Summary

RNA isolatie van de Cel specifieke subpopulaties met behulp van laser-capture Microdissection Gecombineerd met Rapid immunolabeling

Published: April 11, 2015
doi:

Summary

Genexpressie analyse van een subset van cellen in een specifiek weefsel vormt een grote uitdaging. In dit artikel wordt beschreven hoe u een hoge kwaliteit totaal RNA van een specifieke cel populatie te isoleren door het combineren van een snelle immunolabeling methode met lasermicrodissectie.

Abstract

Lasermicrodissectie (LCM) kan de isolatie van specifieke cellen uit dunne coupes met een hoge ruimtelijke resolutie. Effectieve LCM vereist een nauwkeurige identificatie van cellen subpopulaties uit een heterogene weefsel. Identificatie van cellen van belang voor LCM is gewoonlijk gebaseerd op morfologische criteria of fluorescerend eiwit reporters. De combinatie van LCM en snelle immunokleuring biedt een alternatieve en efficiënte manier om specifieke celtypen te visualiseren en te isoleren van de omringende weefsels. Hoogwaardige RNA kan vervolgens worden geëxtraheerd uit een zuivere celpopulatie en verder verwerkt voor stroomafwaartse toepassingen, waaronder RNA-sequencing, microarray of qRT-PCR. Deze benadering is eerder uitgevoerd en kort beschreven in enkele publicaties. Het doel van dit artikel is om te illustreren hoe snel immunolabeling van een cel populatie uit te voeren terwijl het houden van RNA integriteit, en hoe deze specifieke cellen met behulp van LCM isoleren. Hierin, we illustrerend deze multi-step procedure immunokleuring en vastleggen van dopaminerge cellen in hersenweefsel van één dag oude muizen. We belichten de belangrijkste kritische stappen die speciale aandacht verdienen. Dit protocol kan worden aangepast aan een verscheidenheid van weefsels en cellen van belang. Onderzoekers uit verschillende disciplines zullen waarschijnlijk profiteren van de demonstratie van deze aanpak.

Introduction

De hersenen bestaan ​​uit een grote verscheidenheid van verschillende typen neuronen vormen complexe netwerken. Deze neuronen zijn georganiseerd in verschillende groepen en subgroepen aan hun morfologie, connectiviteit en genexpressie patroon 1. De ontwikkeling van microarrays, next-generation sequencing, en qRT-PCR de mogelijkheid geboden om de genexpressie profielen van neuronale populatie te vergelijken in verschillende biologische contexten 1,2. Deze gevoelige analyses vereisen de precieze identificatie en isolatie van celtypen van belang terwijl RNA integriteit 2-4. Fluorescentie geactiveerde celsortering (FACS) techniek wordt veel gebruikt om specifieke celtypen basis van celoppervlak markers en / of morfologie isoleren. FACS is een cel dissociatie stap voor het sorteren, hetgeen resulteert in een volledig verlies van ruimtelijke resolutie 5. Vele neuronale subpopulaties van elkaar onderscheiden volgens hun anatomische verdeling the hersenen. Lasermicrodissectie toegepast op dunne hersensecties biedt een geschikte optie voor specifieke isolatie van cellen met een hoge ruimtelijke resolutie 6-8. Een belangrijke beperking van LCM is de noodzaak cellen van belang op basis van morfologische criteria of fluorescent proteïne reporters genetisch in diermodellen identificeren. De ontwikkeling van nieuwe technieken om snel immunokleuring methoden RNA integriteit behouden, in combinatie met LCM voeren, laat nu de isolatie van cel subpopulaties te gaan met gen-profiling experimenten.

Deze aanpak is al eerder uitgevoerd en kort beschreven in enkele publicaties 1,9-13. Hier tonen we een gedetailleerde procedure hoogwaardige RNA te verkrijgen van een specifieke subset van cellen in een complex weefselstructuur door het combineren snel immunokleuring met LCM. We laten zien hoe u de belangrijkste kritische stappen uit te voeren om maximale RNA herstel te verkrijgen en te voorkomen dat RNA degradatie als het kan sigdend effect genexpressie profilering.

Voor de demonstratie van dit protocol, werden dopaminerge neuronen van de ene dag oud muis middenhersenen gericht. Dopaminerge neuronen kunnen immunologisch met een antilichaam gericht tegen tyrosine hydroxylase (TH), de snelheidsbeperkende enzym dopamine synthese. Volgende TH immunostaining, individuele of groepen van dopaminerge neuronen kan vervolgens geïsoleerd worden met behulp van LCM. Gemicrodisseceerde cellen worden verzameld in de lysis buffer en RNA geëxtraheerd met behulp van een RNA isolatie kit. Kwaliteit en kwantiteit van geëxtraheerde RNA worden gemeten met behulp van een bioanalyzer 5. Verdere analyse van genexpressie gebruikmaking RNA sequencing, microarray of qRT-PCR kan vervolgens worden uitgevoerd 2,4,6. Als voorbeeld wordt een tweestaps qRT-PCR aangetoond op laser gevangen geïsoleerd dopaminerge domeinen. Relatieve kwantificatie van de expressie van twee dopaminerge neuronen marker genen illustreert de selectiviteit van dit protocol.

Protocol

OPMERKING: De experimenten werden uitgevoerd in overeenstemming met de Canadese Gids voor de zorg en het gebruik van proefdieren en werden goedgekeurd door het Comité Université Laval Dierenbescherming. 1. Monstervoorbereiding OPMERKING: In dit voorbeeld hebben we gebruikt muizenhersenen bij postnatale dag 1. Gebruik hypothermie anesthesie in gemalen ijs gedurende 3-4 minuten voor pups vervolgens ontleden hersenen zo snel mogelijk in ijskoude L15 med…

Representative Results

Deze snelle immunolabeling procedure maakt visualisatie van cellen van belang terwijl RNA integriteit. Figuur 1 illustreert de stappen van het weefsel voorbereiding voor RNA-extractie. Na cryosectioning worden dopaminerge neuronen gelabeld met een antilichaam gericht tegen de tyrosine hydroxylase (gemerkte neuronen weergegeven in bruin). Afhankelijk van de experimentele betrokken kunnen enkele cellen of groter gebied van belang worden geïsoleerd middels LCM (figuur 1D – E).</st…

Discussion

De meest kritische punt van deze methode bestaat uit het labelen van cellen plaats en voorkomt RNA degradatie. Zoals RNAses zijn actief in waterige oplossingen, de vermindering incubatietijd verbetert RNA behoud 11,15. Alle gebruikte oplossingen moeten met DEPC tot RNAses inactiveren. Alle materialen en oppervlakken moeten worden behandeld met een oppervlakte RNAse decontaminatie oplossing RNAses verontreiniging te voorkomen. Tenslotte, in deze omstandigheden, de toevoeging van RNAse inhibitor in alle oplossi…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work is supported by a grant from the Natural Sciences and Engineering Research Council of Canada (NSERC: 418391-2012). AC receives a scholarship from the Centre thématique de recherche en Neurosciences (CTRN). HDB is funded by a scholarship from the Fonds de Recherche en Santé du Québec (FRSQ) and ML is a FRSQ Chercheur-Boursier.

Materials

Name of Material/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
Membrane coated slides  Leica Biosystems 11505158 MembraneSlides PEN-Membrane 2,0 µm; 50 pcs
Surface RNAse decontamination solution Life technologies AM9780 RNaseZap
Fixative 70% Ethanol kept at -20 °C
Anti-TH  Pel-Freez P40101  1:25
RNAse free buffer DEPC PBS + 1% BSA+0.02% triton
RNAse inhibitor Promega N2615 Rnasine Plus Rnase Inhibitor 40 kU/ml (stock)
Anti-rabbit biotinylated Vector Laboratories BA-1000
Vectastain Elite ABC kit Standard Vector Laboratories PK-6100 8µl/ml
DAB Peroxidase Substrate Kit  Vector Laboratories SK-4100
RNA isolation kit Life technologies KIT0204 Arcturus PicoPure RNA Isolation Kit
H2O2 30% Sigma HC4060
Ethanol absolute
Laser microdissection system Leica microsystems Model AS-LMD
DEPC Alfa Aesar B22753-14
Bioanalyzer Agilent Agilent 2100 Bioanalyzer
Embedding mold  Leica Biosystems 14702218311 6x8mm
Hydrophobic barrier pen  Vector Laboratories H-4000
Frozen tissue embedding media Tissue-Tek 4583
Bioanalyzer chip Aligent Technologies 5067-1513 RNA 6000 Pico LabChip used with Agilent 2100 Bioanalyzer
Hot start reaction mix for quantitative PCR Roche 6402712001 Fast Start Essential DNA Green Master
Reverse transcriptase Life technologies 11752-050 SuperScript III First-Strand Synthesis SuperMix for qRT-PCR

References

  1. Chung, C. Y., et al. The transcription factor orthodenticle homeobox 2 influences axonal projections and vulnerability of midbrain dopaminergic neurons. Brain : a journal of neurology. 133 (Pt 7), 2022-2031 (2010).
  2. Cheng, L., et al. Laser-assisted microdissection in translational research: theory, technical considerations, and future applications. Applied immunohistochemistry & molecular morphology : AIMM / official publication of the Society for Applied Immunohistochemistry. 21 (1), 31-47 (2013).
  3. Decarlo, K., Emley, A., Dadzie, O. E., Mahalingam, M. Laser capture microdissection: methods and applications. Methods in molecular biology. 755, 1-15 (2011).
  4. Espina, V., Heiby, M., Pierobon, M., Liotta, L. A. Laser capture microdissection technology. Expert review of molecular diagnostics. 7 (5), 647-657 (2007).
  5. Fend, F., Raffeld, M. Laser capture microdissection in pathology. Journal of clinical pathology. 53 (9), 666-672 (2000).
  6. Chadi, G., Maximino, J. R., de Oliveira, G. P. The importance of molecular histology to study glial influence on neurodegenerative disorders. Focus on recent developed single cell laser microdissection. Journal of molecular histology. 40 (4), 241-250 (2009).
  7. Liu, A. Laser capture microdissection in the tissue biorepository. Journal of biomolecular techniques : JBT. 21 (3), 120-125 (2010).
  8. Baskin, D. G., Bastian, L. S. Immuno-laser capture microdissection of rat brain neurons for real time quantitative PCR. Methods in molecular biology. 588, 219-230 (2010).
  9. Brown, A. L., Smith, D. W. Improved RNA preservation for immunolabeling and laser microdissection. RNA. 15 (12), 2364-2374 (2009).
  10. Brown, A. L., Brown, A. L., Day, T. A., Dayas, C. V., Smith, D. W. Purity and enrichment of laser-microdissected midbrain dopamine neurons. BioMed research international. 2013, 747938 (2013).
  11. Murakami, H., Liotta, L., Star, R. A. IF-LCM: laser capture microdissection of immunofluorescently defined cells for mRNA analysis rapid communication. Kidney international. 58 (3), 1346-1353 (2000).
  12. Greene, J. G., Dingledine, R., Greenamyre, J. T. Gene expression profiling of rat midbrain dopamine neurons: implications for selective vulnerability in parkinsonism. Neurobiology of disease. 18 (1), 19-31 (2005).
  13. Chung, C. Y., Koprich, J. B., Endo, S., Isacson, O. An Endogenous Serine/Threonine Protein Phosphatase Inhibitor, G-Substrate, Reduces Vulnerability in Models of Parkinson’s Disease. Journal of Neuroscience. 27 (31), 8314-8323 (2007).
  14. Pfaffl, M. Chapter 3, Quantification strategies in real-time. AZ of quantitative PCR. , (2004).
  15. Smolinski, D., Blessenohl, M., Neubauer, C., Kalies, K., Gebert, A. Validation of a novel ultra-short immunolabeling method for high-quality mRNA preservation in laser microdissection and real-time reverse transcriptase-polymerase chain reaction). The Journal of MolecularDiagnostics. 8 (2), 246-253 (2006).
  16. Podgornyĭ, O. V., Lazarev, V. N., Govorun, V. M. Laser microdissection for biology and medicine. Tsitologiia. 54 (5), 381-389 (2012).
  17. Vandewoestyne, M., ewoestyne & Deforce, D. Laser capture microdissection in forensic research: a review. International journal of legal medicine. 124 (6), 513-521 (2010).
  18. Shapiro, J. P., et al. A quantitative proteomic workflow for characterization of frozen clinical biopsies: laser capture microdissection coupled with label-free mass spectrometry. Journal of. 77, 433-4340 (2012).
  19. Domazet, B., Maclennan, G. T., Lopez-Beltran, A., Montironi, R., Cheng, L. Laser capture microdissection in the genomic and proteomic era: targeting the genetic basis of cancer. International journal of clinical and experimental pathology. 1 (6), 475-488 (2008).
check_url/kr/52510?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Chabrat, A., Doucet-Beaupré, H., Lévesque, M. RNA Isolation from Cell Specific Subpopulations Using Laser-capture Microdissection Combined with Rapid Immunolabeling. J. Vis. Exp. (98), e52510, doi:10.3791/52510 (2015).

View Video