Summary

Osteoklast Härledning från benmärg från mus

Published: November 06, 2014
doi:

Summary

Osteoklaster är den huvudsakliga benresorberande cell i kroppen. En förmåga att isolera osteoklaster i stort antal har lett till betydande framsteg i förståelsen av osteoklaster biologi. I detta protokoll, beskriver vi en metod för isolering, odling och kvantifiera osteoklastaktivitet in vitro.

Abstract

Osteoklaster är specialiserade celler som härrör från monocyter / makrofager härstamning av benmärgen. Deras unika förmåga att resorberas både organiska och oorganiska matriser av ben gör att de spelar en viktig roll i regleringen av skelett ombyggnad. Tillsammans, osteoblaster och osteoklaster är ansvariga för den dynamiska kopplingen process som involverar både benresorption och benbildning agerar tillsammans för att upprätthålla den normala skelettet under hälsa och sjukdom.

Som den huvudsakliga benresorberande cell i kroppen, kan förändringar i osteoklastdifferentiering eller funktion resultera i djupgående effekter i kroppen. Sjukdomar associerade med förändrad osteoklaster funktionen kan variera i svårighetsgrad från dödlig neonatal sjukdom på grund av underlåtenhet att bilda en märgutrymme för blodbildningen, mer vanligt förekommande sjukdomar som benskörhet, där överdriven osteoklastisk benresorption ökar risken för sprickbildning.

ent "> En förmåga att isolera osteoklaster i stora mängder in vitro har gjort betydande framsteg i förståelsen av benremodellering cykeln och har banat väg för upptäckten av nya terapeutiska strategier som bekämpa dessa sjukdomar.

Här beskriver vi ett protokoll för att isolera och odla osteoklaster från musbenmärg som kommer att ge ett stort antal osteoklaster.

Introduction

Benremodellering är dynamisk och involverar kopplingen av benbildning med benresorption 1. Denna hårt reglerad process ansvarar för att upprätthålla skelettet under normal homeostas, och som svar på skada och sjukdom.

Osteoklaster är unika, multinukleära celler som har förmåga att resorberande både de organiska och oorganiska matriser av ben. Osteoklaster härrör från monocyter / makrofager härstamning av benmärgen 2-5. Avvikelser i funktion eller bildning av osteoklaster kan resultera i en mängd olika kliniska patologier, inklusive vanliga tillstånd som osteoporos.

Förmågan att generera osteoklaster in vitro har möjliggjort betydande framsteg i vår förståelse av skelettbiologi 6. Som ett resultat, är nya terapeutiska medel utvecklas för att behandla osteoklast relaterade sjukdomar som är ansvariga för betydande sjuklighet och dödlighet 7 </supp>. Homeostatiska underhåll av benmassa och styrka kräver samordnade insatser av benbildande osteoblaster och benresorberande osteoklaster 8,9. Benhomeostas förändras på ett antal sjukdomar, bland postmenopausal osteoporos, där ökad osteoklastaktivitet leder till patogena förlust av benmassa och densitet 10. Med ökande tillgången av transgena musmodeller av human sjukdom, det finns större möjlighet att dechiffrera rollen av osteoklasterna i human skelettsjukdom 11-13.

Talrika protokoll för osteoklast odlingstekniker visas i litteraturen, med många variationer beskrivs 9,12,14. Xing och kollegor beskriver liknande metoder protokollet som beskrivs nedan, i sin beskrivning av osteoclastogenic analyser från murina benmärgsceller. Emellertid för att frigöra de benmärgsceller Följande rörben skörd, Xing et al. Spola märgen kavitet med α-MEM komplett medium14. Catalfamo undersöker effekten av hyperglykemi på osteoklast funktion och beskriver en metod i vilken alla celler mobiliseras genom benmärgs spolning odlas under 24 h, vid vilken punkt de icke-vidhäftande cellerna kasseras 12, en teknik som också används av Boyle et al . 9 Dessa tidigare publicerade protokoll kräver bruket att spola benmärgen, en mödosam metoder, vilket också medför en risk för en stickskada och förlust av värdefull benmärg, som man måste skära båda ändarna av benet. Det protokoll, som vi beskriver, implementerar användning av en mortel och mortelstöt för att isolera osteoklaster, som är likartad med metoden enligt makrofag isolering beskrives av Weischenfeldt et al., 15

Vår erfarenhet är dock att osteoklaster isolering och odling in vitro med hjälp av tidigare publicerade tekniker ger variabla utfall i termer av osteoklasterna produktion, vilket ofta lederi en oförmåga att odla osteoklaster. Därför har vi tagit fram ett protokoll som möjliggör konsekvent isolering av mus benmärgen att producera ett stort antal multinukleära osteoklaster in vitro, med en ungefärlig avkastning på 70-80% av cellerna initialt pläterade bildar makrofager och därefter osteoklaster, i närvaro av osteoklast induktionsmedia.

Protocol

OBS: Etiska riktlinjer: All forskning på ryggradsdjur har utförts enligt protokollen godkänts av Stanford administrativa panelen för Laboratory Animal Care (APLAC). 1. Förberedelser Tillåt 10 ml kommersiellt tillgänglig densitetsgradient cellseparationsmedia (som innehåller polysackaros och natrium-diatrizoat, justerades till en densitet av 1,077 g / ml) för att komma till RT i ett 50 ml koniskt rör. Förbered flödescytometri (FACS) buffert med 1x fosfatbuffrad saltlösning (PBS) …

Representative Results

Syftet med denna metod var att lätt isolera ett stort antal osteoklaster in vitro, typiskt i en vecka. Framgångsrik isolering av stora antal osteoklaster bekräftades med användning av tartrat-resistent surt fosfatas-färgning (Figur 1A). Stora osteoklaster visualiseras som stora lila celler med flera kärnor (typiskt ≥ 3 kärnor). Med hjälp av detta protokoll, är det vanligt att isolera osteoklaster med så många som 30 kärnor per osteoklaster (Figur 1B). <p…

Discussion

En möjlighet att enkelt isolera och odla ett stort antal osteoklaster in vitro har ansvarat för att hjälpa till att främja förståelse av ben biologi och osteoklastförmedlad sjukdomar. Det var identifieringen av RANKL som leder till detta, när det var nyligen identifierats som den huvudsakliga regulatorn av osteoklastbildning, differentiering och överlevnad 16-18.

Det har varit vår erfarenhet att odling av osteoklaster från benmärg in vitro är till st…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi omnämna det stöd från NIH bidrag R01 DE021683, R01 DE019434, U01 HL099776, The Oak Foundation och The Hagey Laboratorie för Pediatric regenerativ medicin.

Materials

Name of the Material/Equipment Company Catalog Number Comments/Description
MEM, no glutamine, no phenol red Gibco 51200-038
M-CSF, recombinant mouse Gibco PMC2044
Recombinant Mouse TRANCE/RANK L/TNFSF11 (E. coli expressed) R&D Systems 462-TEC-010
Prostaglandin E2 Sigma-Aldrich
Histopaque-1077 Sigma-Aldrich 10771
Acid Phosphatase, Lekocyte (TRAP) kit Sigma-Aldrich 387A
Osteoassay bone resorption plates, 24 well plates Corning Life Sciences 3987

References

  1. Sims, N. A., Martin, T. J. Coupling the activities of bone formation and resorption: a multitude of signals within the basic multicellular unit. BoneKEy reports. 3, 481 (2014).
  2. Kahn, A. J., Simmons, D. J. Investigation of cell lineage in bone using a chimaera of chick and quial embryonic tissue. Nature. 258, 325-327 (1975).
  3. Walker, D. G. Bone resorption restored in osteopetrotic mice by transplants of normal bone marrow and spleen cells. Science. 190, 784-785 (1975).
  4. Burger, E. H., et al. In vitro formation of osteoclasts from long-term cultures of bone marrow mononuclear phagocytes. The Journal of experimental medicine. 156, 1604-1614 (1982).
  5. Underwood, J. C. From where comes the osteoclast. The Journal of pathology. 144, 225-226 (1984).
  6. Lacey, D. L., et al. Bench to bedside: elucidation of the OPG-RANK-RANKL pathway and the development of denosumab. Nature reviews. Drug discovery. 11, 401-419 (2012).
  7. Brown, J. E., Coleman, R. E. Denosumab in patients with cancer-a surgical strike against the osteoclast. Nature reviews. Clinical oncology. 9, 110-118 (2012).
  8. Khosla, S. Minireview: the OPG/RANKL/RANK system. Endocrinology. 142, 5050-5055 (2001).
  9. Boyle, D. L., et al. Differential roles of MAPK kinases MKK3 and MKK6 in osteoclastogenesis and bone loss. PloS one. 9, (2014).
  10. Hofbauer, L. C., Heufelder, A. E. Role of receptor activator of nuclear factor-kappaB ligand and osteoprotegerin in bone cell biology. Journal of molecular medicine (Berlin, Germany). 79, 243-253 (2001).
  11. Teramachi, J., et al. Increased IL-6 Expression in Osteoclasts is Necessary but not Sufficient for the Development of Paget’s Disease of Bone. Journal of bone and mineral research : the official journal of the American Society for Bone and Mineral Research. , (2013).
  12. Catalfamo, D. L., et al. Hyperglycemia induced and intrinsic alterations in type 2 diabetes-derived osteoclast function. Oral diseases. 19, 303-312 (2013).
  13. Schueler, J., et al. Intratibial injection of human multiple myeloma cells in NOD/SCID IL-2Rgamma(null) mice mimics human myeloma and serves as a valuable tool for the development of anticancer strategies. PloS one. 8, (2013).
  14. Xing, L., Boyce, B. F. RANKL-Based Osteoclastogenic Assays from Murine Bone Marrow Cells. Methods in molecular biology (Clifton, N.J). 1130, 307-313 (2014).
  15. Weischenfeldt, J., Porse, B. Bone Marrow-Derived Macrophages (BMM): Isolation and Applications. CSH protocols. , (2008).
  16. Yamamoto, Y., et al. Osteoblasts provide a suitable microenvironment for the action of receptor activator of nuclear factor-kappaB ligand. Endocrinology. 147, 3366-3374 (2006).
  17. Yasuda, H., et al. Osteoclast differentiation factor is a ligand for osteoprotegerin/osteoclastogenesis-inhibitory factor and is identical to TRANCE/RANKL. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 95, 3597-3602 (1998).
  18. Lacey, D. L., et al. Osteoprotegerin ligand is a cytokine that regulates osteoclast differentiation and activation. Cell. 93, 165-176 (1998).
  19. Teitelbaum, S. L., Ross, F. P. Genetic regulation of osteoclast development and function. Nature reviews. Genetics. 4, 638-649 (2003).
  20. Agas, D., Sabbieti, M. G., Marchetti, L. Endocrine disruptors and bone metabolism. Archives of toxicology. 87, 735-751 (2013).
  21. Manolagas, S. C., O’Brien, C. A., Almeida, M. The role of estrogen and androgen receptors in bone health and disease. Nature Reviews Endocrinology. 9, 699-712 (2013).
  22. Martin, T. J., Udagawa, N. Hormonal regulation of osteoclast function. Trends in endocrinology and metabolism. 9, 6-12 (1998).
  23. Nakamura, T., et al. Estrogen prevents bone loss via estrogen receptor alpha and induction of Fas ligand in osteoclasts. Cell. 130, 811-823 (2007).
  24. Bellido, T., et al. Regulation of interleukin-6, osteoclastogenesis, and bone mass by androgens. The role of the androgen receptor. The Journal of clinical investigation. 95, 2886-2895 (1995).
  25. Roato, I. Interaction among cells of bone, immune system, and solid tumors leads to bone metastases. Clinica., & developmental immunology. 2013, (2013).
  26. Autio, K. A., Morris, M. J. Targeting bone physiology for the treatment of metastatic prostate cancer. Clinical advances in hematolog., & oncology. 11, 134-143 (2013).
  27. Sottnik, J. L., Keller, E. T. Understanding and targeting osteoclastic activity in prostate cancer bone metastases. Current molecular medicine. 13, 626-639 (2013).
check_url/kr/52056?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Tevlin, R., McArdle, A., Chan, C. K., Pluvinage, J., Walmsley, G. G., Wearda, T., Marecic, O., Hu, M. S., Paik, K. J., Senarath-Yapa, K., Atashroo, D. A., Zielins, E. R., Wan, D. C., Weissman, I. L., Longaker, M. T. Osteoclast Derivation from Mouse Bone Marrow. J. Vis. Exp. (93), e52056, doi:10.3791/52056 (2014).

View Video