Summary

Hele-mount Imaging af museembryo Sensory Axon Fremskrivninger

Published: December 09, 2014
doi:

Summary

We present here an optimized protocol to genotype, stain and prepare fetal mice for the imaging of peripheral nociceptor axon projections in the whole animal, as an effective method to assess sensory axon growth phenotypes in developing genetically engineered mice.

Abstract

Visualiseringen af ​​fuld længde neuronale projektioner i embryoner er vigtigt at få en forståelse af, hvordan pattedyr neuronale netværk udvikle sig. Her beskriver vi en metode til at mærke på stedet en delmængde af dorsale ganglion (DRG) Axon fremskrivninger at vurdere deres fænotypiske karakteristika ved hjælp af flere genetisk manipulerede mus linjer. TrkA-positive neuroner er nociceptor neuroner, dedikeret til transmission af smerte signaler. Vi benytter en TrkA taulacZ mus linje til at mærke baner for alle TrkA-positive perifere axoner i ubeskadiget museembryo. Vi yderligere avle TrkA taulacZ linje på en Bax null baggrund, som i det væsentlige afskaffer nerveapoptose, for at vurdere vækst-relaterede spørgsmål uafhængigt af mulige effekter af genetiske manipulationer på neuronal overlevelse. Efterfølgende genmodificerede mus af interesse avlet med TrkA TaulACZ / Bax null linje og er herefter klar til undersøgelse under anvendelse af de heri beskrevne teknikker. Denne præsentation indeholder detaljerede oplysninger om mus avlsplaner, genotypebestemmelse ved dissektion, forberedelse væv, farvning og clearing at give mulighed for visualisering af fuld længde axonale baner i hel-mount forberedelse.

Introduction

Etablering af præcise neuronale netværk er en kompleks udviklingsproces afgørende for funktionaliteten af ​​nervesystemet. Forstyrrelser i denne proces fører til neuronal dysfunktion, som er blevet impliceret i humane neurologiske sygdomme 1-3. For at undersøge de underliggende molekylære mekanismer i axon vækst og mål innervation hos pattedyr, har vi udviklet en protokol til at visualisere axonale baner TrkA-udtrykkende sensoriske neuroner ved hjælp af en kombination af to genetisk modificerede mus linjer.

TrkA er en receptor for nervevækstfaktor NGF og er en funktionel markør for nociceptive sensoriske neuroner 4. TrkA er højt udtrykt i nociceptive neuroner i den tidlige udvikling og medierer NGF-afhængig neuron overlevelse, Axon vækst, arborization og mål innervation 5-9. I TrkA taulacZ mus, er vildtype TrkA gen erstattet af en taulacZ udtryk cassette 10, således at axonal morfologi af formodede TrkA-positive neuroner kan visualiseres ved β-gal (X-gal) farvning 11. Ved hjælp af en heterozygot TrkA taulacZ / WT linje, kan vi undersøge faktorer, der kan regulere eller forstyrre udviklingen af sensoriske afferente fremskrivninger in vivo.

Desuden TrkA-ekspression er fraværende i homozygote TrkA taulacZ / taulacZ mus, som derfor kan anvendes til at vurdere axon vækstfremmende mekanismer i fravær af NGF / TrkA signalering. Da nociceptive neuroner afhænger NGF / TrkA signalering ikke kun for axon vækst, men også for at overleve, vi anvender en anden mus linje, der mangler pro-apoptotiske Bax-genet, til at inhibere apoptose i embryoniske DRG-neuroner, redning dem fra celledød, der ellers observeret i fravær af TrkA signalering. Bax – / – baggrund 12 giver således mulighed for molecular dissektion af signalveje, der specifikt berører Axon vækst 7-9,13-15. I TrkA – / -: Bax – / – mus, DRG-neuroner overlever, men sensorisk afferent innervation i huden er helt afskaffet 14,15. Vi kan selektivt aktivere signalveje for at bestemme deres respektive bidrag til udviklingen af ​​Axon fremskrivninger. Anvendeligheden af denne metode er, at det giver mulighed for vurdering af ændringer i axonale vækst fænotyper, når forskellige genetiske modifikationer er avlet på TrkA taulacZ / taulacZ: Bax – / – eller TrkA taulacZ / WT: Bax – / – baggrunde.

Protocol

BEMÆRK: Alle procedurer er i overensstemmelse med NIH Guide til brug og pleje af forsøgsdyr. Dyret Protokollen blev godkendt af IACUC på Weill Cornell Medical College. 1. Vævspræparat Aflive tidsindstillet graviditet hunner ved cervikal dislokation 15. Dissekere embryonale E16 – E18 embryoner fra tidsindstillet graviditet hunner og sted embryoner individuelt i brønde i en 6-brønds skål, fyldt med koldt phosphatbufret saltvand (PBS). Skyl embryoner i ko…

Representative Results

De genotyper TrkA WT / taulacZ: Bax – / – og TrkA taulacZ / taulacZ: Bax – / – embryoer utvetydigt kan bestemmes ved standard-PCR genotyping (figur 1). X-gal-farvning viser detaljeret perifere axonale dorne subkutant i konventionelt farvede embryoner (figur 2, 3a), og i hele embryoet efter væv clearing (figur 3b, 4). Vi har avlet TrkA WT / taulacZ: Bax – / – overensstemmelse …

Discussion

Den ovenfor beskrevne X-gal farvningsprocedure af embryonale TrkA taulacZ mus giver mulighed for en hurtig og detaljeret visualisering af langdistance Axon fremskrivninger i ubeskadiget faste foster. På grund af Bax null baggrund disse mus muliggøre sondering af signalering mekanismer, der kan bidrage til både axon vækst og neuronal overlevelse. Parring med transgene eller knockout-mus af interesse muliggør omfattende vurdering af axonale fænotyper og kan tjene som nyttig vejledning fo…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne vil gerne takke Dr. Louis Reichardt for TrkA taulacZ mus og Dr. Annette Markus for indsigtsfuld diskussion og forslag. Dette arbejde blev støttet af startup midler fra Burke Foundation samt Whitehall Foundation forskningsbevilling 2010-08-61, en forskningsbevilling fra Wings for Life Foundation (WFL-US-028/14), giver ZB1-1102-1 fra Christopher & Dana Reeve Foundation, og tilskud 1R01EY022409 og 3R01EY022409-01S1 fra National Eye Institute, til JZ. KJO er en Goldsmith fyr.

Materials

Company Catalog Number
PFA Sigma-Aldrich P6418
PBS Life Tech 10010-023
Tissue Rinse Solution A Millipore BG-6-B
Tissue Rinse Solution B Millipore BG-7-B
Tissue Stain Base Solution Millipore BG-8-C
X-gal  Sigma-Aldrich B4252
Glass scintiallation vial Kimble Chase 74500-20
Incubator Labline Model 120
Insect pins FST 26000-30
DMSO Sigma-Aldrich D8418
6 well dish USA Scientific CC7672-7506
Primers IDT custom DNA primers
Takara dNTP mixture Takara 4030
Takara LA buffer Takara RR002A
Takara LA Taq Takara RR002A
PCR machine Bio-Rad  DNA Engine Dyad
Benzyl alcohol Sigma-Aldrich B-1042
Benzyl benzoate Sigma-Aldrich B-6630
Dissecting microscope Leica M205A
Camera Leica DFC310FX
Ring light  Leica  MEB110
Photoshop Adobe Photoshop 4.0

References

  1. Verze, L., et al. Cutaneous innervation in hereditary sensory and autonomic neuropathy type IV. Neurology. 55, 126-128 (2000).
  2. Sethna, N. F., Meier, P. M., Zurakowski, D., Berde, C. B. Cutaneous sensory abnormalities in children and adolescents with complex regional pain syndromes. Pain. 131, 153-161 (2007).
  3. Uceyler, N., et al. Small fibers in Fabry disease: baseline and follow-up data under enzyme replacement therapy. J Peripher Nerv Syst. 16, 304-314 (2011).
  4. Reichardt, L. F., Mobley, W. C. Going the distance, or not, with neurotrophin signals. Cell. 118, 141-143 (2004).
  5. White, F. A., et al. Synchronous onset of NGF and TrkA survival dependence in developing dorsal root ganglia. J Neurosci. 16, 4662-4672 (1996).
  6. Farinas, I., Wilkinson, G. A., Backus, C., Reichardt, L. F., Patapoutian, A. Characterization of neurotrophin and Trk receptor functions in developing sensory ganglia: direct NT-3 activation of TrkB neurons in vivo. Neuron. 21, 325-334 (1998).
  7. Markus, A., Zhong, J., Snider, W. D. Raf and akt mediate distinct aspects of sensory axon growth. Neuron. 35, 65-76 (2002).
  8. Kuruvilla, R., et al. A neurotrophin signaling cascade coordinates sympathetic neuron development through differential control of TrkA trafficking and retrograde signaling. Cell. 118, 243-255 (2004).
  9. Zhong, J., et al. Raf kinase signaling functions in sensory neuron differentiation and axon growth in vivo. Nature. 10, 598-607 (2007).
  10. Bulfone, A., et al. An olfactory sensory map develops in the absence of normal projection neurons or GABAergic interneurons. Neuron. 21, 1273-1282 (1998).
  11. Moqrich, A., et al. Expressing TrkC from the TrkA locus causes a subset of dorsal root ganglia neurons to switch fate. Nature. 7, 812-818 (2004).
  12. Knudson, C. M., Tung, K. S., Tourtellotte, W. G., Brown, G. A., Korsmeyer, S. J. Bax-deficient mice with lymphoid hyperplasia and male germ cell death. Science. 270 (5233), 96-99 (1995).
  13. Lentz, S. I., Knudson, C. M., Korsmeyer, S. J., Snider, W. D. Neurotrophins support the development of diverse sensory axon morphologies. J. Neurosci. 19, 1038-1048 (1999).
  14. Patel, T. D., Jackman, A., Rice, F. L., Kucera, J., Snider, W. D. Development of sensory neurons in the absence of NGF/TrkA signaling in vivo. Neuron. 25, 345-357 (2000).
  15. Donovan, K. J., et al. B-RAF kinase drives developmental axon growth and promotes axon regeneration in the injured mature CNS. The Journal of experimental medicine. 211, 801-814 (2014).
  16. Mercer, K., et al. Expression of endogenous oncogenic V600EB-raf induces proliferation and developmental defects in mice and transformation of primary fibroblasts. Cancer research. 65, 11493-11500 (2005).
  17. Tronche, F., et al. Disruption of the glucocorticoid receptor gene in the nervous system results in reduced anxiety. Nature genetics. 23, 99-103 (1999).
  18. Madisen, L., et al. A toolbox of Cre-dependent optogenetic transgenic mice for light-induced activation and silencing. Nat Neurosci. 15, 793-802 (2012).
  19. Feng, G., et al. Imaging Neuronal Subsets in Transgenic Mice Expressing Multiple Spectral Variants of GFP. Neuron. 28, 41-51 (2000).
  20. Schmidt, H., Rathjen, F. G. DiI-labeling of DRG neurons to study axonal branching in a whole mount preparation of mouse embryonic spinal cord. J Vis Exp. , (2011).

Play Video

Cite This Article
O’Donovan, K. J., O’Keeffe, C., Zhong, J. Whole-mount Imaging of Mouse Embryo Sensory Axon Projections. J. Vis. Exp. (94), e52212, doi:10.3791/52212 (2014).

View Video