Summary

Experimentella och avbildningsmetoder för att pröva fibrinpropp Structures i normala och sjuka stater

Published: April 01, 2015
doi:

Summary

In this manuscript, experimental techniques, including blood preparation, confocal microscopy, and lysis rate analysis, to examine the morphological differences between normal and abnormal clot structures due to diseased states are presented.

Abstract

Fibrin is an extracellular matrix protein that is responsible for maintaining the structural integrity of blood clots. Much research has been done on fibrin in the past years to include the investigation of synthesis, structure-function, and lysis of clots. However, there is still much unknown about the morphological and structural features of clots that ensue from patients with disease. In this research study, experimental techniques are presented that allow for the examination of morphological differences of abnormal clot structures due to diseased states such as diabetes and sickle cell anemia. Our study focuses on the preparation and evaluation of fibrin clots in order to assess morphological differences using various experimental assays and confocal microscopy. In addition, a method is also described that allows for continuous, real-time calculation of lysis rates in fibrin clots. The techniques described herein are important for researchers and clinicians seeking to elucidate comorbid thrombotic pathologies such as myocardial infarctions, ischemic heart disease, and strokes in patients with diabetes or sickle cell disease.

Introduction

Skada på ett blodkärl s endotelbeklädnaden repareras genom den hemostatiska svar, eller bildningen av en blodpropp. När blodet tränger in i den extracellulära matrisen, vävnadsfaktorer aktiverar blodplättar i blodet som underlättar initiering av koagulationskaskaden. Nyckeln mekaniska komponenten i denna läkningsprocessen är fibrinmatrisen, sammansatt av fibrin fibrer som är mycket elastisk och kan upprätthålla stora krafter 1-4. Många forskare har studerat bildandet struktur och funktion av fibrin i stor utsträckning i de senaste decennierna 5-13.

Patienter med sjukdomar som diabetes mellitus och sickle cell har en ökad risk att utveckla trombotiska komplikationer såsom hjärtinfarkt, ischemisk hjärtsjukdom, och stroke 14-19. Över 2 miljoner människor är nyligen diagnostiserats med diabetes mellitus varje år i USA. Det finns två typer av diabetes: typ I, där denorgan underlåter att producera tillräckliga mängder insulin, och typ II, där kroppen blir resistent mot insulin. Bland patienter med diabetes, är hjärt-kärlsjukdom (CVD) orsaken till 80% av sjuklighet och dödlighet i samband med sjukdomen 20,21.

Sicklecellanemi (SCD) är en genetisk blodsjukdom som drabbar mer än 100.000 människor i USA 22. SCD är en punkt-mutation sjukdom som orsakar röda blodkroppar för att bli halvmånformad, vilket gör det svårt för cellerna att passera genom blodvaskulaturen 23. Båda dessa sjukdomstillstånd ökar chanserna att utveckla aterotrombotiska förhållanden i kroppen. En av anledningarna till detta är ett resultat av förändrad fibrin struktur och funktion i sjukdomstillstånd 14,24-26.

I både diabetes och sicklecellanemi, det finns hyperkoagulation och hypofibrinolysis aktivitet som inducerar aterotrombos och hjärt-kärlsjukdom (CVD) jämfört med friska patienter 17,27,28. Det är känt att hypofibrinolysis främjar ateroskleros progression och alstrar återkommande ischemiska händelser för patienter med prematur kranskärlssjukdom 29. I den aktuella manuskriptet, undersökte vi den roll som fibrin fysikaliska egenskaper i denna särskilda miljö. Fibrinkoagel strukturer i icke-sjuka patienter består av tunna fibrer, större porer och generellt mindre tät 14,24. Den ökade porositet och mindre täta fibrinkoagel hos friska patienter har visat sig underlätta fibrinolys 16. I hyperthrombotic förhållanden såsom diabetiker och sicklecellanemi, det finns en ökning av fibrinogen produktion, vilket gör att fibrinogenkoncentration öka från normala nivåer av 2,5 mg / ml hos friska patienter 30-33. Fibrinkoagel bildas i diabetiska patienter har befunnits vara mindre porös, styvare, har fler förgreningspunkter, och tätare i jämförelse med friska, icke-diaBetic patienter 14,24,33-35. Den förändrade fibrin struktur är ett resultat av glykation mekanismer som förekommer i de proteiner som är involverade i koagelbildning. Icke-enzymatisk (irreversibel) glykation uppstår när glukosmolekyler binder till lysinrester på fibrinogenmolekylen, vilket hämmar mänskliga faktorn Xllla (FXIIIa) från rätt tvärbindnings glutamin och lysinrester 33,36,37.

Den strukturella analysen av fibrin-nät, har studerats i stor omfattning på senare tid. I synnerhet har forskarna utnyttjat elektronmikroskopi och 3D-rekonstruktion av fibrin nätverk 38, undersöktes hur både intravaskulära (endotelceller) celler och extravaskulära (fibroblaster och glatta muskelceller) celler påverkar fibrin struktur 39, utnyttjad viskoelastiska och spektralanalys att analysera fibrin strukturer 40, och utvecklade korrelationer mellan fibrin struktur och mekaniska egenskaper med hjälp av experimentella och beräknings närmar 41 </sup>. Fokus för den aktuella studien var att formulera koagel strukturer under simulerade diabetiker och skäran cell trombos förhållanden och använda konfokalmikroskopi för undersökning av struktur och funktion av blodproppar i sjukdomstillstånd. Fibrinkoagel bildades från humant fibrinogen, humant trombin, och FXIIIa. De blodproppar lyserades med hjälp av plasmin. För att simulera diabetes villkor, ökades koncentrationen av fibrinogen inkuberas i glukoslösning för att inducera in vitro fibrinogen glykation. För att simulera sicklecellanemi koagulering förhållanden, höjdes fibrinogenkoncentrationer blandat med sickle-cell hematokrit samlats in från patienter som gjort tidigare av vår grupp 42. Dessa metoder användes för att undersöka struktur och funktioner som är involverade i fibrinkoagel bildning och fibrinolys i sjuka förhållanden, samt de mekanismer som inducerar CVD. Baserat på aktuell information om dessa sjukdomar, de glykerade fibrinkoagel strukturer var tätare med färre and mindre porer. De fibrinkoagel med röda blodkroppar från sicklecellpatienter (RBC) var också tätare och visas aggregering av RBC och agglomererade fibrin kluster. Detta är en väletablerad företeelse som har bestämts tidigare 43. Det var också en hypotes att fibrinolys takten skulle vara betydligt lägre i glykerade fibrinkoagel med och utan minskad plasmin jämfört med friska, normala fibrin. Resultaten visade att för glycerade fibrinkoagel, var signifikant olika lys ränta resultat observerades endast under förhållanden med reducerad plasmin koncentration. Denna experimentella tekniken att använda konfokalmikroskopi erbjuder betydande fördelar jämfört med andra avbildningsmetoder eftersom cellerna och proteiner förblir i sitt nativa tillstånd, vilket möjliggör upptagning av video i realtid av koagulationsaktivitet. Denna metod för syntetiskt inducerande koagulering är också billigare och mer tidseffektivt än att få patientprover och filtrera bort individuellaproteiner och enzymer. Vidare, genom att använda separerade proteiner och enzymer för att syntetisera proppar ades proppar standardiserade så att det inte fanns variabilitet mellan prover som ett resultat av andra proteiner i plasmat.

Protocol

OBS: Följande protokoll följer de riktlinjer som fastställts av Institutional Review Board (IRB) vid Georgia Tech. 1. Blod Insamling och röda blodkroppar Isolering Tillvägagångssätt Samla 40-120 ml blod från givare i 10 ml hepariniserade vacutainerrör. Starta PBMC (perifert blod mononukleära celler) isolering inom 4 timmar för insamlingen. Under denna tid, hålla blod vid RT. OBS: O / N lagring av blod i RT eller 4 ° C rekommenderas inte efterso…

Representative Results

Konfokalmikroskopi Analys av glykerat fibrinkoagel Strukturer De konfokalmikroskopi bilder av normala och glykerade proppar presenteras i Figur 3. Konfokalmikroskopi analys av de normala och glykerade proppar avslöjar att glycerade proppar är tätare med mindre porer än de normala blodproppar både med och utan tillägg av FXIIIa under koagel polymerisation. I fig 3A och 3B, det finns en lägre fibrin koncentration som skapade en mindre t…

Discussion

För att få meningsfulla uppgifter om strukturen på koagulering mekanismer i sjukdomstillstånd, är det viktigt att isolera de faktorer som koagulering att bestämma effekterna av proteiner och celler i dessa villkor. Detta protokoll har utvecklats i syfte att undersöka strukturen fibrinkoaglet hos diabetiker och SCD stater in vitro.

Det är nödvändigt att förstå de mekanismer som är involverade i fibrinbildning och fibrinolys vid sjukdomstillstånd sedan förändrade förh…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The authors would like to thank the Lam Lab at Georgia Tech for many helpful discussions in developing the experimental assays. Research reported in this publication was supported by the National Heart, Lung, and Blood Institute of the National Institutes of Health under Award Number K01HL115486 and by New Innovator Grant 1DP2OD007433-01 from the Office of the Director, National Institutes of Health. The content is solely the responsibility of the authors and does not necessarily represent the official views of the National Institutes of Health.

Materials

Name of Material/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
PBS Life Technologies 10010031
Ficoll-Paque (hydrophilic polysaccharide) GE Healthcare 45-001-749
10 ml heparinized vacutainer tubes BD Biosciences 366643
Human Fibrinogen Enzyme Research Laboratories N/A
Alexa Fluor 488 human fibrinogen conjugate Molecular Probes F13191
0.5 mL graduated microcentrifuge tube Fisher Scientific 05-408-120
Glucose powder Life Technologies 15023-02
FXIIIa Enzyme Research Laboratories N/A
VIS Confocal Microscope Zeiss LSM 510 LSM 510
50 mM Tris Lonza S50-642
Calcium Chloride (CaCl2) Sigma Aldrich 449709-10G
Vybrant DiD cell-labeling solution Life Technologies L7781
Plasmin Enzyme Research Laboratories N/A
Sodium Chloride (5 M NaCl) Life Technologies AM9759
Statistical Modeling Software IBM SPSS Statistics 22

References

  1. Averett, R. D., et al. A Modular Fibrinogen Model that Captures the Stress-Strain Behavior of Fibers. Biophysical Journal. 103, 1537-1544 (2012).
  2. Carlisle, C. R., et al. The mechanical properties of individual, electrospun fibrinogen fibers. Biomaterials. 30, 1205-1213 (2009).
  3. Falvo, M. R., Gorkun, O. V., Lord, S. T. The molecular origins of the mechanical properties of fibrin. Biophysical Chemistry. 152, 15-20 (2010).
  4. Guthold, M., Cho, S. S. Fibrinogen Unfolding Mechanisms Are Not Too Much of a Stretch. Structure. 19, 1536-1538 (2011).
  5. Gerth, C., Roberts, W. W., Ferry, J. D. Rheology of fibrin clots II: Linear viscoelastic behavior in shear creep. Biophysical Chemistry. 2 (74), 208-217 (1974).
  6. Nelb, G. W., Kamykowski, G. W., Ferry, J. D. Rheology of fibrin clots. v. shear modulus, creep, and creep recovery of fine unligated clots. Biophysical Chemistry. 13 (81), 15-23 (1981).
  7. Roberts, W. W., Kramer, O., Rosser, R. W., Nestler, F. H. M., Ferry, J. D. Rheology of fibrin clots. I.: Dynamic viscoelastic properties and fluid permeation. Biophysical Chemistry. 1, 152-160 (1974).
  8. Ryan, E. A., Mockros, L. F., Weisel, J. W., Lorand, L. Structural Origins of Fibrin Clot Rheology. Biophysical Journal. 77, 2813-2826 (1999).
  9. Weisel, J. W. Fibrin assembly. Lateral aggregation and the role of the two pairs of fibrinopeptides. Biophysical Journal. 50, 1079-1093 (1986).
  10. Weisel, J. W. The mechanical properties of fibrin for basic scientists and clinicians. Biophysical Chemistry. 112, 267-276 (2004).
  11. Wolberg, A. S. Thrombin generation and fibrin clot structure. Blood Reviews. 21, 131-142 (2007).
  12. Wolberg, A. S., Campbell, R. A. Thrombin generation, fibrin clot formation and hemostasis. Transfusion and Apheresis Science. 38, 15-23 (2008).
  13. Yeromonahos, C., Polack, B., Caton, F. Nanostructure of the Fibrin Clot. Biophysical Journal. 99, 2018-2027 (2010).
  14. Dunn, E. J. Fibrinogen and fibrin clot structure in diabetes. Herz. 29, 470-479 (2004).
  15. Gladwin, M. T., Sachdev, V. Cardiovascular abnormalities in sickle cell disease. Journal of the American College of Cardiology. 59, 1123-1133 (2012).
  16. Collet, J. P., et al. Altered Fibrin Architecture Is Associated With Hypofibrinolysis and Premature Coronary Atherothrombosis. Arteriosclerosis, thrombosis, and vascular biology. 26, 2567-2573 (2006).
  17. Carr, M. E. Diabetes mellitus: a hypercoagulable state. Journal of Diabetes and its Complications. 15, 44-54 (2001).
  18. Ajjan, R. A., Ariëns, R. A. S. Cardiovascular disease and heritability of the prothrombotic state. Blood Reviews. 23, 67-78 (2009).
  19. Standeven, K. F., Ariëns, R. A. S., Grant, P. J. The molecular physiology and pathology of fibrin structure/function. Blood Reviews. 19, 275-288 (2005).
  20. Alzahrani, S., Ajjan, R. Review article: Coagulation and fibrinolysis in diabetes. Diabetes and Vascular Disease Research. 7, 260-273 (2010).
  21. Stuart, M. J., Nagel, R. L. Sickle-cell disease. The Lancet. 364, 1343-1360 (2004).
  22. Dunn, E. J., Ariëns, R. A. S., Grant, P. J. The influence of type 2 diabetes on fibrin structure and function. Diabetologia. 48, 1198-1206 (2005).
  23. Dunn, E. J., Philippou, H., Ariëns, R. A. S., Grant, P. J. Molecular mechanisms involved in the resistance of fibrin to clot lysis by plasmin in subjects with type 2 diabetes mellitus. Diabetologia. 49, 1071-1080 (2006).
  24. Famodu, A., Reid, H. Plasma fibrinogen levels in sickle cell disease. Tropical and geographical medicine. 39, 36-38 (1987).
  25. Richardson, S., Matthews, K., Stuart, J., Geddes, A., Wilcox, R. Serial Changes in Coagulation and Viscosity during Sickle-Cell Crisis. British journal of haematology. 41, 95-103 (1979).
  26. Ataga, K. I., Orringer, E. P. Hypercoagulability in sickle cell disease: a curious paradox. The American Journal of Medicine. 115, 721-728 (2003).
  27. Collet, J. P., et al. Altered fibrin architecture is associated with hypofibrinolysis and premature coronary atherothrombosis. Arteriosclerosis, thrombosis, and vascular biology. 26, 2567-2573 (2006).
  28. Barazzoni, R., et al. Increased Fibrinogen Production in Type 2 Diabetic Patients without Detectable Vascular Complications: Correlation with Plasma Glucagon Concentrations. The Journal of Clinical Endocrinology & Metabolism. 85, 3121-3125 (2000).
  29. Ceriello, A. Coagulation activation in diabetes mellitus: the role of hyperglycaemia and therapeutic prospects. Diabetologia. 36, 1119-1125 (1993).
  30. Mayne, E. E., Bridges, J. M., Weaver, J. A. Platelet adhesiveness, plasma fibrinogen and factor VIII levels in diabetes mellitus. Diabetologia. 6, 436-440 (1970).
  31. Weisel, J. W. Fibrinogen and fibrin. Advances in protein chemistry. 70, 247-299 (2005).
  32. Collet, J., et al. Influence of Fibrin Network Conformation and Fibrin Fiber Diameter on Fibrinolysis Speed Dynamic and Structural Approaches by Confocal Microscopy. Arteriosclerosis, thrombosis, and vascular biology. 20, 1354-1361 (2000).
  33. Jörneskog, G., et al. Altered properties of the fibrin gel structure in patients with IDDM. Diabetologia. 39, 1519-1523 (1996).
  34. Svensson, J., et al. Acetylation and glycation of fibrinogen in vitro occur at specific lysine residues in a concentration dependent manner: A mass spectrometric and isotope labeling study. Biochemical and Biophysical Research Communications. 421, 335-342 (2012).
  35. Pieters, M., et al. Glycation of fibrinogen in uncontrolled diabetic patients and the effects of glycaemic control on fibrinogen glycation. Thrombosis Research. 120, 439-446 (2007).
  36. Baradet, T. C., Haselgrove, J. C., Weisel, J. W. Three-dimensional reconstruction of fibrin clot networks from stereoscopic intermediate voltage electron microscope images and analysis of branching. Biophysical journal. 68, 1551-1560 (1995).
  37. Campbell, R. A., Overmyer, K. A., Selzman, C. H., Sheridan, B. C., Wolberg, A. S. Contributions of extravascular and intravascular cells to fibrin network formation, structure, and stability. Blood. 114, 4886-4896 (2009).
  38. Curtis, D. J., et al. A study of microstructural templating in fibrin-thrombin gel networks by spectral and viscoelastic analysis. Soft Matter. 9, 4883-4889 (2013).
  39. Kim, E., et al. Correlation between fibrin network structure and mechanical properties: an experimental and computational analysis. Soft Matter. 7, 4983-4992 (2011).
  40. Keegan, P. M., Surapaneni, S., Platt, M. O. Sickle cell disease activates peripheral blood mononuclear cells to induce cathepsins k and v activity in endothelial cells. Anemia. 2012, 201781 (2012).
  41. Allison, A. Properties of sickle-cell haemoglobin. Biochemical Journal. 65, 212 (1957).
  42. Kuehl, R. O. . Design of experiments : statistical principles of research design and analysis. , (2000).
  43. Lindman, H. R. . Analysis of variance in experimental designs. , (1992).
  44. Pan, W., Galkin, O., Filobelo, L., Nagel, R. L., Vekilov, P. G. Metastable Mesoscopic Clusters in Solutions of Sickle-Cell Hemoglobin. Biophysical Journal. 92, 267-277 (2007).
  45. Wootton, D. M., Popel, A. S., Alevriadou, B. R. An experimental and theoretical study on the dissolution of mural fibrin clots by tissue-type plasminogen activator. Biotechnology and bioengineering. 77, 405-419 (2002).
  46. Sazonova, I. Y., et al. 127 Mathematic model of fibrin clot lysis by plasmin. Fibrinolysis and Proteolysis. 12, 45 (1998).
check_url/kr/52019?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Fan, N. K., Keegan, P. M., Platt, M. O., Averett, R. D. Experimental and Imaging Techniques for Examining Fibrin Clot Structures in Normal and Diseased States. J. Vis. Exp. (98), e52019, doi:10.3791/52019 (2015).

View Video