Summary

एकल अणु प्रतिदीप्ति माइक्रोस्कोपी द्वारा रिसेप्टर गतिशीलता के उच्च संकल्प Spatiotemporal विश्लेषण

Published: July 25, 2014
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Summary

This protocol describes how to use total internal reflection fluorescence microscopy to visualize and track single receptors on the surface of living cells and thereby analyze receptor lateral mobility, size of receptor complexes as well as to visualize transient receptor-receptor interactions. This protocol can be extended to other membrane proteins.

Abstract

एकल अणु माइक्रोस्कोपी उन पहलू (जैसे., कैनेटीक्स, विभिन्न राज्यों और आबादी, क्षणिक बातचीत के सह – अस्तित्व) आम तौर पर कलाकारों की टुकड़ी माप में छिपे हुए हैं, जो इस तरह के रूप के विषय में विशेष रूप से, संकेतन अणुओं के व्यवहार का विश्लेषण करने के लिए एक शक्तिशाली दृष्टिकोण के रूप में उभर रहा है मानक जैव रासायनिक या माइक्रोस्कोपी तरीकों के साथ प्राप्त की. इस प्रकार, इस तरह रिसेप्टर रिसेप्टर बातचीत के रूप में गतिशील घटनाओं, उच्च spatiotemporal संकल्प के साथ एक जीवित कोशिका में वास्तविक समय में पीछा किया जा सकता. इस प्रोटोकॉल छोटे और चमकदार जैविक fluorophores और सीधे जीवित कोशिकाओं की सतह पर एक रिसेप्टर्स कल्पना करने के लिए कुल आंतरिक प्रतिबिंब प्रतिदीप्ति (TIRF) माइक्रोस्कोपी के साथ लेबलिंग पर आधारित एक विधि का वर्णन करता है. यह दृष्टिकोण एक ठीक, रिसेप्टर्स के स्थानीयकरण रिसेप्टर परिसरों के आकार को मापने, और इस तरह क्षणिक रिसेप्टर रिसेप्टर बातचीत के रूप में गतिशील घटनाओं पर कब्जा करने की अनुमति देता है. प्रोटोकॉल पे करने के लिए एक विस्तृत विवरण प्रदान करता हैनमूना तैयार करने, छवि अधिग्रहण और छवि विश्लेषण सहित एक एकल अणु प्रयोग, rform. एक उदाहरण के रूप में, इस विधि के आवेदन दो जी प्रोटीन युग्मित रिसेप्टर्स का विश्लेषण करने के लिए, यानी., 2 एड्रीनर्जिक और γ-aminobutyric एसिड ग्रुप बी (GABA बी) रिसेप्टर β, बताया जाता है. प्रोटोकॉल अन्य झिल्ली प्रोटीन और अलग सेल मॉडल, अभिकर्मक तरीकों और रणनीतियों लेबलिंग के लिए अनुकूलित किया जा सकता है.

Introduction

कोशिका की सतह पर स्थित रिसेप्टर्स बाह्य वातावरण भावना और इस तरह odorants, आयनों, छोटे न्यूरोट्रांसमीटर और बड़े प्रोटीन हार्मोन के रूप में उत्तेजनाओं की एक किस्म का जवाब. सेलुलर झिल्ली के तरल पदार्थ प्रकृति रिसेप्टर्स और अन्य झिल्ली प्रोटीन के आंदोलनों की अनुमति देता है. यह प्रोटीन परिसरों और ऐसे कार्यात्मक इकाइयों को इकट्ठा करने में और सेल इंटीरियर में संकेत transduce को रिसेप्टर्स द्वारा इस्तेमाल उन लोगों के रूप में क्षणिक प्रोटीन, प्रोटीन बातचीत की घटना के गठन के लिए आवश्यक है. उदाहरण के लिए, सेल सतह रिसेप्टर्स 1 के सबसे बड़े परिवार का गठन जो जी प्रोटीन युग्मित रिसेप्टर्स (GPCRs),, संकेत पारगमन के ठीक tuned विनियमन में शामिल होना प्रतीत होता है और जो di-/oligomers, फार्म करने के लिए सुझाव दिया गया है महत्वपूर्ण शारीरिक और औषधीय परिणाम 2-5 हो सकता है.

एकल अणु माइक्रोस्कोपी सीधे उच्च spatiotemp साथ दृश्यमान करने की काफी संभावना हैमौखिक संकल्प उनकी एसोसिएशन सहित जीवित कोशिकाओं की सतह पर स्थित व्यक्ति रिसेप्टर्स की गतिशील व्यवहार dimers और उच्च आदेश आणविक परिसरों 6-10 बनाने के लिए. यह आमतौर पर अणुओं के हजारों या लाखों लोगों की औसत व्यवहार की रिपोर्ट जो मानक जैव रासायनिक और माइक्रोस्कोपी तरीकों की तुलना में कई लाभ प्रदान करता है.

एक पर्याप्त उज्ज्वल और photostable फ्लोरोफोरे के साथ प्रोटीन लेबलिंग एकल अणु माइक्रोस्कोपी के लिए आवश्यक है. इस प्रोटोकॉल covalently सेल सतह रिसेप्टर्स करने के लिए छोटे और चमकदार जैविक fluorophores संलग्न करने के लिए हाल ही में शुरू की तस्वीर टैग 11 का लाभ लेता है. तस्वीर अचल fluorophore संयुग्मित benzylguanine (फ्लोरोफोरे-बीजी) डेरिवेटिव के साथ लेबल किया जा सकता है जो मानव डीएनए की मरम्मत एंजाइम हे 6 alkylguanine डीएनए alkyltransferase से ली गई एक 20 केडी प्रोटीन टैग है. क्लिप, तस्वीर से ली गई एक और इंजीनियर टैग, बजाय फ्लोरोफोरे सी के साथ लेबल किया जा सकताonjugated benzylcytosine डेरिवेटिव 12.

इस पांडुलिपि में सूचना दी प्रोटोकॉल transfect और लेबल छोटे जैविक fluorophores के साथ 11 रिसेप्टर्स तस्वीर में चिह्नित और जीवित कोशिकाओं 10 की सतह पर एक रिसेप्टर्स या रिसेप्टर परिसरों कल्पना करने के लिए कुल आंतरिक प्रतिबिंब प्रतिदीप्ति (TIRF) माइक्रोस्कोपी का उपयोग कैसे करें. एक extracellularly तस्वीर में चिह्नित सेल सतह प्रोटीन 10 के> 90% लेबलिंग दक्षता में सूचना दी प्रोटोकॉल का परिणाम है. रिसेप्टर परिसरों का आकार और गतिशीलता का विश्लेषण करने के लिए, साथ ही क्षणिक रिसेप्टर रिसेप्टर बातचीत कब्जा करने के लिए एकल अणु डेटा का उपयोग करने के बारे में अधिक जानकारी प्रदान की जाती है. पूरे प्रोटोकॉल का एक योजनाबद्ध कार्यप्रवाह चित्रा 1 में दी गई है. एक उदाहरण के रूप में, चीनी हैम्स्टर अंडाशय तस्वीर में चिह्नित जी प्रोटीन युग्मित रिसेप्टर्स (GPCRs) के साथ (चो) कोशिकाओं के अभिकर्मक के रूप में एक fluorophore-बीजी व्युत्पन्न के साथ लेबलिंग द्वारा पीछा अच्छी तरह से अपने आवेदन quantif के रूप मेंY और मॉनिटर रिसेप्टर di-/oligomerization वर्णित हैं. इस प्रोटोकॉल अन्य सेल सतह प्रोटीन और फ्लोरोसेंट टैग (जैसे., क्लिप), और साथ ही अन्य अभिकर्मक और लेबलिंग तरीकों के लिए बढ़ाया जा सकता है.

Protocol

1. नमूना तैयार Coverslip सफाई नोट: एक धूआं हुड के तहत काम. व्यक्तिगत coverslips कि अलग एक coverslip धारक में कांच coverslips (24 मिमी व्यास) के लिए जगह साफ चिमटी का प्रयोग करें. एक बीकर में coverslips के साथ धारक रखो, और coversli…

Representative Results

वर्णित प्रोटोकॉल अलग झिल्ली प्रोटीन की एक किस्म के लिए लागू किया जा सकता है. एक उदाहरण के रूप में, β 2 एड्रीनर्जिक और GABA बी रिसेप्टर्स के साथ प्राप्त की प्रतिनिधि परिणाम 10 रिपोर्ट कर रहे हैं. ए?…

Discussion

वर्णित प्रोटोकॉल एकल अणु के स्तर पर स्थानिक व्यवस्था, गतिशीलता और सेल सतह रिसेप्टर परिसरों के आकार का विश्लेषण की अनुमति देता है. फ्लोरोसेंट प्रोटीन के उपयोग की तुलना में, उज्जवल और अधिक photostable हैं जो छो?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The development of this protocol was supported by grants from the European Research Council (Advanced Grant TOPAS to M.J.L.) and the Deutsche Forschungsgemeinschaft (Grants CA 1014/1-1 to D.C. and SFB487 to M.J.L.). T.S. was supported by the Alexander von Humboldt Foundation.

Materials

Chloroform AppliChem GmbH A1585 CAUTION: toxic and irritating substance as well as a possible carcinogen
NaOH Sigma-Aldrich S8045 CAUTION: strong base and highly corrosive reagent
Absolute ethanol Sigma-Aldrich 32205
Glass coverslip  Marienfeld-Superior 111640 24 mm diameter, 0.13-0.16 mm thickness
0.2 mm sterile filter Sarstedt 83.1826.001
CHO cells ATCC, USA ATCC CCL-61 Chinese hamster ovary cell line
6-well cell culture plare Nunc 140675
DMEM/F-12 medium GIBCO, Life Technologies 11039-021 Phenol-red free medium
Fetal bovine serum  Biochrom S 0115
Penicillin – streptomycin  Pan Biotech GmbH P06-07 100
Trypsin-EDTA Pan Biotech GmbH P10-23100
Lipofectamine 2000 Invitrogen, Life Technologies 11668-019
Opti-MEM I Reduced Serum Medium Invitrogen, Life Technologies 31985-047
Fluorophore-conjugated benzylguanine  New England BioLabs S9136S SNAP-Surface Alexa Fluor 647. Make a 1 mM stock solution in DMSO. Store at -20°C.
DMSO AppliChem GmbH A1584
Imaging buffer: 137 mM NaCl, 5.4 mM KCl, 2 mM CaCl2, 1 mM MgCl2, 10 mM HEPES, pH 7.3, sterile-filtered
    NaCl AppliChem GmbH A1371
    KCl AppliChem GmbH A3582
    CaCl2 AppliChem GmbH A2303
    MgCl2 AppliChem GmbH A3618
    HEPES AppliChem GmbH A3724
Imaging chamber Molecular Probes, Life Technologies A-7816 Attofluor Cell Chamber, for microscopy
TIRF-M Leica Model: DMI6000B
TIRF objective Leica 11 506 249  HCX PL Apo 100x/1.46 Oil CORR 
EM-CCD camera  Roper Scientific Photometrics Cascade 512B
Temperature controller Pecon Tempcontrol 37-2 digital
ImageJ software NIH, USA http://rsbweb.nih.gov/ij
u-track software Laboratory for computational cell biology, Dept. of Cell Biology, Harvard Medical School, USA http://lccb.hms.harvard.edu/software.html
Matlab software The MathWorks, USA

References

  1. Pierce, K. L., Premont, R. T., Lefkowitz, R. J. Seven-transmembrane receptors. Nat Rev Mol Cell Biol. 3, 639-650 (2002).
  2. Angers, S., Salahpour, A., Bouvier, M. Dimerization: an emerging concept for G protein-coupled receptor ontogeny and function. Annu Rev Pharmacol Toxicol. 42, 409-435 (2002).
  3. Ferré, S., et al. Building a new conceptual framework for receptor heteromers. Nat Chem Biol. 5, 131-134 (2009).
  4. Milligan, G. G. protein-coupled receptor hetero-dimerization: contribution to pharmacology and function. Br J Pharmacol. 158, 5-14 (2009).
  5. Lohse, M. J. Dimerization in GPCR mobility and signaling. Curr Opin Pharmacol. 10, 53-58 (2010).
  6. Ulbrich, M. H., Isacoff, E. Y. Subunit counting in membrane-bound proteins. Nat Methods. 4, 319-321 (2007).
  7. Triller, A., Choquet, D. New concepts in synaptic biology derived from single-molecule imaging. Neuron. 59, 359-374 (2008).
  8. Hern, J. A., et al. Formation and dissociation of M1 muscarinic receptor dimers seen by total internal reflection fluorescence imaging of single molecules. Proc Natl Acad Sci U S A. 107, 2693-2698 (2010).
  9. Kasai, R. S., et al. Full characterization of GPCR monomer-dimer dynamic equilibrium by single molecule imaging. J Cell Biol. 192, 463-480 (2011).
  10. Calebiro, D., et al. Single-molecule analysis of fluorescently labeled G-protein-coupled receptors reveals complexes with distinct dynamics and organization. Proc Natl Acad Sci U S A. 110, 743-748 (2013).
  11. Keppler, A., et al. A general method for the covalent labeling of fusion proteins with small molecules in vivo. Nat Biotechnol. 21, 86-89 (2003).
  12. Gautier, A., et al. An engineered protein tag for multiprotein labeling in living cells. Chem Biol. 15, 128-136 (2008).
  13. Jaqaman, K., et al. Robust single-particle tracking in live-cell time-lapse sequences. Nat Methods. 5, 695-702 (2008).
  14. Saxton, M. J., Jacobson, K. Single-particle tracking: applications to membrane dynamics. Annu Rev Biophys Biomol Struct. 26, 373-399 (1997).

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Sungkaworn, T., Rieken, F., Lohse, M. J., Calebiro, D. High-resolution Spatiotemporal Analysis of Receptor Dynamics by Single-molecule Fluorescence Microscopy. J. Vis. Exp. (89), e51784, doi:10.3791/51784 (2014).

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