Summary

Non terminale Tecniche di prelievo di sangue in Guinea Pigs

Published: October 11, 2014
doi:

Summary

Anche se un modello noto, la cavia rappresenta attualmente una nicchia in scienze animali sperimentali e dati limitati sono disponibili sul esecuzione della maggior parte delle procedure. Qui vi presentiamo quattro diversi approcci alla non-terminale in tecniche di campionamento del sangue in vivo su cavie sia coscienti o anestetizzati.

Abstract

Le cavie possiedono diverse analogie biologiche per l'uomo e sono convalidati modelli animali sperimentali 1-3. Tuttavia, l'uso di cavie rappresenta attualmente una zona relativamente ristretta dei dati di ricerca e descrittivi sulla metodologia specifica è corrispondentemente scarsa. Le caratteristiche anatomiche di cavie sono leggermente diversi da altri modelli di roditori, quindi la modulazione di tecniche di campionamento per ospitare per specie-specifiche differenze, ad es., Rispetto ai topi e ratti, sono necessari per ottenere campioni di qualità sufficiente e di alta. Per quanto sia lungo e breve termine in studi in vivo spesso richiedono ripetuto sangue campionamento la scelta della tecnica deve essere ben considerato, al fine di ridurre lo stress e il disagio negli animali, ma anche per garantire la sopravvivenza, nonché la conformità con i requisiti di dimensione del campione e accessibilità. Campioni di sangue venoso possono essere ottenuti ad un certo numero di siti in cavie ad es., La safena e giugularevene, ogni tecnica contenente sia vantaggi che svantaggi 4,5. Qui, vi presentiamo quattro diverse tecniche di campionamento del sangue sia per cavie coscienti o anestetizzati. Le procedure sono tutte le procedure non-terminali a condizione che i volumi di campione e il numero di campioni non superino le linee guida per la raccolta del sangue negli animali da laboratorio 6. Tutti i metodi descritti sono stati accuratamente testati e applicati per ripetute in vivo prelievo di sangue in studi all'interno della nostra struttura di ricerca.

Introduction

La cavia è un modello valido e convalidato animale sperimentale a causa di un numero di somiglianze biologiche per l'uomo, come l'esigenza di un approvvigionamento alimentare di vitamina C, lipoproteine ​​plasmatiche paragonabili enzimi che metabolizzano e profili delle lipoproteine, così come similitudini in comune con placentazione umana e sviluppo prenatale 1-3,7,8. Questo rende la cavia un modello attraente e adatto per studiare gli effetti delle malattie dieta associata come la malattia non alcolica steatosi epatica, malattie cardiovascolari e gli effetti putativi di carenza di vitamina C, ma anche l'effetto di esempio., Intervento dietetico materno sulla via di sviluppo prole.

Ripetuto prelievo di sangue è spesso richiesto sia lungo e breve termine in studi in vivo. A causa delle differenze anatomiche specie-specifici è necessaria la modulazione della tecnica di campionamento al fine di ottenere campioni di sangue di cavie rispetto ad altri modelli di roditori <sup> 4,5. Questo include la variazione nel corso di vene e arterie, e anche che le cavie non hanno una coda, quindi hanno i requisiti e le diverse opzioni sia per il campionamento e la manipolazione. Campionamento dalla safena o vena tarso, induce il minimo disagio e lo stress negli animali e non richiede anestesia 3,9. Questa tecnica permette ripetuta campioni di piccole quantità di sangue (100-400 ml), ad es., Per determinare i marcatori biochimici nel plasma. Se un campione ancora più piccolo è sufficiente (50-100 ml), questo può facilmente essere ottenuto pungere la vena dell'orecchio. Questa tecnica può anche essere effettuata in animali coscienti ed è utile ad esempio quando si misura la glicemia 10,11. Campionamento dalla vena giugulare consente la raccolta di grandi quantità di sangue (1-2 ml), ma richiede l'anestesia.

Qui, vi presentiamo quattro diverse tecniche di campionamento del sangue sia per cavie coscienti o anestetizzati. Il procedures sono tutte le procedure non-terminali a condizione che i volumi di campione e il numero di campioni non superino le linee guida per la raccolta del sangue negli animali da laboratorio 6. E 'nell'interesse della buona scienza, nonché di benessere degli animali che lo stress dovrebbe essere ridotto al minimo. Di conseguenza, solo ben addestrato e personale competente deve eseguire le procedure sugli animali.

Protocol

Le procedure illustrate sono state eseguite secondo protocolli approvati dal danese Animal Sperimentazione Ispettorato sotto il Ministero dell'alimentazione, dell'agricoltura e della pesca. 1 Prelievo di sangue dal laterale safena o tarsale Vena Eseguire questa procedura senza anestesia e con l'aiuto di un investigatore, una gestione della cavia, e una raccolta del campione. Radere la regione tarsale della zampa posteriore con un rasoio elettrico fino a quand…

Representative Results

Quattro diversi approcci alla non-terminali vivo tecniche di campionamento del sangue in entrambi in cavie coscienti o anestetizzati sono stati presentati. Figura 1 illustra il corso della safena laterale e vena tarsale nella cavia e possibili siti di puntura. Vene dell'orecchio visibili sulla superficie dorsale di un orecchio cavia sono illustrati nella Figura 2 Queste vene possono essere usate per il prelievo di sangue quando è richiesto solo un volume molto pic…

Discussion

Rispetto ai topi e ratti, cavie sono timorosi per natura e devono essere affrontati con calma e gestite correttamente, al fine di ridurre lo stress. Da un punto di vista del benessere degli animali, agendo con cura è naturalmente una priorità; tuttavia, questo sarà anche ridurre il rischio di effetti di ansia associati sui dati raccolti ad es., aumento dei livelli ematici di corticosteroidi e di glucosio 12. Allo stesso modo, la gestione quotidiana sarà abituare gli animali a procedure normali e …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Riconosciamo il sapiente aiuto di Annie B. Kristensen, Elisabeth V. Andersen, Belinda B. Bringtoft ed i custodi degli animali presso il Dipartimento di Medicina Sperimentale, Frederiksberg Campus, Facoltà di Scienze della Salute e Scienze Mediche, Università di Copenhagen, Danimarca. Jacob Lønholdt viene ringraziato per l'eccellente assistenza tecnica per le riprese delle procedure. Questo studio è stato sostenuto in parte dal Centro LIFEPHARM di Farmacologia in vivo e Università di Copenhagen.

Materials

Name of Material/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
Electric shaver Wella (Contura), Denmark 273207 Alternative product may be used. Multiple suppliers
Syringes  B.Braun-Omnifix-F, Germany 9161406V Alternative product may be used. Multiple suppliers
Needles BD Microlance,Spain 301156 Alternative product may be used. Multiple suppliers
Microvette collection tube  Sarstedt, D-51588Nümbrecht, Germany 201,288,100 Alternative product may be used. Multiple suppliers
Accu-Check analyzer Roche A/S Diagnostics, Denmark Alternative product may be used. Multiple suppliers
Heparin 5000 IE/ml LEO Pharma, Denmark Alternative product may be used. Multiple suppliers
Anesthesia Zoletil 50, Chemvet, Denmark Alternative product may be used. Multiple suppliers
Anesthesia Narcoxyl vet 20 mg/ml, Intervet, Denmark Alternative product may be used. Multiple suppliers
Anesthesia Torbugesic vet 10 mg/ml, Scanvet, Denmark Alternative product may be used. Multiple suppliers
Neutral eye ointment Alternative product may be used. Multiple suppliers
Gauze or a cotton swab  Alternative product may be used. Multiple suppliers
Disinfectant (70% alcohol) Alternative product may be used. Multiple suppliers

References

  1. DeOgburn, R., et al. Effects of increased dietary cholesterol with carbohydrate restriction on hepatic lipid metabolism in Guinea pigs. Comp.Med. 62 (2), 109-115 (2012).
  2. Fernandez, M., Volek, J. S. Guinea pigs a suitable animal model to study lipoprotein metabolism, atherosclerosis and inflammation. Nutr Metab (Lond). 3 (17), (2006).
  3. Frikke-Schmidt, H., Tveden-Nyborg, P., Birck, M. M., Lykkesfeldt, J. High dietary fat and cholesterol exacerbates chronic vitamin C deficiency in guinea pigs. Br J Nutr. 105 (1), 54-61 (2011).
  4. Hem, A., Smith, A. J., Solberg, P. Saphenous vein puncture for blood sampling of the mouse, rat, hamster, gerbil, guinea pig, ferret and mink. Lab Anim. 32 (4), 364-368 (1998).
  5. Parasuraman, S., Raveendran, R., Kesavan, R. Blood sample collection in small laboratory animals. J Pharmacol Pharmacother. 1 (2), 87-93 (2010).
  6. Guillen, J. FELASA guidelines and recommendations. J Am Assoc Lab Anim Sci. 51 (3), 311-321 (2012).
  7. Ye, P., Cheah, I. K., Halliwell, B. High fat diets and pathology in the guinea pig Atherosclerosis or liver damage. Biochim Biophys Acta. 1832 (2), 355-364 (2013).
  8. Tveden-Nyborg, P., et al. Maternal vitamin C deficiency during pregnancy persistently impairs hippocampal neurogenesis in offspring of guinea pigs. PLoS One. 7 (10), 12-18391 (2012).
  9. Schjoldager, J. G., Tveden-Nyborg, P., Lykkesfeldt, J. Prolonged maternal vitamin C deficiency overrides preferential fetal ascorbate transport but does not influence perinatal survival in guinea pigs. Br J Nutr. 110 (9), 1573-1579 (2013).
  10. Greulich, S., et al. Secretory products of guinea pig epicardial fat induce insulin resistance and impair primary adult rat cardiomyocyte function. J Cell Mol Med. 15 (11), 2399-2410 (2011).
  11. Swifka, J., Weiss, J., Addicks, K., Eckel, J., Rosen, P. Epicardial fat from guinea pig a model to study the paracrine network of interactions between epicardial fat and myocardium. Cardiovasc Drugs Ther. 22 (2), 107-114 (2008).
  12. Pilny, A. A. Clinical hematology of rodent species. Vet.Clin North Am Exot Anim Pract. 11 (3), 523-vii (2008).
  13. Franco, N. H., Olsson, I. A. Scientists and the 3Rs: attitudes to animal use in biomedical research and the effect of mandatory training in laboratory animal science. Lab Anim. 48 (1), 50-60 (2014).
  14. Van, L. J., et al. eAssessing the application of the 3Rs a survey among animal welfare officers in The Netherlands. Lab Anim. 47 (3), 210-219 (2013).
  15. Sloan, R. C., et al. High doses of ketamine-xylazine anesthesia reduce cardiac ischemia-reperfusion injury in guinea pigs. J Am Assoc Lab Anim Sci. 50 (3), 349-354 (2011).
  16. Jacobson, C. A. A novel anaesthetic regimen for surgical procedures in guinea pigs. Lab Anim. 35 (3), 271-276 (2001).
  17. Saha, J. K., Xia, J., Grondin, J. M., Engle, S. K., Jakubowski, J. A. Acute hyperglycemia induced by ketamine xylazine anesthesia in rats mechanisms and implications for preclinical models. Exp Biol Med(Maywood). 230 (10), 777-784 (2005).
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Cite This Article
Birck, M. M., Tveden-Nyborg, P., Lindblad, M. M., Lykkesfeldt, J. Non-Terminal Blood Sampling Techniques in Guinea Pigs. J. Vis. Exp. (92), e51982, doi:10.3791/51982 (2014).

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