Summary

Utarbeidelse av Synaptic Plasma Membran og postsynaptiske Density Proteiner Ved hjelp av en Discontinuous sukrosegradient

Published: September 03, 2014
doi:

Summary

Denne artikkelen beskriver anrikning av proteiner forbundet med den synaptiske plasmamembranen ved ultrasentrifugering på en diskontinuerlig sukrosegradient. Den etterfølgende fremstilling av post-synaptiske tetthet proteiner er også beskrevet. Proteinpreparater er egnet for western blotting eller 2D DIGE analyse.

Abstract

Neuronal subcellulære fraksjoneringsteknikker tillater kvantifisering av proteiner som er trafikkert til og fra synapse. Som opprinnelig ble beskrevet i slutten av 1960-tallet, kan proteiner forbundet med den synaptiske plasmamembranen bli isolert ved ultrasentrifugering i en sukrose-densitets-gradient. Når synaptiske membraner er isolert, kan det makromolekylære kompleks kjent som post-synaptiske densitet deretter isolert på grunn av sin uoppløselighet vaskemiddel. Teknikkene som brukes til å isolere synaptiske plasmamembraner og post-synaptiske tetthet proteiner forblir i hovedsak de samme etter 40 år, og er mye brukt i dagens nevrovitenskap forskning. Denne artikkelen beskriver fraksjonering av proteiner forbundet med den synaptiske plasmamembranen og post-synaptiske tetthet ved hjelp av en diskontinuerlig sukrosegradient. Resulterende proteinpreparater er egnet for western blotting eller 2D DIGE analyse.

Introduction

Neuroner kommuniserer gjennom synapser, og kvaliteten av denne kommunikasjonen er regulert i stor grad ved endringer i sammensetningen av proteiner i synapsen. Spesielt proteiner som ligger i den postsynaptiske tetthet delta i neuronal kommunikasjon ved intimt stillasnevrotransmitterreseptorer med sine signaltransduksjonsveiene systemer en. Videre er varige endringer i styrken av synaptisk effektivitet kontrollert ved tilsetning eller fjerning av reseptorer på postsynaptiske tetthet 1-6. Derfor er isolering og kvantifisering av synaptiske proteiner en nødvendig og nyttig teknikk for å få innsikt i de måter som nevronene reagerer på stimuli og endre synaptiske effekt 7. Denne artikkelen beskriver en vanlig teknikk for å isolere synaptiske proteiner fra gnagere hjernevev etter ultracentrifugation på diskontinuerlige sakkarosegradienter. Den synaptiske plasmamembran brøkdel kan bli beriket og isolert basert pådens tetthet på sukrose, som er empirisk bestemt til å være lik 1,2 M sukrose.

Avhengig av den biologiske spørsmålet kan subcellulære fraksjoner separeres ved kontinuerlige eller diskontinuerlige gradienter av enten sukrose eller Percoll. Kontinuerlige gradienter tillate separasjon av proteiner i flere fraksjoner; Dette kan være spesielt nyttig for å demonstrere den ko-lokalisering av proteinene i løpet av en gitt fraksjon 8. Imidlertid er fremstillingen av kontinuerlige graderinger mer arbeidskrevende og er ikke nødvendig for mange anvendelser. Diskontinuerlige gradienter er forholdsvis lettere å forberede og kan brukes til å separere proteiner i et par, generelt definerte fraksjoner. Diskontinuerlige gradienter som er sammensatt av tre lag av sucrose øker molaritet har blitt mye brukt for å isolere proteiner forbundet med den synaptiske plasmamembranen (SPM). Dette synaptiske plasmamembran brøkdel kan behandles videre til den postsynaptiske tetthet fraction (PSD) av vaskemiddelbehandling og isolering av vaskemiddel-uløselige fraksjonen.

Når denne prosessen ble først beskrevet i 1960 9,10, ble elektronmikroskopi brukes til å demonstrere de organeller og membraner som grovt definerer den synaptiske plasmamembranen og post-synaptiske tetthet fraksjoner 9-14. Disse studiene viste inkludering av pre-og post-synaptiske membraner og synaptiske vesikler i SPM fraksjon; etter at vaskemiddelbehandling primært elektrontette, post-synaptiske tettheter var synlig. I fremgangsmåten, blir en hypotonisk sjokk som brukes til å klemme ut de synaptiske prosesser fra cellelegemet 10. Dette trinnet tar fordel av det faktum at mitokondriene er mer motstandsdyktig overfor osmotisk sjokk og forbli intakt, og slik at de sedimentere på bunnen av sukrose gradient (figur 1).

Ved hjelp av denne samme berikelse teknikk, var de SPM og PSD fraksjoner første biokjemiskdefinert ved polyakrylamidgel-elektroforese, og sekvensering av de store protein-komponenter 15-17. Deretter western blot-analyse ble brukt for å påvise og kvantifisere nivåene av synaptiske proteiner, og videre definere disse fraksjoner (figur 2). Vi har brukt denne teknikken i våre laboratorier for å kvantifisere endringer i de synaptiske nivåer av dopamin transporter som oppstår når Slc6a3 locus er duplisert i mus 18. Vi har også brukt denne teknikken i NMDA reseptor mangelfull mus å avdekke synapse spesifikke reduksjoner i proteiner som er en del av DISC1 interactome 19.

Det er tydelig fra western blot analyse at SPM fraksjoner inneholder synaptiske vesikkel membranproteiner, endosome markører, mitokondrie protein, membran assosiert syntetiske enzymer og signaltransduksjon molekyler, så vel som integrerte komponenter av den postsynaptiske tetthet og synaptiske plasmamembraner 20-23. Even PSD fraksjoner kan ha forurensning med rikelig mitokondrie protein, og det kan være nødvendig å utføre en andre gradient sedimentasjon eller flere rensetrinn for å fjerne dem 13. Nylig er kvantitative massespektrometri ga en liste over 100 proteinene i den postsynaptiske densitet alene, så vel som en indikasjon på den relative overflod av disse komponentene 24,25.

Protocol

Følgende protokoll er i samsvar med retningslinjene i den kanadiske Council of Animal Care og er godkjent av Det medisinske fakultet og Pharmacy Animal Care Utvalget ved Universitetet i Toronto. 1. Utarbeide nødvendig reagenser som beskrevet i Tabell 1. Legg protease og fosfatase (om nødvendig) inhibitorer for alle løsningene sukrose, buffere og DDH 2 O i konsentrasjoner som er skissert i Tabell 1. Viktig utføre alle trinnene ved 4 ° C og pre-kul …

Representative Results

Fremstillingen av sukrose tetthetsgradient bør resultere i en klar separering av de tre molare oppløsninger av sukrose (0,8, 1,0, og 1,2 M sukrose). Se figur 3A for et eksempel på gradienten før proteinprøve ble tilsatt. Hvis gradienten er forberedt for mye på forhånd, eller om det er forberedt på en benk overflate med vibrasjoner fra annet utstyr, vil gradient bli kompromittert og riktig separasjon vil ikke oppnås. Hvis et klart skille mellom de tre løsningene ikke er synlig, er det tilrådel…

Discussion

Det er flere trinn i prosedyren som er kritiske for et vellykket resultat. I trinn 3, er det viktig at en ensartet grad av homogenisering er oppnådd for hver prøve. Når homogenisere vevet med motordrevet homogenisator, blir en konstant hastighet brukes ikke bare for rotasjon av stampe, men også med det antall slag. Inkubasjonstiden løpet av osmotisk sjokk bør være nøyaktig, siden utvidet homogenisering eller inkubering i hypoton løsning vil lyserer mitokondrier og forurense SPM prøven.

<p class="jove_conte…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The authors thank Dr. Mike Ehlers and his laboratory members for originally demonstrating the protocol for subcellular fractionation of synaptic plasma membranes. We also thank Wendy Horsfall for management of the mouse colonies. This work was supported by operating grants from CIHR (AJR and AS).

Materials

1M HEPES, pH 7.4 BioShop HEP003.100
HEPES BioShop HEP001.500 
Sucrose  BioShop SUC507.1
EDTA BioBasic EB0185
PMSF BioShop PMS123.5
Aprotinin BioShop APR600.1
Leupeptin BioShop LEU001.1
Pepstatin BioShop PEP605.5
Benzamidine BioShop BEN601.25
Sodium fluoride BioShop SFL001.100
Sodium pyrophosphate BioShop SPP310.100
Sodium orthovanadate BioShop SOV664.10
β-glycerophosphate BioShop GYP001.10
Triton X-100 BioShop TRX506.500
18G x 1 ½” needle BD 305196
1cc syringe BD 309659
Name of Equipment Company Catalog number
Glass Teflon homogenizer Kontes Duall 23 VWR KT885450-0023
IKA Model RW 16 Basic Stirrer IKA Works 2572100
Sorvall SM-24 Fixed Angle Rotor ThermoScientific 29017
Sorvall RC 6 Plus Centrifuge ThermoScientific 46910
Thinwall Polyallomer Tubes (13.2mL) Beckman Coulter 331372
SW 41 Ti Rotor Swinging Bucket Beckman Coulter 331362
Beckman L-80 Floor Ultracentrifuge Beckman Coulter
Thickwall Polycarbonate Tubes (3.5mL) Beckman Coulter 349622
TLA-100.3 Fixed Angle Rotor Beckman Coulter 349481
Beckman TL-100 Tabletop Ultracentrifuge Beckman Coulter

References

  1. Delint-Ramirez, I., et al. In vivo composition of NMDA receptor signaling complexes differs between membrane subdomains and is modulated by PSD-95 and PSD-93. The Journal of Neuroscience : the Official Journal of the Society for Neuroscience. 30, 8162-8170 (2010).
  2. Wang, Q., et al. The psychiatric disease risk factors DISC1 and TNIK interact to regulate synapse composition and function. Mol Psychiatry. 16, (2010).
  3. Ehlers, M. D. Reinsertion or degradation of AMPA receptors determined by activity-dependent endocytic sorting. Neuron. 28, 511-525 (2000).
  4. Tomita, S., Fukata, M., Nicoll, R. A., Bredt, D. S. Dynamic interaction of stargazin-like TARPs with cycling AMPA receptors at synapses. Science. 303, 1508-1511 (2004).
  5. Ehlers, M. D., Heine, M., Groc, L., Lee, M. C., Choquet, D. Diffusional trapping of GluR1 AMPA receptors by input-specific synaptic activity. Neuron. 54, 447-460 (2007).
  6. Bats, C., Groc, L., Choquet, D. The interaction between Stargazin and PSD-95 regulates AMPA receptor surface trafficking. Neuron. 53, 719-734 (2007).
  7. Ehlers, M. D. Activity level controls postsynaptic composition and signaling via the ubiquitin-proteasome system. Nat Neurosci. 6, 231-242 (2003).
  8. Cartier, E. A., et al. A biochemical and functional protein complex involving dopamine synthesis and transport into synaptic vesicles. J Biol Chem. 285, 1957-1966 (2010).
  9. Rodriguez de Lores, A., Alberici, M., De Robertis, E. Ultrastructural and enzymic studies of cholinergic and non-cholinergic synaptic membranes isolated from brain cortex. Journal of Neurochemistry. 14, 215-225 (1967).
  10. Gray, E. G., Whittaker, V. P. The isolation of nerve endings from brain: an electron-microscopic study of cell fragments derived by homogenization and centrifugation. J Anat. 96, 79-88 (1962).
  11. Cotman, C. W., Taylor, D. Isolation and structural studies on synaptic complexes from rat brain. J Cell Biol. 55, 696-711 (1972).
  12. Cotman, C. W., Banker, G., Churchill, L., Taylor, D. Isolation of postsynaptic densities from rat brain. The Journal of Cell Biology. 63, 441-455 (1974).
  13. Carlin, R. K., Grab, D. J., Cohen, R. S., Siekevitz, P. Isolation and characterization of postsynaptic densities from various brain regions: enrichment of different types of postsynaptic densities. The Journal of Cell Biology. 86, 831-845 (1980).
  14. Jones, D. H., Matus, A. I. Isolation of synaptic plasma membrane from brain by combined flotation-sedimentation density gradient centrifugation. Biochim Biophys Acta. 356, 276-287 (1974).
  15. Kennedy, M. B., Bennett, M. K., Erondu, N. E. Biochemical and immunochemical evidence that the “major postsynaptic density protein” is a subunit of a calmodulin-dependent protein kinase. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 80, 7357-7361 (1983).
  16. Moon, I. S., Apperson, M. L., Kennedy, M. B. The major tyrosine-phosphorylated protein in the postsynaptic density fraction is N-methyl-D-aspartate receptor subunit 2B. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 91, 3954-3958 (1994).
  17. Cho, K. O., Hunt, C. A., Kennedy, M. B. The rat brain postsynaptic density fraction contains a homolog of the Drosophila discs-large tumor suppressor protein. Neuron. 9, 929-942 (1992).
  18. Salahpour, A., et al. Increased amphetamine-induced hyperactivity and reward in mice overexpressing the dopamine transporter. Proc Natl Acad Sci U S A. 105, 4405-4410 (2008).
  19. Ma, D. K., et al. Neuronal activity-induced Gadd45b promotes epigenetic DNA demethylation and adult neurogenesis. Science. 323, 1074-1077 (2009).
  20. Budreck, E. C., Scheiffele, P. Neuroligin-3 is a neuronal adhesion protein at GABAergic and glutamatergic synapses. The European Journal of Neuroscience. 26, 1738-1748 (2007).
  21. Wu, J., et al. Arc/Arg3.1 regulates an endosomal pathway essential for activity-dependent beta-amyloid generation. Cell. 147, 615-628 (2011).
  22. Huttner, W. B., Schiebler, W., Greengard, P., De Camilli, P. Synapsin I (protein I), a nerve terminal-specific phosphoprotein. III. Its association with synaptic vesicles studied in a highly purified synaptic vesicle preparation. J Cell Biol. 96, 1374-1388 (1983).
  23. Nagy, A., Baker, R. R., Morris, S. J., Whittaker, V. P. The preparation and characterization of synaptic vesicles of high purity. Brain Res. 109, 285-309 (1976).
  24. Cheng, D., et al. Relative and absolute quantification of postsynaptic density proteome isolated from rat forebrain and cerebellum. Molecular & Cellular Proteomics : MCP. 5, 1158-1170 (2006).
  25. Sheng, M., Hoogenraad, C. C. The postsynaptic architecture of excitatory synapses: a more quantitative view. Annu Rev Biochem. 76, 823-847 (2007).
  26. Sambrook, J., Fritsch, E. F., Maniatis, T. . Molecular cloning : a Laboratory Manual. , (1989).
  27. Eggena, M., et al. Identification of histone H1 as a cognate antigen of the ulcerative colitis-associated marker antibody pANCA. J Autoimmun. 14, 83-97 (2000).
  28. Salahpour, A., et al. Homodimerization of the beta2-adrenergic receptor as a prerequisite for cell surface targeting. J Biol Chem. 279, 33390-33397 (2004).
  29. Bernocco, S., et al. Sequential detergent fractionation of primary neurons for proteomics studies. Proteomics. 8, 930-938 (2008).
  30. Grunewald, T. G., et al. Nuclear localization and cytosolic overexpression of LASP-1 correlates with tumor size and nodal-positivity of human breast carcinoma. BMC Cancer. 7, 198 (2007).
  31. Heimann, K., Percival, J. M., Weinberger, R., Gunning, P., Stow, J. L. Specific isoforms of actin-binding proteins on distinct populations of Golgi-derived vesicles. J Biol Chem. 274, 10743-10750 (1999).
  32. Neff, R. A., Gomez-Varela, D., Fernandes, C. C., Berg, D. K. Postsynaptic scaffolds for nicotinic receptors on neurons. Acta Pharmacol Sin. 30, 694-701 (2009).
  33. Cella, N., Cornejo-Uribe, R. R., Montes, G. S., Hynes, N. E., Chammas, R. The lysosomal-associated membrane protein LAMP-1 is a novel differentiation marker for HC11 mouse mammary epithelial cells. Differentiation. 61, 113-120 (1996).
  34. Otera, H., et al. Peroxisomal targeting signal receptor Pex5p interacts with cargoes and import machinery components in a spatiotemporally differentiated manner: conserved Pex5p WXXXF/Y motifs are critical for matrix protein import. Mol Cell Biol. 22, 1639-1655 (2002).
  35. Goubaeva, F., et al. Cardiac mitochondrial connexin 43 regulates apoptosis. Biochem Biophys Res Commun. 352, 97-103 (2007).
  36. Lamers, K. J., et al. Protein S-100B, neuron-specific enolase (NSE), myelin basic protein (MBP) and glial fibrillary acidic protein (GFAP) in cerebrospinal fluid (CSF) and blood of neurological patients. Brain Res Bull. 61, 261-264 (2003).
  37. Arunachalam, L., et al. Munc18-1 is critical for plasma membrane localization of syntaxin1 but not of SNAP-25 in PC12 cells. Mol Biol Cell. 19, 722-734 (2008).
  38. Brandstatter, J. H., Fletcher, E. L., Garner, C. C., Gundelfinger, E. D., Wassle, H. Differential expression of the presynaptic cytomatrix protein bassoon among ribbon synapses in the mammalian retina. Eur J Neurosci. 11, 3683-3693 (1999).
check_url/kr/51896?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Bermejo, M. K., Milenkovic, M., Salahpour, A., Ramsey, A. J. Preparation of Synaptic Plasma Membrane and Postsynaptic Density Proteins Using a Discontinuous Sucrose Gradient. J. Vis. Exp. (91), e51896, doi:10.3791/51896 (2014).

View Video