Summary

Mus fosterlever Kultur System at dissekere målgenets funktioner på de tidlige og sene stadier af Terminal Erythropoiese

Published: September 09, 2014
doi:

Summary

Vi præsenterer et in vitro-mus fosterlever erythroblast kultur, der dissekerer de tidlige og sene stadier af terminal erythropoiese. Dette system letter funktionel analyse af specifikke gener i forskellige udviklingsstadier.

Abstract

Erythropoiesen indebærer en dynamisk proces, der begynder med engagerede erythroid bristdannende enheder (BFU-Es) efterfulgt af hurtigt delende erythroide kolonidannende enheder (CFU-Es). Efter CFU-Es, celler er morfologisk genkendelige og betegnes generelt terminale erythroblaster. En af udfordringerne for studiet af terminalen erythropoiese er manglen på eksperimentelle metoder til at dissekere genfunktioner i kronologisk måde. I denne protokol, beskriver vi en unik strategi for at bestemme genfunktioner i de tidlige og sene stadier af terminal erythropoiese. I dette system blev mus føtal lever TER119 (moden erythroidcelle markør) negative Erytroblaster oprenset og transduceret med eksogene ekspression af cDNA'er eller små hairpin RNA'er (shRNAs) for generne af interesse. Cellerne blev efterfølgende dyrket i medium indeholdende andre end erythropoietin (Epo) for at opretholde deres stamfader fase i 12 timer samtidig med at de eksogene cDNA'er eller shRNAs vækstfaktorerat udtrykke. Cellerne blev ændret til Epo mediet efter 12 timer for at inducere celledifferentiering og proliferation, mens de eksogene genetiske materiale allerede blev udtrykt. Denne protokol letter analyse af gen-funktioner i den tidlige fase af terminal erythropoiese. At studere sent stadium terminal erythropoiese blev cellerne straks dyrket i Epo mediet efter transduktion. På denne måde blev de celler, der allerede differentierede til den sene fase af terminal erythropoiese når de transducerede genetiske materiale blev udtrykt. Vi anbefaler en generel anvendelse af denne strategi, der ville hjælpe med at forstå detaljerede gen funktioner i forskellige stadier af terminal erythropoiese.

Introduction

Erythropoiese er processen differentiering af multipotente hæmatopoietiske stamceller til modne erythrocytter. Denne trinvise proces omfatter dannelsen af engagerede erythroide bristdannende enheder (BFU-E), de hurtigt delende erythroide kolonidannende enheder (CFU-E), og morfofonologiske genkendelige erythroblaster 1,2. Terminal erytropoiese fra CFU-E stamceller indebærer sekventiel erythropoietin-afhængige og uafhængige trin 2,3. I den tidlige fase af terminal erythropoiese erythropoietin (EPO) bindes til sin receptor på celleoverfladen og fremkalder en række downstream signalveje, der forhindrer celle apoptose og fremme hurtige celledelinger og genekspression 1,4. I den sene fase af terminal erythropoiese erytroblaster undergår terminal cellecyklus exit, kromatin og kerne kondens, og ekstrudering af de stærkt kondenseret kerner 5.

Vores forståelse af terminalerythropoiesen har i høj grad forbedret i de seneste årtier, hvilket i høj grad skyldes den vellykkede brug af flere in vitro og in vivo musemodeller 6-9. Blandt disse modeller in vitro-dyrkning af muse føtal lever Erytroblaster giver mange fordele, herunder den lethed celle oprensning, hurtig proliferation og differentiering, og tættere efterligner den menneskelige erythropoiese 10,11. I dette system kan et stort antal af erythroide stamceller fra mus føtale levere let isoleres ved enkelt trin oprensning af TER119 (en markør for de modne erythroide celler) negative erythroblaster. I løbet af to-dages kultur erythroblaster kan differentieringen af disse celler blive overvåget af en flowcytometrisk analyse baseret på overflade ekspression af transferrin-receptoren (CD71) og TER119 antigenet 12. Desuden kan enucleation af terminalt differentiering erytroblaster påvises ved en DNA-maker (Hoechst 33342) 13. Endvidere de oprensede stamceller kan genetisk modificeret ved exogen ekspression af cDNA'er eller små hårnål RNA'er (shRNAs) for generne af interesse, hvilket letter mekanistiske studier af funktionerne af genekspression på erythropoiese 11,13,14.

På den anden side kan den hurtige celle vækst være et tveægget sværd, eftersom det er vanskeligt at karakterisere genfunktioner i forskellige stadier af terminal erythropoiese. I de fleste tilfælde er det vanskeligt at afgøre, om et specifikt gen fungerer i den tidlige fase af terminal erythropoiese siden på det tidspunkt, cDNA'erne eller shRNAs udtrykte cellerne allerede passeret den tidlige fase. For at løse dette problem, har vi udviklet et unikt system til at dissekere de tidlige og sene stadier af terminal erythropoiese. For den tidlige fase af terminal erythropoiese genmodificerede TER119 negative erythroblaster blev dyrket i Epo-frit medium, men som indeholder stamceller (SCF), IL-6 og FLT3ligand til at opretholde deres stamfader status og tillade de transducerede cDNA'er eller shRNA ekspression 13. Cellerne blev ændret til Epo medium efter 12 timer for at inducere celleproliferation og differentiering. På denne måde, når cellerne begyndte at skelne de transducerede cDNA'er eller shRNAs allerede udtrykkes. For sent stadium terminal erythropoiese TER119 negative erythroblaster blev dyrket i Epo holdigt medium umiddelbart efter transduktion. Derfor kan man analysere de funktioner af generne af interesse i den sene fase af terminal erythropoiese. Sammenfattende vil en bred anvendelse af dette system hjælpe dissekere genfunktioner i forskellige stadier af terminal erythropoiese.

Protocol

De i denne protokol beskrevne eksperimenter blev udført i overensstemmelse med de retningslinjer og regler, der er fastsat ved Northwestern University Institutional Animal Care og brug Udvalg. 1. Fremstilling af Kultur Medium Forbered fibronektin løsning. Der tilsættes 1 ml vand til et hætteglas af humant fibronectin (1 mg). Lad opløsningen i vævskultur hætte i 30 minutter uden omrøring. Overfør den samlede væske til 50 ml PBS for at gøre en endelig koncentration på 20…

Representative Results

Figur 1 skitserer de eksperimentelle strategier. Protokollen består af to uafhængige betingelser for at målrette de funktioner, som signalmolekyler i de tidlige og sene stadier af terminal erythropoiese. TER119 negative fosterleverceller Erytroblaster blev oprenset fra E13.5 mus fosteret. Flowcytometrisk analyse af føtale lever erythroide celler før og efter oprensning viste, at rensningen var effektiv (figur 2A og 2B). På det tidlige stadium af terminale erythrop…

Discussion

Her præsenterer vi et unikt system til kronologisk analysere mus fosterlever terminal erythropoiese. Gennem anvendelse af forskellige dyrkningsbetingelser, vi med succes dissekeret terminal erytropoiese i tidlige og sene stadier. Dette er især vigtigt for at bestemme de mekanismer af gener med flere funktioner. For eksempel Rac GTPaser spille vigtige roller i forskellige stadier af terminal erythropoiese. Hæmning af Rac GTPaser i den tidlige fase af terminale erytropoiese påvirkninger celledifferentiering og prolife…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denne undersøgelse blev støttet af NIH R00HL102154, og en American Society of Hematology lærd tildeling til P Ji.

Materials

Iscove's Modified Dulbecco's MediumIMDM (IMDM) Gibco 12440-053
Fetal bovine serum (FBS) GEMINI Bio-product 700-102P
b-mecaptoethanol Sigma M6250 0.1 M in IMDM,  4℃stock
Penicillin-Streptomycin solution Hyclone SV30010 100 X
L-Glutamine Hyclone SH30034.01 200 mM
Stem cell factor (SCF) STEMCELL TECH 2630 100 ng/ul, -20℃ stock
Mouse FIT3 Ligand (Flt-3L) BD Biosciences  14-8001-80
Mouse Recombinant Interleukin-6 (IL-6)  GEMINI Bio-product 300-327P
fibronectin BD Biosciences  354008
Bovine Serum Albumin (BSA) STEMCELL TECH 9300 10% stock in IMDM
Insulin solution, human Sigma I9278 4℃ stock
holo-transferrin human Sigma T0665 50 mg/ml in Water -20℃ stock
Erythropoietin(Epo) PROCRIT NOC 59676-303-00 3,000 U/ml stock
Streptavidin particles Plus BD Pharmingen 557812
EasySep Magnet STEMCELL TECH 18000
Polypropylene Round-Bottom Tube, 5 ml FALCON 352063

References

  1. Hattangadi, S. M., Wong, P., Zhang, L., Flygare, J., Lodish, H. F. From stem cell to red cell: regulation of erythropoiesis at multiple levels by multiple proteins, RNAs, and chromatin modifications. Blood. 118 (24), 6258-6268 (2011).
  2. Richmond, T. D., Chohan, M., Barber, D. L. Turning cells red: signal transduction mediated by erythropoietin. Trends in cell biology. 15 (3), 146-155 (2005).
  3. Eshghi, S., Vogelezang, M. G., Hynes, R. O., Griffith, L. G., Lodish, H. F. Alpha4beta1 integrin and erythropoietin mediate temporally distinct steps in erythropoiesis: integrins in red cell development. The Journal of cell biology. 177 (5), 871-880 (2007).
  4. Koury, M. J., Bondurant, M. C. Maintenance by erythropoietin of viability and maturation of murine erythroid precursor cells. Journal of cellular physiology. 137 (1), 65-74 (1988).
  5. Ji, P., Yeh, V., Ramirez, T., Murata-Hori, M., Lodish, H. F. Histone deacetylase 2 is required for chromatin condensation and subsequent enucleation of cultured mouse fetal erythroblasts. Haematologica. 95 (12), 2013-2021 (2010).
  6. Dumitriu, B., et al. Sox6 cell-autonomously stimulates erythroid cell survival, proliferation, and terminal maturation and is thereby an important enhancer of definitive erythropoiesis during mouse development. Blood. 108 (4), 1198-1207 (2006).
  7. Rector, K., Liu, Y., Van Zant, G. Comprehensive hematopoietic stem cell isolation methods. Methods in molecular biology. 976, 1-15 (2013).
  8. Rossi, L., Challen, G. A., Sirin, O., Lin, K. K., Goodell, M. A. Hematopoietic stem cell characterization and isolation. Methods in molecular biology. 750, 47-59 (2011).
  9. Choi, H. S., Lee, E. M., Kim, H. O., Park, M. I., Baek, E. J. Autonomous control of terminal erythropoiesis via physical interactions among erythroid cells. Stem cell research. 10 (3), 442-453 (2013).
  10. Bhatia, H., et al. Short-chain fatty acid-mediated effects on erythropoiesis in primary definitive erythroid cells. Blood. 113 (25), 6440-6448 (2009).
  11. Zhang, J., Socolovsky, M., Gross, A. W., Lodish, H. F. Role of Ras signaling in erythroid differentiation of mouse fetal liver cells: functional analysis by a flow cytometry-based novel culture system. Blood. 102 (12), 3938-3946 (2003).
  12. Socolovsky, M., et al. Ineffective erythropoiesis in Stat5a(-/-)5b(-/-) mice due to decreased survival of early erythroblasts. Blood. 98 (12), 3261-3273 (2001).
  13. Ji, P., Jayapal, S. R., Lodish, H. F. Enucleation of cultured mouse fetal erythroblasts requires Rac GTPases and mDia2. Nature cell biology. 10 (3), 314-321 (2008).
  14. Chida, D., Miura, O., Yoshimura, A., Miyajima, A. Role of cytokine signaling molecules in erythroid differentiation of mouse fetal liver hematopoietic cells: functional analysis of signaling molecules by retrovirus-mediated expression. Blood. 93 (5), 1567-1578 (1999).
  15. Patel, V. P., Lodish, H. F. A fibronectin matrix is required for differentiation of murine erythroleukemia cells into reticulocytes. The Journal of cell biology. 105 (6 Pt 2), 3105-3118 (1987).
  16. Udupa, K. B., Lipschitz, D. A. Endotoxin-induced suppression of erythropoiesis: the role of erythropoietin and a heme synthesis stimulating factor. Blood. 59 (6), 1267-1271 (1982).
  17. Koury, M. J., Sawyer, S. T., Brandt, S. J. New insights into erythropoiesis. Current opinion in hematology. 9 (2), 93-100 (2002).

Play Video

Cite This Article
Zhao, B., Mei, Y., Yang, J., Ji, P. Mouse Fetal Liver Culture System to Dissect Target Gene Functions at the Early and Late Stages of Terminal Erythropoiesis. J. Vis. Exp. (91), e51894, doi:10.3791/51894 (2014).

View Video