Isotermico di amplificazione (lampada) Assays Loop-mediata per rilevamento delle specie-specifica<em> Eimeria</em> Che infettano Polli

Summary

Diagnosis of Eimeria infection in chickens remains demanding. Parasite morphology- and host pathology-led approaches are commonly inconclusive, while molecular approaches based on PCR have proven demanding in cost and expertise. The aim of this protocol is to establish loop-mediated isothermal amplification (LAMP) as a straightforward molecular diagnostic for eimerian infection.

Abstract

Eimeria species parasites, protozoa which cause the enteric disease coccidiosis, pose a serious threat to the production and welfare of chickens. In the absence of effective control clinical coccidiosis can be devastating. Resistance to the chemoprophylactics frequently used to control Eimeria is common and sub-clinical infection is widespread, influencing feed conversion ratios and susceptibility to other pathogens such as Clostridium perfringens. Despite the availability of polymerase chain reaction (PCR)-based tools, diagnosis of Eimeria infection still relies almost entirely on traditional approaches such as lesion scoring and oocyst morphology, but neither is straightforward. Limitations of the existing molecular tools include the requirement for specialist equipment and difficulties accessing DNA as template. In response a simple field DNA preparation protocol and a panel of species-specific loop-mediated isothermal amplification (LAMP) assays have been developed for the seven Eimeria recognised to infect the chicken. We now provide a detailed protocol describing the preparation of genomic DNA from intestinal tissue collected post-mortem, followed by setup and readout of the LAMP assays. Eimeria species-specific LAMP can be used to monitor parasite occurrence, assessing the efficacy of a farm’s anticoccidial strategy, and to diagnose sub-clinical infection or clinical disease with particular value when expert surveillance is unavailable.

Introduction

La produzione globale di pollo è aumentato di dieci volte nel corso degli ultimi 50 anni con il mondo in via di sviluppo che ospita quasi quattro volte l'espansione testimoniata nel mondo sviluppato (www.faostat.org) . Come la rilevanza della produzione di pollo per la sicurezza alimentare mondiale è cresciuta così ha anche il profilo di agenti patogeni che possono causare malattie gravi nei polli. Un primo esempio sono le Eimeria, protozoi parassiti onnipresenti che possono causare la malattia enterica coccidiosi ^1. Ovunque i polli sono allevati uno o più Eimeria è probabilmente comune ^2-4. Nel mondo sviluppato Eimeria sono controllate principalmente da chemioprofilassi, utilizzando programmi di trasporto o di rotazione per ridurre al minimo l'impatto della resistenza ^5. I vaccini vivi sono utilizzati anche in sistemi in cui il valore Bird è sufficiente a giustificare il costo (ad esempio, riproduttori, strati e alcuni polli da carne ^5). Come Result di queste misure coccidiosi clinica è spesso ben controllato, anche se l'infezione subclinica è comune ^5. Nel vaccinazione mondo in via di sviluppo è rara e l'applicazione di droga spesso meno bene informato. Di conseguenza coccidiosis sub-clinica e clinica è più comune ed esercita un impatto economico significativo ^3.

La diagnosi di infezione eimerian ha sempre utilizzato lesione segnando post mortem, anche se il sistema di punteggio più usato anche gli autori hanno commentato che per alcune specie "sembra dubbio che tale procedura dovrebbe essere tentata in qualsiasi ma moderatamente gravi infezioni" ^6. Prove supplementari possono essere raccolte attraverso il rilevamento microscopico dello stadio di oocisti lifecycle resistente ambientale in campioni di feci o del disordine, anche se la sovrapposizione morfologia può confondere tutti, ma l'esperto ^6,7. Alternative molecolari con reazione a catena della polimerasi (PCR), amplificatio casualen di PCR DNA polimorfico (RAPD-PCR) e tecnologie di PCR quantitativa sono stati disponibili per un massimo di 20 anni ^8-10, ma fino ad oggi non sono riusciti a diventare popolare. Spesa relativa e la necessità di apparecchiature di laboratorio specializzato o di trasformazione hanno limitato la loro adozione, nonostante la natura spesso soggettiva e tecnicamente impegnativo del pathology- vecchio e basato microscopia avvicina ^10,11. Tali limiti possono essere esagerati in molte delle regioni più povere del mondo, come il Sud-est asiatico, dove l'impatto della coccidiosi sulla povertà può essere proporzionalmente maggiore ^12. In risposta vi è una chiara domanda di nuove semplice e sensibile, ma redditizio, Eimeria specie-specifici saggi diagnostici.

Loop-mediata amplificazione isotermica (LAMP) è un facile da preparare DNA polimerasi tecnica-driven che è in grado di amplificare grandi quantità di DNA. Ancora più importante, LAMP utilizza un polymera DNA Bstse invece della DNA polimerasi Taq comunemente usato in PCR, che facilita l'amplificazione del DNA in una singola temperatura costante, senza la necessità di cicli termici ^13,14. LAMP può essere suscettibile di applicazione anche in laboratorio più rudimentale o nel campo. Caratterizzato da resistenza rispetto a molti inibitori della PCR, elevata sensibilità e specificità, saggi LAMP sono stati sviluppati per una vasta gamma di agenti patogeni, tra cui virus della malattia infettiva della borsa, Clostridium perfringens e Cryptosporidium ^15-17. In risposta alla domanda di nuovi strumenti diagnostici di costo-efficacia Eimeria specie specifiche di un gruppo di saggi LAMP specifiche per ciascuno dei sette Eimeria che infettano i polli è stato sviluppato ^18. Le domande per i nuovi test comprendono il monitoraggio dei parassiti occorrenza, di particolare valore dato l'associazione di specie come Eimeria maxima o Eimeria necatrix con scarsa pe economicarformance ^3,4. Altre applicazioni includono valutare l'efficacia della strategia anticoccidial di una fattoria, diagnosi di infezione subclinica o malattia clinica e valutazione del rischio rappresentato da Eimeria ad una fattoria.

Protocol

1. Modello Preparazione NOTA: Ogni modello di DNA genomico sospettato di contenere DNA derivato da una delle sette specie Eimeria che infettano i polli può essere utilizzato come modello per base LAMP-Eimeria identificazione della specie. Campioni di tessuto intestinale per l'analisi diagnostica di campo devono essere raccolti durante la routine di post-mortem come descritto qui. Scegliere la sezione (o sezioni) dell'intestino da testare. Vedi Tabella 1 per una guida per la selezione dei siti di campionamento e le Eimeria più probabilità di essere presenti 18 e la Figura 1 per la gamma di distribuzione e localizzazione dei siti di campionamento specie-specifico. NOTA: Questo è di fondamentale importanza in quanto Eimeria sono notevolmente sito host specifico. Ogni specie che infetta i polli è definito dalla Regione intestinale che esso si rivolge 19. La decisione può essere influenzata da una precedente esperienza della fattoria, l'interesse per uno o more specifici Eimeria o altri indicatori diagnostici 6. Accise 5 cm o lunghezze della sezione intestinale (s) selezionati per testare Eimeria usando forbici sterili o un bisturi. Facoltativamente, conservare i campioni per analisi successive in un fissativo come ad esempio in RNAlater 18 o 95% di etanolo. NOTA: Se la memorizzazione in etanolo, il campione deve essere lavata accuratamente in acido tris-etilendiamminotetraacetico sterile (TE) tampone prima dell'uso. Tagliare il campione aperto longitudinalmente, rimuovere contenuti più intestinale (se presente) e raschiare le cellule dallo strato mucoso libero utilizzando il bordo di una sterile microscopio vetrino o una lama forbice etanolo / fiamma sterilizzato. Facoltativamente un campione riunito includere cellule da tutti e quattro i siti intestinali specie-specifici in un singolo tubo. Mettete il materiale raschiato in una sterile da 1,5 ml con tappo a vite provetta contenente 100 microlitri di buffer TE sterile di cui 10% (w / v) Chelex 100 resina. Agitare ogni campione vigorosamente per 1 min. Assicurarsi che il tappo a vite sia ben chiuso e poi incubare in un bagno di acqua bollente per 10 minuti. Dopo ebollizione permettono ciascun campione raffreddare a temperatura ambiente per 1-2 min. Centrifugare ogni campione utilizzando una microcentrifuga a velocità superiore (ad esempio, ~ 10.000 xg) per 1 min. Raccogliere 2 ml di surnatante risultante di essere modello di ogni saggio LAMP da intraprendere. Facoltativamente, piscina più siti intestinale in un unico tubo di fornire un saggio multi-site. 2. Eimeria LAMP Primer Preparazione (Pre-test) Preparare Eimeria LAMP scorte di primer adeguati per 100 test: Ricostituire ogni liofilizzata Eimeria LAMP fondo con l'aggiunta di acqua di grado molecolare ad una concentrazione di 100 micron (come specificato dal costruttore). Se non è specificato, calcolare il volume di grado molecolare acqua necessaria using i pesi molecolari e fisici di ciascun primer. Dispensare 60 ml di acqua grado molecolare in una provetta da 0,5 ml flip-top separato per ciascuna specie Eimeria da dosare. Aggiungere primer FIP, BIP, F3, B3, LF e LB specifico per il bersaglio Eimeria specie a dell'acqua usando i volumi indicati nella Tabella 2, creando una serie di sette specie-specifiche miscele di primer. Brevemente vortice mescolare la soluzione di primer, poi impulso microcentrifuga e congelare fino al momento. Preparare una Mastermix reazione LAMP per ogni specie Eimeria per essere analizzati. Moltiplicare i volumi indicati nella Tabella 3 per il numero di campioni e aggiungere tre per un controllo positivo, controllo negativo e pipettaggio ricambio. Pipettare in un 0,5 o 1,5 ml flip-top provetta. 3. Eimeria LAMP Assay DNA polimerasi Bst / LAMP Pipettare 23 ml Eimeria specifiche delle specie Mastermix in 0.5 ml provetta. Aggiungere template DNA 2 microlitri (preparata al punto 1), per un volume finale di reazione di 25 microlitri. Aggiungere 2 ml Eimeria specie-specifiche DNA genomico ad una reazione (controllo positivo). Aggiungere acqua grado molecolare 2 microlitri di reazione (controllo negativo). NOTA: Se specie-specifico DNA genomico non è disponibile una precedente LAMP positivo o prodotto PCR standard possono essere utilizzati al posto. Incubare a bagnomaria o un blocco di calore a 62 ° C per 30 min. Facoltativamente, de-attivare la DNA polimerasi Bst mediante riscaldamento a 80 ° C per 10 min se la reazione non sta per essere letto immediatamente. 4. LAMP Assay Read-out Al termine dell'incubazione valutare il colore di ogni reazione occhio sotto luce interna. I risultati negativi sembrano rosa al viola di colore, risultati positivi appaiono cielo blu 20. Facoltativamente, confermare il risultato del test LAMP in un laboratory mescolando 5 ml prodotto di reazione LAMP con 1 ml tampone di gel DNA carico per elettroforesi su gel di agarosio utilizzando un gel di agarosio 2% in 1 x Tris / borato / EDTA (TBE) buffer pre-macchiati con una macchia di acido nucleico (5 ml per 50 ml di agarosio). Aggiungere 5 ml di una scala 1Kb dimensione DNA molecolare alla corsia 1 del gel per consentire il calcolo dimensione del frammento.

Representative Results

Convalida Assay Durante la convalida ogni Eimeria specie-specifico test LAMP è stata testata utilizzando un pannello di campioni puri di DNA che rappresentano tutte le sette specie Eimeria che infettano il pollo, così come il pollo DNA genomico come controllo host. Elettroforesi su gel di agarosio è stato utilizzato per risolvere ogni test e ha dimostrato la specificità specie assoluto senza padrone cross-reattività 18. Poi, una volte dieci serie di diluizione in serie preparata utilizzando purificato tenella Eimeria genomico del DNA ha rivelato un limite di sensibilità del test tra uno e dieci copie del genoma del 18. Nessun limite massimo è stato determinato con risultati positivi ottenuti fino ad includere la più alta concentrazione (100.000 copie di genoma) 18. Applicazione con campioni di campo I campioni raccolti per il test Eimeria sono suscettibili di essere derivati ​​da polli trovati morti, abbattuti come conseguenza di poor salute o abbattuti per la sorveglianza sanitaria sentinella, che indica un campione probabilmente tra uno e tre anni quando parte di una routine. Test tre uccelli raccolti da un allevamento di polli da carne degli Stati Uniti come parte di un programma di sorveglianza ha prodotto tre serie di campioni intestinali. Applicazione delle specie-specifiche analisi LAMP mirato, privilegiando i siti intestinali preferiti per ciascuna specie Eimeria (Tabella 1), ha permesso l'identificazione visiva di infezione eimerian in tutti gli uccelli testato con Blu di idrossinaftolo come indicatore (Figura 2A). Il colore ottenuto con una reazione negativa LAMP utilizzando Blu di idrossinaftolo può variare dal viola al rosa, ma è sempre distinto dal blu raggiunti da un risultato positivo. Conferma mediante elettroforesi su gel di agarosio fornito risultati comparabili (Figura 2B). Durante l'applicazione campo l'utente può scegliere di applicare l'intero schermo contro tutte le sette specie, o indirizzare solo quelle specie prioritarie comeimportante o conosciuto da circolando in azienda o la zona circostante. Il fallimento degli approcci basati sulla PCR per affermata come la diagnostica per il verificarsi di Eimeria sottolinea l'esigenza di semplicità in qualsiasi nuovo test. Mentre la lampada offre la preparazione semplice e di trasformazione di PCR, l'obbligo di testare più siti intestinali per volatile rimane scoraggiante. Produzione di un singolo campione di DNA pool per uccello, che possono poi essere sottoposta a uno o più saggi LAMP, è probabile che sia più attraente. Elaborando un campione riunito per uccello, rappresentando materiale raccolto da ciascuno dei siti intestinali specifici descritti nella Tabella 1 e aggregati prima della preparazione del DNA, per le prove con tutti e sette saggi LAMP disponibile lo stesso risultato di quando ogni sito intestinale è stata trattata separatamente (Figura 2 rispetto alla figura 3). <img alt="Figura 1" src="/files/ftp_upload/52552/52552fig1.jpg" /> Figura 1. intestinali punti di campionamento per la rilevazione LAMP di Eimeria parassiti specie che infettano i polli. Le regioni intestinali interessati dal ciascuna specie Eimeria è evidenziato dalle linee colorate, con i siti preferiti di campionamento indicato dal numero tra le linee nere tratteggiate (E. acervulina: giallo / 1, E. Brunetti: rosa / 2, E. maxima: blu / 3, E. mitis: arancio / 4, E. necatrix: rosso / 5, E. praecox: verde / 6 e E. tenella: grigio / 7). Cliccate qui per vedere una versione più grande di questa figura. Figura 2. La diagnosi di infezione LAMP eimerian from tre polli commerciali. Le reazioni LAMP risolte utilizzando (A) Blu di idrossinaftolo, dove un cielo blu reazione è stata positiva e una viola di reazione rosa è stata negativa, e elettroforesi su gel (B) agarosio. I siti intestinali campione sono state come indicato nella Tabella 1 per ogni specie di parassiti. A = E. acervulina, B = E. Brunetti, Ma = E. maxima, Mi = E. mitis, N = E. necatrix, P = E. praecox e T = E. tenella. Corsia 1 conteneva la scala GeneRuler 1Kb DNA. Cliccate qui per vedere una versione più grande di questa figura. Figura 3. La diagnosi di infezione eimerian LAMP utilizzando campioni provenienti da tre polli commerciali separate. REAC LAMPle risolto utilizzando blu hydroxynaphthol, dove un cielo blu reazione è stata positiva e viola alla reazione rosa è stata negativa. A = E. acervulina, B = E. Brunetti, Ma = E. maxima, Mi = E. mitis, N = E. necatrix, P = E. praecox e T = E. tenella. Clicca qui per vedere una versione più grande di questa figura. Sito di esempio Eimeria test specie (più probabile) Duodeno (D) E. acervulina, E. praecox Digiuno / ileo * (J / I) E. maxima, E. necatrix Caeca (C) E. necatrix, E. tenella Ileo terminale (TI) E. Brunetti, E. mitis </tr> Campione aggregato (P) E. acervulina, E. Brunetti, E. maxima, E. mitis, E. necatrix, E. praecox, E. tenella Tabella 1. intestinale selezione specifica regione di candidato Eimeria saggi specie. La scelta della regione da campionare varia per ogni specie Eimeria come illustrato in Figura 1. Campioni aggregati includono materiale raccolto da tutti i quattro siti specifici che sono stati poi combinati per la preparazione del DNA. Primer * Concentrazione della (micron) Volume (ml) Acqua – 60 Forward interno Primer (FIP) 100 40 Indietro interno Primer (BIP) 100 40 Forward Outer Primer (F3) 100 10 Backward Outer Primer (B3) 100 10 Loop Forward (LF) 100 20 Loop Backward (LB) 100 20 Totale 200 Tabella 2. Preparazione di un premiscelato LAMP primer. I componenti e le proporzioni necessari per preparare un premiscelato primer per LAMP. I volumi indicati sono per 100 reazioni LAMP. * Identità Primer come mostrato nei Materiali e Barkway et al (2011) 18. Archivio conc n Reazione finale conc n Volume per reazione (ml) DDW – – 10.1 Buffer THERMOPOL 10 x 1 x 2.5 MgSO4 100 MM 2 mm 0.5 Mix Primer * Tabella 2 2.5 dNTP 25 MM 400 uM 0.4 Betaina 5 M 1 M 5 Blu di idrossinaftolo 3 mM 120 micron 1 DNA polimerasi Bst 8.000 U / ml 8 U 1 Totale 23 Tabella 3. Preparazione di un LAMMastermix reazione P. * Eimeria specie-specifico.

Discussion

The Eimeria species-specific LAMP assays described in this paper offer a new diagnostic tool kit in support of effective control of coccidia and the disease coccidiosis. The outcomes of eimerian infection can include severe economic loss as well as seriously compromised bird welfare and increased susceptibility to colonisation by zoonotic pathogens²¹. Opportunities to monitor flocks for the occurrence of some, or all Eimeria species can provide early warning of a breakdown in anticoccidial control efficacy. Key advantages of LAMP include robust target specificity, resulting from the requirement for six different DNA sequence targets, as well as high sensitivity, boosted by the inclusion of loop primers¹³, although the qualitative, not quantitative nature of LAMP may be considered a limitation. It is not currently possible to discriminate low level parasite escape from routine chemoprophylaxis or live vaccine replication from unchecked eimerian replication. Nonetheless, the technical ease of the protocol and definitive readout offers considerable improvement over the existing specialist and frequently subjective pathology- and morphology-led approaches^6,7. Each assay may be completed at a cost of ~£0.75 per sample, independent of labour and equipment set up expenses. Thus, LAMP assays are also more cost effective than other molecular diagnostics such as PCR, since they require an isothermal incubation with no need for specialist equipment.

For many years access to Eimeria genomic DNA as template has limited the development and application of molecular field diagnostics. The oocyst is the most readily accessible phase of the eimerian lifecycle, but routine DNA extraction requires laboratory facilities²². Other, more labile intestinal lifecycle stages require purification prior to DNA preparation to prevent PCR inhibition and a consequent loss of sensitivity^23,24. The ability to extract eimerian DNA of a quality suitable for LAMP using equipment no more specialised than a microcentrifuge and a water bath, supplemented by inhibitor adsorption using chelex resin, now promotes the wider use of molecular biology in eimerian diagnostics. Intriguingly, the reported detection of quantitative PCR-measurable Eimeria DNA in intestinal tissue 20 days after the initiation of parasite infection, 11 days after the last detectable oocyst output, raises the suggestion that LAMP may be used to detect resolved parasite exposure as well as ongoing infection, even after any visible lesions may have been resolved²⁵.

The relatively low cost and low technical requirements of LAMP Eimeria diagnostics can promote their application in the developing world where other more established approaches may not be available or appropriate. For this to be applicable each assay must be capable of detecting all strains which may be circulating within each region. While understanding of the genetic diversity prevailing among Eimeria species is limited²⁶, the use of target sequences previously validated for use in quantitative PCR with strains from Africa, Asia, Europe and South America provides some evidence of conservation, supporting the utility of these LAMP assays around the world¹⁰.

Materials

Name	Company	Catalogue number	Comments
RNAlater	Ambion	AM7024
Ethanol	VWR Chemicals	20821.321	Caution, highly flammable
100 x Tris-EDTA (TE) buffer concentrate	Sigma-Aldrich	T9285
Chelex 100 resin	Bio-Rad	142-1253
Molecular grade water	Invitrogen	10977035
E. acervulina F3	Sigma-Aldrich	VC00021	*CCTAACATTTCGCTTCACGGAC
E. acervulina B3	Sigma-Aldrich	VC00021	*ATGAGCAAGTGGAACACCTTG
E. acervulina FIP	Sigma-Aldrich	VC00021	*AGAGCACAGTGGCAGTGC-AGCAGACAGCATGGCTTACCT
E. acervulina BIP	Sigma-Aldrich	VC00021	*GAAGACCCTCTGAAGAACGGA-CCTTCTCACCGCTTACCGG
E. acervulina LB	Sigma-Aldrich	VC00021	*TAAGGTTACACCCGTGGAGG
E. acervulina LF	Sigma-Aldrich	VC00021	*GCCATGCACAAAGCGACTT
E. brunetti F3	Sigma-Aldrich	VC00021	*GGCCATCAAGTTCCATGAGC
E. brunetti B3	Sigma-Aldrich	VC00021	*TCAACCTCCTGAGTGTGGTT
E. brunetti FIP	Sigma-Aldrich	VC00021	*GAAAATGCCTTCGTAGCTGCT-GCTGGGTACGGAGCGTCTT
E. brunetti BIP	Sigma-Aldrich	VC00021	*TACTTCCTAGGATCCATCCTCGC-AGTTTCGCTGCCGCCTC
E. brunetti LB	Sigma-Aldrich	VC00021	*GAAACGCTCGAACATGGC
E. brunetti LF	Sigma-Aldrich	VC00021	*CTTCTCCACAGACCCAGAGGT
E. maxima F3	Sigma-Aldrich	VC00021	*ACTACGGAAAAGTGCGTAGCT
E. maxima B3	Sigma-Aldrich	VC00021	*CCTTCCTCCCTTCTGAAAACTG
E. maxima FIP	Sigma-Aldrich	VC00021	*GAGTCACTGCTGATGTACCAAA AG-GAACTATGCCGCTTTCCCCTG
E. maxima BIP	Sigma-Aldrich	VC00021	*AGAATGCGGATTTGTTAGCAGC-AGCAAGTCCAAGGTGTGTGTA
E. maxima LB	Sigma-Aldrich	VC00021	*CAAGCCTACGCGGACATC
E. maxima LF	Sigma-Aldrich	VC00021	*TTATGCAGCTGGGTCAACG
E. mitis F3	Sigma-Aldrich	VC00021	*ACGATAGCCAAGACACGTAAGG
E. mitis B3	Sigma-Aldrich	VC00021	*CCCCGTGATAAGAGTAGGAACA
E. mitis FIP	Sigma-Aldrich	VC00021	*CGCGGGTCGTGAGATTTAAATT AT-GGAAGATCAGGACGGGCACT
E. mitis BIP	Sigma-Aldrich	VC00021	*GTTTCAGTTGATGAACAAGCGA GA-TGCGCCTCTAGAATCAAGACG
E. mitis LB	Sigma-Aldrich	VC00021	*TCCATGCATCCCCTTGTT
E. mitis LF	Sigma-Aldrich	VC00021	*CGTGGGCACAGATTGATTC
E. necatrix F3	Sigma-Aldrich	VC00021	*TGGCTTTCCCGCGTACC
E. necatrix B3	Sigma-Aldrich	VC00021	*CGGCCCAACACAAAGACTG
E. necatrix FIP	Sigma-Aldrich	VC00021	*CGCTTGAGTTTTAAGCTATGCA CA-GACCCAAGCAGCTCACCAA
E. necatrix BIP	Sigma-Aldrich	VC00021	*CGCCATGCCATTCAATGAACG-*GAGGCATACCGGCGTTGTC
E. necatrix LB	Sigma-Aldrich	VC00021	*GTCTGTAACTTGGGACGTTGT
E. necatrix LF	Sigma-Aldrich	VC00021	*GAACAGCCGGAGCCTCTC
E. praecox F3	Sigma-Aldrich	VC00021	*GCCCTTGTATGTTGCTGTTTCT
E. praecox B3	Sigma-Aldrich	VC00021	*GCGCACGAATCTGAATCACAC
E. praecox FIP	Sigma-Aldrich	VC00021	*ATCTCCTCAAAGACTTTCGCGT A-GCGCTTGGCTATATCCATAGG
E. praecox BIP	Sigma-Aldrich	VC00021	*GCTCTCGTGGCATACTTGC-GCCAGGAGCCACTGATTGT
E. praecox LB	Sigma-Aldrich	VC00021	*GAATAGCATTGCCAGGTGG
E. praecox LF	Sigma-Aldrich	VC00021	*GTCCACTGTCATTAATATTGC TGC
E. tenella F3	Sigma-Aldrich	VC00021	*GCTTGTGAAGGTCAGCGTG
E. tenella B3	Sigma-Aldrich	VC00021	*GCTGAGTCCATACGTACTTCCT
E. tenella FIP	Sigma-Aldrich	VC00021	*GCCACTGCTATGGAAAGTCAC AC-CATAACTGGCATGCAGGGGT
E. tenella BIP	Sigma-Aldrich	VC00021	*GTTTGGCCCGAAAGTTGTGAA GA-CGTCAGAAATTGCTGCCCAAT
E. tenella LB	Sigma-Aldrich	VC00021	*CGCATGTGCAGTTGAAGACA
E. tenella LF	Sigma-Aldrich	VC00021	*CCAAATGTATCTGCTAGTTATA TTAACAAG
10 x ThermoPol reaction buffer	New England Biolabs	B9004S
MgSO4	Sigma-Aldrich	M7506
dNTPs	Promega	U1330
Betaine solution (5 M)	Sigma-Aldrich	B0300
Bst polymerase	New England Biolabs	M0275S
Hydroxynaphthol blue	Sigma-Aldrich	33936	Dissolved in molecular grade water.
UltraPure agarose	Invitrogen	16500-500
10 x Tris/Borate/EDTA (TBE) buffer	Invitrogen	AM9863
Blue/Orange DNA loading dye (x6)	Promega	G1881
GeneRuler 1Kb DNA ladder	Thermo Scientific	SM0313
SafeView nucleic acid stain	NBS Biologicals	NBS-SV