Allergiska reaktioner, som kännetecknas av aktivering av mastceller och basofiler, drivs av tvärbindning av IgE och frisättning av proinflammatoriska mediatorer. En kvantitativ bedömning av allergiska responser kan uppnås genom användning av Evans Blue färgämne för att övervaka förändringar i vaskulär permeabilitet efter allergenutmaning.
Allergiska reaktioner är resultatet av aktivering av mastceller och basofiler och efterföljande frisättning av vasoaktiva och proinflammatoriska mediatorer. Exponering för ett allergen i en sensibiliserad individ kan leda till kliniska symtom som varierar från mindre erytem till livshotande anafylaxi. I laboratoriet har olika djurmodeller utvecklats för att förstå mekanismerna som driver allergiska reaktioner. Häri beskriver vi en detaljerad metod för att mäta förändringar i vaskulär permeabilitet för att kvantifiera lokaliserade allergiska svar. Den lokala anafylaxi analysen rapporterades först på 1920-talet, och har anpassats från den teknik som publicerats av Kojima et al. 2007 1. I denna analys är möss sensibiliserade mot OVA utmanas i vänster öra med bil och i höger öra med OVA. Detta följs av en intravenös injektion av Evans Blue färgämne. Tio minuter efter injicering Evans Blue, är djuret avlivas och färgämnet som extravaserat itill öronen utvinns natten i formamid. Absorbansen för det extraherade färgämnet kvantifieras sedan med en spektrofotometer. Denna metod resulterar pålitligt i en visuell och kvantifierbar manifestation av en lokal allergisk reaktion.
Typ I överkänslighet medieras av antigeninducerad tvärbindning av IgE på ytan av mastceller och basofiler. Detta resulterar i cellulär degranulering och frisättning av vasoaktiva och proinflammatoriska mediatorer såsom histamin, tryptas, och blodplättsaktiverande faktor 2. Efter lanseringen av förformade mediatorer vid degranulering, mastceller syntetiserar och frigör prostaglandiner och leukotriener, vilket ytterligare öka vaskulär permeabilitet 3. Den initiala kliniska svaret sker snabbt och refereras till som en "omedelbar reaktion". I huden, är en wheal-och-flare svar väl synlig inom några minuter av antigen. Beroende på dosen av utmaningen, är det möjligt att observera en "sena svaret" några timmar senare. Sen fas svullnad beror på lokalt ödem och leukocytrekrytering i vävnaderna 2. Histamin, som allmänt anses vara den huvudsakliga medlaren deltar iomedelbara allergiska reaktioner, verkar på histaminreceptor 1 (HR1) uttryckt på fartyg och histamin-receptor 2 (HR2) uttryckt på glatt muskulatur. Den kombinerade effekten ökar blodflödet och vaskulär permeabilitet vid inflammationsstället 4.
En mängd olika djurmodeller av allergi har utvecklats i syfte att studera de mekanismer som är inblandade i allergisk inflammation, inklusive modeller av allergisk astma, systemisk anafylaxi, och lokala anafylaxi. Intravenös färgämne administration har använts för att mäta lokala allergiska reaktioner i djurmodeller för nästan ett sekel, med publikationer som beskriver denna teknik med anor från 1920-talet 5. Kaniner och marsvin var de första djurmodeller används för att testa omedelbara överkänslighetsreaktioner, och de mest känsliga responser i allmänhet finns i örat 5,6. Analysen senare validerats för användning i råttor 7 och möss 8.
Historiskten mängd olika experimentella metoder har använts, inklusive injektion av antigen före injektion av färgämne, injektion av färgämne före injektionen av antigen, och samtidig injektion av färgämne och antigenet. Intravenös färgämne administrering som ett medel för mätning av allergiska svar är en mångsidig analys såsom den kan användas för mätning av aktiva, passiva, och omvända passiva reaktioner 5,9. Många färgämnen har använts för att bedöma allergiska reaktioner, inklusive trypanblått, Pontamine Sky Blue, Evans Blue, Geigy Blue 536, och Indien bläck 5,6,9. En lösning av 0,5% Evans Blue är för närvarande standard färgämne som används för mätning av allergiska reaktioner i huden.
Den anafylaktisk reaktion på utmaningen är övergående; maximal intensitet nås inom 10 – 15 min för färginjektion, och ingen reaktion är synlig om färgämne administreras mer än 30 minuter efter provokation, oberoende av de djurarter som används 9. Kvantifiering av färgämne extravasation var originally erhållas genom att mäta strimmigt storlek såsom indikeras av det blåa färgämnet 7-9. Dessutom kan räkningar av degranulated mastceller kvantifieras genom utskärning hudvävnad från platsen för reaktionen och färgning med toluidinblått 7. Mastcelldegranulering används ofta som en markör för kutan, IgE-medierade allergiska reaktioner, eftersom mastceller är den viktigaste lokala cellpopulation som uttrycker högaffinitets IgE-receptorn FcsRI. Spektrofotometriska tekniker för att mäta färgextravasation in i vävnaden utvecklades för passiva kutana anafylaxi (PCA) i råtta 10 och mus 11 på 1990-talet.
Följande lokala anafylaxi analysprotokoll anpassades från Kojima et al. 1, och utnyttjar hönsägg ovalbumin (OVA) som antigen för framkallande allergiska reaktioner. Emellertid kan andra än OVA-antigener användas om så önskas. Analysen använder sedan Evans Blue färgämne för att övervaka förändringar i vaskulär permeability som uppstår på grund av mastcell IgE tvärbindning och histaminfrisättning.
Många markörer för allergisk sjukdom används för att bedöma styrkan av allergiska reaktioner efter allergenprovokation, inklusive förändringar i nivåer av cirkulerande histamin, Th2 cytokinproduktion och cellrekrytering till bronkoalveolär vätska i fastställandet av luftvägs utmaning. Medan övervakning av förändringar i dessa parametrar är viktiga för att studera allergiska reaktioner, behöver biologiska markörer inte alltid korrelerar med klinisk allergisk sjukdom. Den lokala anafylaxi analys som be…
The authors have nothing to disclose.
The authors would like to acknowledge Dr. Ellen M. Fox for her work regarding this model of local anaphylaxis. This work was supported by the Uniformed Services University of the Health Sciences grant number R073UE.
Name of Material/ Equipment | Company | Catalog Number | Comments/Description |
BALB/c Mice | The Jackson Laboratory | 651 | |
PBS pH 7.4 | Quality Biologic | 114-058-101 | |
Ovalbumin | Sigma | A5503-10G | |
Imject Alum | Thermo Scientific | 77161 | Mix thoroughly before use |
Evans Blue Dye | Sigma | E2129 | |
Formamide | Sigma | 295876 | 99%+ Spectrophotometric grade |
Isoflurane, USP | Phoenix | NDC 57319-474-06 | |
1cc Insulin syringes | BD | 329654 | |
3/10 cc Insulin syringe with 31G needle | Terumo | NDC 100861 | |
27G Needles | BD | 305109 | |
Forceps | F.S.T. | 11000-12 | |
Surgical scissors | F.S.T. | 14070-12 | |
5ml Polystyrene round-bottom tubes | BD Falcon | 352058 | |
1.5ml Microcentrifuge tubes | Medical Supply Partners | 15-1151 | |
15ml Conical tubes | BD Falcon | 352097 | |
Flat-bottom 96 well plate | Costar | 3590 | |
Scotch tape | |||
RC2 Rodent Anesthesia System | VetEquip | 922100 | |
Vortex Genie 2 | Scientific Industries | SI-0236 | Model G560 with 3 inch platform |