Summary

Analysen av Neurokar ombygging i Entorhino-hippocampus organotypic skive kulturer

Published: October 23, 2014
doi:

Summary

En protokoll for entorhino-hippocampus organotypic skive kulturer, som lar reprodusere mange aspekter av iskemisk hjerneskade, blir presentert. Ved å studere forandringer i neurovasculature i tillegg til endringer i neuroner, er denne protokollen et allsidig verktøy for å studere forandringer i plast neural vev etter skade.

Abstract

Iskemisk hjerneskade er blant de vanligste og ødeleggende forhold kompromitterende riktig hjernens funksjon og ofte fører til vedvarende funksjonelle underskudd i de berørte pasientene. Til tross for intensiv forskningsinnsats, er det fortsatt ingen effektiv behandling alternativet tilgjengelig som reduserer nerveskader og beskytter nevroner i de iskemiske områder fra forsinket sekundær død. Forskning på dette området innebærer vanligvis bruk av forseggjorte og problematiske dyremodeller. Entorhino-hippocampus organotypic skive kulturer utfordret med oksygen og glukose deprivasjon (OGD) er etablert in vitro modeller som etterligner cerebral iskemi. Det nye aspekt ved denne studien er at endringer av hjerneblodårer blir undersøkt i tillegg til neuronal endringer og reaksjonen av både den neuronale rommet og vaskulær rommet kan sammenlignes og korreleres. Metodene som presenteres i denne protokollen vesentlig utvide de potensielle anvendelser av ellerganotypic skive kultur tilnærming. Induksjonen av OGD eller hypoksi alene kan påføres med ganske enkle midler i organotypic skive kulturer og fører til pålitelig og reproduserbar skade på nervevevet. Dette står i sterk kontrast til de kompliserte og problematiske dyreforsøk som induserer slag og iskemi in vivo. Ved å utvide analyse å inneholde studiet av reaksjonen av vaskulaturen kan gi nye måter å opprettholde og gjenopprette hjernefunksjoner. Stykket kultur tilnærming som presenteres her kan utvikle seg til en attraktiv og viktig verktøy for studiet av iskemisk hjerneskade og kan være nyttig for å teste potensielle terapeutiske tiltak rettet mot nevro.

Introduction

Det sentrale nervesystem er spesielt følsomme for tap eller reduksjon av oksygen og glukose tilførsel av vaskulaturen. Selv en relativt kort avbrudd av blodtilførsel til hjernen, kan indusere et permanent tap av funksjon av de relevante områder av hjernen som fører til de typiske slagsyndromer. I tillegg til den neuronale tap i primær berørte områdene, er det vanligvis mer forsinket neuronal tap gjennom sekundære skader. Dessverre finnes det inntil nå ikke neurobeskyttende behandling for reduksjon av sekundær neuronal død var tilgjengelig en. Forskningsinnsats for å studere mekanismene for sekundære skader stole på bruk av dyremodeller av cerebral iskemi som midten cerebral arterie okklusjon og ulike trombotisk okklusjon teknikker (for en fersk gjennomgang se 2). Parallelt, også på grunn av begrensninger og etiske problemer med bruk av dyremodeller, organotypic skive kultur av forskjellige CNS-vev har blitt brukt som tillater study nevrale reaksjoner på ulike type skader 3-5.

For å studere den neuronale reaksjonen under betingelser som etterligner iskemisk hjerneskade, har modellsystem av oksygen glukosemangel (OGD) blitt utviklet. I denne modellen blir skive kulturer midlertidig utsettes for et medium som mangler glukose og har blitt ekvilibrert med nitrogengass i fravær av oksygen. Med en slik behandling, er det mulig å indusere neuronal skade og tap som er ganske lik den som ble observert etter iskemisk skade in vivo 6, 7. I hippocampus, induserer en slik behandling nevronale tap spesielt i CA1, men ikke i CA3 området eller dentate gyrus av hippocampus. I kontrast, studiet av vaskulære reaksjoner i skive kulturer så langt ikke har vært mye foretatt. En åpenbar årsak er mangelen på sirkulasjon og blodårer perfusjon i stykket kulturmodell. Vi har imidlertid tidligere vist at det er mulig å opprettholde bLood fartøy i CNS skjære kulturer i flere dager 8, 9.

Det overordnede målet med denne metoden er å ikke bare overvåke skjebnen til nevroner etter OGD men utvide studien til skjebnen og ombygging av blodkar som er en viktig del av skaden respons. Inntil nå slike studier har krevd bruk av dyreforsøk (De Jong et al, 1999;. Cavaglia et al, 2001.). I protokollen som presenteres her, vi vil detalj hvordan slike studier kan gjøres i entorhino-hippocampus organotypic skive kulturer utfordret enten med hypoksi eller ved eksitotoksiske lesjoner etterfulgt av analyse av begge nevronale overlevelse og blodkar reaksjoner. Denne protokollen er basert på en tidligere publisert studie på dette emnet 10, og kan være nyttig for en hvilken som helst laboratorium interessert i nevrovaskulære interaksjoner i CNS.

Protocol

Dyreforsøk ble utført i samsvar med europeiske fellesskaps rådsdirektiv av 22. september-2010 (2010/63 / EU), og ble anmeldt og tillatt av sveitsiske myndigheter. 1. Sette opp organotypic Entorhino-hippocampus skive kulturer Forbered entorhino-hippocampus organotypic skive kulturer (EHOSCs) fra postnatal dag 4 (P4) museunger ved hjelp av statisk inkubasjon metoden 4,11. Her bruker C57Bl6 og CB6F1 mus. Ta ca 30 min per mus valp for utarbeidelse av skive kultu…

Representative Results

Oksygen glukosemangel og hypoxia forårsake neuronal død og redusert blodkar spesielt i hippocampus CA1 regionen. OGD eller oksygenmangel alene i 15 min induserte en sterk induksjon av celledød som sett av propidium jodid farging spesielt i CA1 området av hippocampus (Figur 3) tilsvarende som beskrevet tidligere 7.. Med markører for å visualisere nettverket av blodårer, ble det funnet at blodkartettheten og organisasjon først på lik kontroll OGD etter utfordring i de f…

Discussion

Med de fremgangsmåter som er presentert her, kan hippocampus organotypic skive kulturer anvendes som en allsidig verktøy for å studere forandringer i plast neural vev etter skade. Mens organotypic skive kulturer har blitt brukt tidligere for å studere nevrale reaksjoner etter iskemi 6, 7 den nye aspekt av den samtidige studie av vaskulære endringer vesentlig bedre de potensielle anvendelser av denne metoden. Induksjonen av OGD eller hypoksi alene kan påføres med ganske enkle midler i organotypic skive …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble støttet av Universitetet i Basel, Institutt for biomedisin, og den sveitsiske National Science Foundation (31003A_141007). Markus Saxer gitt teknisk støtte.

Materials

Name of Material/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
Minimum Essential Medium MEM Gibco 11012-044
Glutamax Gibco 35050-061 stabilized form of L-glutamine
Millicell cell culture inserts Millipore PICM03050
Basal medium Eagle  Gibco 41010-026
Horse serum Gibco 26050-088
Neurobasal medium Gibco 21103-049
B27 supplement Gibco 17504-044
Anaerobic strips Sigma-Aldrich 59886
Propidium iodide solution Sigma-Aldrich P4864
AMPA R&D systems 0169-10
CNQX R&D systems 0190/10
TTX R&D systems 1078/1
polyclonal anti-laminin Sigma-Aldrich L9393 
anti-MAP2 Abcam ab11267
Alexa anti mouse 350 Molecular Probes A11045
Alexa anti mouse 488 Molecular Probes A11001
Alexa anti rabbit 350 Molecular Probes A11046
Alexa anti rabbit 488 Molecular Probes A11008
Statistics software GraphPad Software GraphPad Prism
McIlwain tissue chopper Ted Pella 10180
Hypoxia chamber Billups-Rothenberg MIC-101

References

  1. Turner, R. C., Dodson, S. C., Rosen, C. L., Huber, J. D. The science of cerebral ischemia and the quest for neuroprotection: navigating past failure to future success. J Neurosurg. 118, 1072-1085 (2013).
  2. Bacigaluppi, M., Comi, G., Hermann, D. M. Animal models of ischemic stroke. Part two: modeling cerebral ischemia. Open Neurol J. 4, 34-38 (2010).
  3. Woodhams, P. L., Atkinson, D. J. Regeneration of entorhino-dentate projections in organotypic slice cultures: mode of axonal regrowth and effects of growth factors. Exp Neurol. 140, 68-78 (1996).
  4. Prang, P., Del Turco, D., Kapfhammer, J. P. Regeneration of entorhinal fibers in mouse slice cultures is age dependent and can be stimulated by NT-4, GDNF, and modulators of G-proteins and protein kinase. C. Exp Neurol. 169, 135-147 (2001).
  5. Bonnici, B., Kapfhammer, J. P. Spontaneous regeneration of intrinsic spinal cord axons in a novel spinal cord slice culture model. Eur J Neurosci. 27, 2483-2492 (2008).
  6. Laake, J. H., Haug, F. M., Wieloch, T., Ottersen, O. P. A simple in vitro model of ischemia based on hippocampal slice cultures and propidium iodide fluorescence. Brain Res Brain Res Protoc. 4, 173-184 (1999).
  7. Rytter, A., Cronberg, T., Asztély, F., Nemali, S., Wieloch, T. Mouse hippocampal organotypic tissue cultures exposed to in vitro ‘ischemia’ show selective and delayed CA1 damage that is aggravated by glucose. J Cereb Blood Flow Metab. 23, 23-33 (2003).
  8. Bendfeldt, K., Radojevic, V., Kapfhammer, J., Nitsch, C. Basic fibroblast growth factor modulates density of blood vessels and preserves tight junctions in organotypic cortical cultures of mice: a new in vitro model of the blood-brain barrier. J Neurosci. 27, 3260-3267 (2007).
  9. Camenzind, R. S., et al. Preservation of transendothelial glucose transporter 1 and P-glycoprotein transporters in a cortical slice culture model of the blood-brain barrier. 신경과학. 170, 361-371 (2010).
  10. De Jong, G. I., et al. Cerebral hypoperfusion yields capillary damage in the hippocampal CA1 area that correlates with spatial memory impairment. 신경과학. 91, 203-210 (1999).
  11. Cavaglia, M., et al. Regional variation in brain capillary density and vascular response to ischemia. Brain Res. 910, 81-93 (2001).
  12. Chip, S., Nitsch, C., Wellmann, S., Kapfhammer, J. P. Subfield-specific neurovascular remodeling in the entorhino-hippocampal-organotypic slice culture as a response to oxygen-glucose deprivation and excitotoxic cell death. J Cereb Blood Flow Metab. 33, 508-518 (2013).
  13. Stoppini, L., Buchs, P. A., Muller, D. A simple method for organotypic cultures of nervous tissue. J Neurosci Methods. 37, 173-182 (1991).

Play Video

Cite This Article
Chip, S., Zhu, X., Kapfhammer, J. P. The Analysis of Neurovascular Remodeling in Entorhino-hippocampal Organotypic Slice Cultures. J. Vis. Exp. (92), e52023, doi:10.3791/52023 (2014).

View Video