersøke patofysiologiske mekanismer og utforske potensielle regenerativ behandling. Forsøk med hjerteinfarkt injeksjon er i dag utføres ved direkte kirurgisk tilgang gjennom en Thoracotomi. Mens praktisk når utført ved en annen eksperimentell manipulasjon slik som koronar arterie ligering, begrenser behovet for en invasiv prosedyre for intramyocardial levering potensielle eksperimentelle design. Med stadig bedre ultralyd oppløsning og avanserte ikke-invasiv bildediagnostikk, er det nå mulig å rutinemessig utføre ultralydveiledet, perkutan intramyocardial injeksjon. Dette modalitet effektivt og pålitelig leverer agenter til en målrettet regionen i hjertemuskelen. Fordeler med denne teknikken inkluderer å unngå kirurgisk sykelighet, anlegget for å målrette regioner av hjertemuskelen selektivt ledes med ultralyd, og muligheten til å levere injektat til myocardium ved flere, forutbestemte tidsintervaller. Med praktisert teknikk, komplikasjoner fra intramyocardial injeksjon er sjeldne, og mus raskt tilbake til normal aktivitet på utvinning fra narkosen. Følge fremgangsmåten i denne protokollen, kan operatøren med grunnleggende ekkokardiografi erfaring raskt bli kompetente i denne allsidige, minimal invasiv teknikk.

Introduction

Hjertesykdom er den ledende dødsårsaken for både menn og kvinner i USA, står for 600.000 dødsfall årlig en. Murine modeller av hjerte-og karsykdommer er kritisk viktig for å undersøke patofysiologiske mekanismer og for å utforske potensielle behandlinger. Hjerteinfarkt levering av genterapi vektorer, stamceller, modifiserte RNA, og andre terapeutiske midler tillater undersøkelse av deres terapeutiske potensialet for hjertesykdom 2-7. For tiden er det begrensede muligheter for hjerteinfarkt levering av terapeutiske midler i musemodeller seks. Intramyocardial injeksjon under direkte visualisering er vanlig brukt, men krever en sternotomi eller torakotomi, og er begrenset til det synlige området av hjertet. Mens praktisk når utført ved en annen eksperimentell manipulasjon som LAD ligering, begrenser behovet for en invasiv prosedyre for intramyocardial levering potensielle eksperimentelle design og innfører endditional effekter fra prosedyren (f.eks fibrose skyldes torakotomi). Perkutan perikardial levering av virale vektorer er blitt rapportert, men området og distribusjon av terapeutisk middel ikke er homogent, og er vanskelig å kontrollere 8.. Perkutan koronar injeksjon gir mer homogen fordeling av injisert materiale, men effektiv og reproduserbar koronar levering er utfordrende i murine modeller.

Her beskriver vi en lukket kiste intramyocardial injeksjonsteknikk som gjør at minimalt invasiv, operatør kontrollert målretting av terapeutiske midler med ultralyd veiledning. Teknikken er lett å lære, fjerner behovet for Thoracotomi eller sternotomi og deres tilhørende eksperimentelle komplikasjoner, og gir større fleksibilitet på timing og områder av intramyocardial injeksjon. Således representerer ekkokardiografi assistert injeksjon intramyocardial en teknisk enkel og meget effektiv metode for å manipuleremyokard i murine eksperimentelle modeller.

Protocol

Alle beskrevne trinnene ble utført under protokoller godkjent av Institutional Animal Care og bruk komité Boston Children Hospital. 1. Forberedelse Utfør baseline hjerte anatomisk og funksjonell vurdering ved ekkokardiografi før start av injeksjon protokollen, som den optimale fast svinger posisjon for intramyocardial injeksjon ikke kan gi den optimale standardvisninger for opptegning anatomi og vurdering av funksjon. Injeksjons oppsettet er vist i figurene 1…

Representative Results

Murine Intramyocardial Injeksjon med blått fargestoff eller Fluorescent Mikrokuler Injeksjon av Evan blått fargestoff er nyttig for opplæringsformål. Straks etter injeksjonen, avlive musen og fjerne hjertet for å visualisere plasseringen av den injiserte blått fargestoff. Figur 5 viser et eksempel på en vellykket injeksjon, med blått fargestoff infiltrerende myokardet ved mid-papillær muskelnivå (figur 5A, region vedlagte med stiplet linje). Evans bl?…

Discussion

Biologiske kan leveres til hjertemuskelen ved direkte intramyocardial injeksjon, intrapericardial injeksjon, eller indirekte administrasjon via blodet. Nye cellebasert behandlingsstudier i hjerteinfarkt modeller har beskrevet en åpen torakotomi tilnærming til levering av injektat 12-14. En viktig faktor i suksessen til et hjerteinfarkt terapeutisk intervensjon hengsler på valg av leveringsruten. Den høyeste lokale dose av biologisk oppnås ved intramyocardial leverings 15,16. Intramyocardial in…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

TWP was funded by the Irish Cardiac Society Brian McGovern Travelling Fellowship. WTP was funded by R01 HL095712 and an AHA Established Investigator Award.

Materials

Vevo 2100 ultrasound imaging system  Visualsonics
Vevo Integrated Rail System III Visualsonics
Microscan MS400 transducer Visualsonics
Microscan MS550D transducer Visualsonics
PrecisionGlide needles BD 305128 30G x 1 inch
1cc slip tip syringe Exel International  26048 or equivalent
Gastight 50ul glass syringes Hamilton  1705
Trypan blue stain (0.4%) Gibco  15250 or equivalent
Isoflurane Baxter AHN3640 or equivalent
Aquasonic 100 Parker Laboratories (01-08) or equivalent
Polystyrene microspheres (red fluorescent) Life Technologies F-8842 or equivalent

References

  1. Kochanek, K. D., et al. Deaths: final data for 2009. Natl Vital Stat Rep. 60 (3), 1-117 .
  2. Strauer, B. E., Steinhoff, G. 10 years of intracoronary and intramyocardial bone marrow stem cell therapy of the heart: from the methodological origin to clinical practice. J Am Coll Cardiol. 58, 1095-1104 (2011).
  3. Cheng, K., et al. Intramyocardial autologous cell engraftment in patients with ischaemic heart failure: a meta-analysis of randomised controlled trials. Heart Lung Circ. 22 (11), 887-894 (2013).
  4. Fischer-Rasokat, U., et al. A pilot trial to assess potential effects of selective intracoronary bone marrow-derived progenitor cell infusion in patients with nonischemic dilated cardiomyopathy: final 1-year results of the transplantation of progenitor cells and functional regeneration enhancement pilot trial in patients with nonischemic dilated cardiomyopathy. Circ Heart Fail. 2, 417-423 (2009).
  5. Seth, S., et al. Percutaneous intracoronary cellular cardiomyoplasty for nonischemic cardiomyopathy: clinical and histopathological results: the first-in-man ABCD (autologous bone marrow cells in dilated cardiomyopathy) trial. J Am Coll Cardiol. 48, 2350-2351 (2006).
  6. Ladage, D., et al. Percutaneous methods of vector delivery in preclinical models. Gene Ther. 19, 637-641 (2012).
  7. Zangi, L., et al. Modified mRNA directs the fate of heart progenitor cells and induces vascular regeneration after myocardial infarction. Nat Biotechnol. 31, 898-907 (2013).
  8. Laakmann, S., et al. Minimally invasive closed-chest ultrasound-guided substance delivery into the pericardial space in mice. Naunyn Schmiedebergs Arch Pharmacol. 386 (3), 227-238 (2013).
  9. Respress, J. L., Wehrens, X. H. Transthoracic echocardiography in mice. J Vis Exp. (39), e1738 (2010).
  10. Wang, G., et al. Characterization of cis-regulating elements and trans-activating factors of the rat cardiac troponin T gene. J Biol Chem. 269, 30595-30603 (1994).
  11. Shimshek, D. R., et al. Codon-improved Cre recombinase (iCre) expression in the mouse. Genesis. 32, 19-26 (2002).
  12. Lichtenauer, M., et al. Intravenous and intramyocardial injection of apoptotic white blood cell suspensions prevents ventricular remodelling by increasing elastin expression in cardiac scar tissue after myocardial infarction. Basic Res Cardiol. 106 (4), 645-655 (2011).
  13. Herrmann, J. L., et al. Postinfarct intramyocardial injection of mesenchymal stem cells pretreated with TGF-alpha improves acute myocardial function. Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol. 299 (1), 371-378 (2010).
  14. Zhou, Y., et al. Direct injection of autologous mesenchymal stromal cells improves myocardial function. Biochem Biophys Res Commun. 390 (3), 902-907 (2009).
  15. Campbell, N. G., Suzuki, K. Cell delivery routes for stem cell therapy to the heart: current and future approaches. J Cardiovasc Transl Res. 5 (5), 713-726 (2012).
  16. Hou, D., et al. Radiolabeled cell distribution after intramyocardial, intracoronary, and interstitial retrograde coronary venous delivery: implications for current clinical trials. Circulation. 112, 150-156 (2005).
  17. Dib, N., et al. Recommendations for successful training on methods of delivery of biologics for cardiac regeneration: a report of the International Society for Cardiovascular Translational Research). JACC Cardiovasc Interv. 3 (3), 265-275 (2010).
  18. Dib, N., et al. Cell therapy for cardiovascular disease: a comparison of methods of delivery. J Cardiovasc Transl Res. 4 (2), 177-181 (2011).
check_url/kr/51566?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Prendiville, T. W., Ma, Q., Lin, Z., Zhou, P., He, A., Pu, W. T. Ultrasound-guided Transthoracic Intramyocardial Injection in Mice. J. Vis. Exp. (90), e51566, doi:10.3791/51566 (2014).

View Video