Summary

En mus Fetal Skin Modell av scarless sårläkning

Published: January 16, 2015
doi:

Summary

During mammalian development, early gestational skin wounds heal without a scar. Here we detail a reliable and reproducible model of fetal scarless wound healing in the cutaneous dorsum of E16.5 (scarless) and E18.5 (scarring) mouse embryos.

Abstract

Early in utero, but not in postnatal life, cutaneous wounds undergo regeneration and heal without formation of a scar. Scarless fetal wound healing occurs across species but is age dependent. The transition from a scarless to scarring phenotype occurs in the third trimester of pregnancy in humans and around embryonic day 18 (E18) in mice. However, this varies with the size of the wound with larger defects generating a scar at an earlier gestational age. The emergence of lineage tracing and other genetic tools in the mouse has opened promising new avenues for investigation of fetal scarless wound healing. However, given the inherently high rates of morbidity and premature uterine contraction associated with fetal surgery, investigations of fetal scarless wound healing in vivo require a precise and reproducible surgical model. Here we detail a reliable model of fetal scarless wound healing in the dorsum of E16.5 (scarless) and E18.5 (scarring) mouse embryos.

Introduction

Fostrets hud sår läker snabbt och scarlessly förrän sent i dräktigheten 1. Fostrets scarless sårläkning präglas av förnyelse av normal vävnad arkitektur och funktion. Övergången från ett scarless till ärrbildning fenotyp sker i den tredje trimestern av graviditeten hos människor och kring embryonala dag 18 (E18) i möss 2,3. I jämförelse med vuxna, är foster sårläkning kännetecknas av snabb epithelialization, bindväv nedfall, och fibroblast migration.

Många studier har erbjudit möjliga förklaringar till fenomenet scarless sårläkning under tidig fosterutveckling. Inflammation är en grundläggande komponent i vuxen sårläkning; dock fetala sår kännetecknas av en brist på akut inflammation 4. Huruvida detta är en konsekvens av den funktionella omognad av immunsystemet under fosterstadier förblir oklart. En färsk studie antydde att skillnader i överflöd, mattaurity och funktion av mastceller i E15 vs E18 fostrets hud kan vara ansvarig för övergången från ett scarless fenotyp, åtminstone i mus 3. Andra studier posit att skillnader i egenskaper och överflöd av foster och vuxna lindade makrofager är ansvariga för reformering av normala extracellulära matrix (ECM) under foster sårläkning 5.

Skillnader i miljöfaktorer under fetal och vuxen utveckling kan också påverka sårläkning. Longaker och kollegor visade att sårvätska från fostret besitter höga nivåer av hyaluronsyra-stimulerande aktivitet jämfört med ingen i vuxen sårvätska 6. Följaktligen kan högre nivåer av hyaluronsyra, en glykosaminoglykan som främjar en mikromiljö som gynnar cellmotilitet och proliferation, i foster sårmiljö vara ansvarig för ärrlösa fenotypen sett under tidig fosterutveckling. Andra bevislinjer pekar på det faktum att fetaostl sårmiljö är relativt hypoxemisk och nedsänkt i steril fostervatten rik på tillväxtfaktorer 7. Dock har inget definitivt svar lämnats för en kritisk händelse eller faktor under embryogenes som utlöser övergången från scarless förnyelse till fibrotisk reparation.

Förstå mekanismerna ansvariga för scarless läkning hos fostret kräver en exakt och reproducerbar modell. Här har vi detalj en reproducerbar modell för foster scarless sårläkning i ryggen E16.5 (scarless) och embryon E18.5 (ärrbildning) mus. Dessutom kan mindre variationer av denna modell användas för att utföra ett antal ytterligare studier, såsom genuttrycksanalys av fetala sår och hud 8,9. Med tanke på att just tidsinställda graviditeter är avgörande för en framgångsrik rekapitulation av denna foster scarless sårläkning modell, vi också detalj våra protokoll för superovulation tids graviditeter.

Protocol

OBS: Alla förfaranden som beskrivs i detta dokument utförs enligt riktlinjer som fastställts av Stanford Administrativ panel för försöksdjurs Care (APLAC). 1. Timed Graviditeter – Superovulation Technique (Figur 1) OBS: Just timing graviditetslängd av musembryon för fosterkirurgi vid E16.5 och E18.5 är av avgörande betydelse. I detta avsnitt detalj vi våra protokoll för timing mus graviditeter med hjälp gravida ston serum (PMS) och humant koriongonadot…

Representative Results

För histologisk analys bör kutana sår i rygghuden för E16.5 och E18.5 musembryon skördas 48 timmar efter sårskada, fixerades i 4% PFA och paraffininbäddade. I fluorescerande transgena modeller, kan frysförvaring med oktober vara lämplig. Det finns flera fläckar som kan användas för att visualisera cellulära och bindväv arkitektur. Hematoxylin och eosin är en tvåfärgad fläck som färgar kärnor blå och eosinofila strukturer (dvs.., Cytoplasma och extracellulärt kollagen) olika nyanser av röt…

Discussion

Den kirurgiska protokollet presenteras här beskriver en excisional modell av foster murina scarless healing först publicerades 2006 av vårt laboratorium 10. Förutom de övriga etablerade modeller av excisional såra 11, incisional modeller av foster murina scarless healing existerar samt 12,13. Undersökningar av foster scarless sårläkning i apa, lamm, kanin, opossum och råtta har rapporterats 14-17. Men möss utgör en idealisk modell för att utforska foster scarless …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta arbete stöddes delvis av ett bidrag från NIH bidrag R01 GM087609 (till HPL), en gåva från Ingrid Lai och Bill Shu hedra Anthony Shu (till HPL), NIH bidrag U01 HL099776 (till MTL), den Hagey Laboratoriet för Pediatric regenerativ medicin och The Oak Foundation (till MTL och HPL). GGW stöddes av Stanford School of Medicine, Stanford Medical Scientist Training Program, och NIGMS träningsbidrag GM07365. MSH stöddes av CIRM Clinical Fellow Training Grant TG2-01159. BXH stöddes genom finansiering från Sarnoff Cardiovascular Foundation.

Materials

Name of Material/Equipment Company Catalog Number Comments/Description
7-O MONOSOF Suture eSuture SN-1647G
Surgical Forceps Kent Scientific INS650916
Micro-scissors Kent Scientific INS600127
Autoclip 9mm Texas Scientific Instruments 205060
Insulin Syringe Thermo Fisher Scientific 22-272-382
Black Pigment AIMS 242
BD Safety-Lok 3ml Syringe BD Biosciences 309596
Phosphate Buffered Saline Life Technologies 10010-049
OPMI-MD Surgical Microscope Carl Zeiss Surgical Inc
Pregnant Mares Serum (PMS) Millipore 367222
Human Chorionic Gonadotropin (HCG) Sigma-Aldrich CG10
Povidone Iodine Prep Solution Dynarex 1415
Nair (depilatory cream) Church and Dwight Co. 22600267058

References

  1. Larson, B. J., Longaker, M. T., Lorenz, H. P. Scarless fetal wound healing: a basic science review. Plastic and reconstructive surgery. 126, 1172-1180 (2010).
  2. Wilgus, T. A. Regenerative healing in fetal skin: a review of the literature. Ostomy/wound management. 53, 16-31 (2007).
  3. Wulff, B. C., et al. Mast cells contribute to scar formation during fetal wound healing. The Journal of investigative dermatology. 132, 458-465 (2012).
  4. Lorenz, H. P., Adzick, N. S. Scarless skin wound repair in the fetus. The Western journal of medicine. 159, 350-355 (1993).
  5. Longaker, M. T., et al. Wound healing in the fetus. Possible role for inflammatory macrophages and transforming growth factor-beta isoforms. Wound repair and regeneration : official publication of the Wound Healing Society [and] the European Tissue Repair Society. 2, 104-112 (1994).
  6. Longaker, M. T., et al. Studies in fetal wound healing. IV. Hyaluronic acid-stimulating activity distinguishes fetal wound fluid from adult wound fluid. Annals of surgery. 210, 667-672 (1989).
  7. Colombo, J. A., Napp, M., Depaoli, J. R., Puissant, V. Trophic influences of human and rat amniotic fluid on neural tube-derived rat fetal cells. International journal of developmental neuroscience : the official journal of the International Society for Developmental Neuroscience. 11, 347-355 (1993).
  8. Colwell, A. S., Longaker, M. T., Peter Lorenz, H. Identification of differentially regulated genes in fetal wounds during regenerative repair. Wound repair and regeneration : official publication of the Wound Healing Society [and] the European Tissue Repair Society. 16, 450-459 (2008).
  9. Hu, M. S., et al. Gene expression in fetal murine keratinocytes and fibroblasts. The Journal of surgical research. , (2014).
  10. Colwell, A. S., Krummel, T. M., Longaker, M. T., Lorenz, H. P. An in vivo mouse excisional wound model of scarless healing. Plastic and reconstructive surgery. 117, 2292-2296 (2006).
  11. Wilgus, T. A., et al. The impact of cyclooxygenase-2 mediated inflammation on scarless fetal wound healing. The American journal of pathology. 165, 753-761 (2004).
  12. Iocono, J. A., Ehrlich, H. P., Keefer, K. A., Krummel, T. M. Hyaluronan induces scarless repair in mouse limb organ culture. Journal of pediatric surgery. 33, 564-567 (1998).
  13. Chopra, V., Blewett, C. J., Krummel, T. M. Transition from fetal to adult repair occurring in mouse forelimbs maintained in organ culture. Wound repair and regeneration : official publication of the Wound Healing Society [and] the European Tissue Repair Society. 5, 47-51 (1997).
  14. Adzick, N. S., Longaker, M. T. Animal models for the study of fetal tissue repair. The Journal of surgical research. 5, 47-51 (1991).
  15. Block, M. Wound healing in the new-born opossum (Didelphis virginianam). Nature. 187, 340-341 (1960).
  16. Longaker, M. T., Dodson, T. B., Kaban, L. B. A rabbit model for fetal cleft lip repair. Journal of oral and maxillofacial surgery : official journal of the American Association of Oral and Maxillofacial Surgeons. 48, 714-719 (1990).
  17. Longaker, M. T., et al. A model for fetal cleft lip repair in lambs. Plastic and reconstructive surgery. 90, 750-756 (1992).
check_url/kr/52297?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Walmsley, G. G., Hu, M. S., Hong, W. X., Maan, Z. N., Lorenz, H. P., Longaker, M. T. A Mouse Fetal Skin Model of Scarless Wound Repair. J. Vis. Exp. (95), e52297, doi:10.3791/52297 (2015).

View Video