Summary

Guld nanorod Assisterad Optisk Stimulering av nervceller

Published: April 27, 2015
doi:

Summary

This protocol outlines how to use the transient heating associated with the optical absorption of gold nanorods to stimulate differentiation and intracellular calcium activity in neuronal cells. These results potentially open up new applications in neural prostheses and fundamental studies in neuroscience.

Abstract

Recent studies have demonstrated that nerves can be stimulated in a variety of ways by the transient heating associated with the absorption of infrared light by water in neuronal tissue. This technique holds great potential for replacing or complementing standard stimulation techniques, due to the potential for increased localization of the stimulus and minimization of mechanical contact with the tissue. However, optical approaches are limited by the inability of visible light to penetrate deep into tissues. Moreover, thermal modelling suggests that cumulative heating effects might be potentially hazardous when multiple stimulus sites or high laser repetition rates are used. The protocol outlined below describes an enhanced approach to the infrared stimulation of neuronal cells. The underlying mechanism is based on the transient heating associated with the optical absorption of gold nanorods, which can cause triggering of neuronal cell differentiation and increased levels of intracellular calcium activity. These results demonstrate that nanoparticle absorbers can enhance and/or replace the process of infrared neural stimulation based on water absorption, with potential for future applications in neural prostheses and cell therapies.

Introduction

Nya studier har visat att den transienta upphettning i samband med absorption av infrarött ljus genom vatten (våglängd> 1400 nm) kan användas för att inducera aktionspotentialer i nervvävnad 1 och intracellulära kalcium transienter i kardiomyocyter 2. Användningen av infrarött ljus har höjt stort intresse för applikationer inom neurala proteser, på grund av den potentiella finare rumsliga upplösningen, brist på direkt kontakt med vävnaden, minimering av stimulerings artefakter, och avlägsnande av behovet att genetiskt modifiera cellerna före stimulering ( såsom krävs i optogenetik) 1. Trots alla dessa fördelar, nyligen utvecklade termiska modeller föreslog att målet vävnaden / cellerna kan påverkas av kumulativa uppvärmningseffekter, när flera stimulans webbplatser och / eller höga repetitionsfrekvenser används 3,4.

Som svar på dessa utmaningar, har forskare insett potentialen att använda yttre absormarna för nervstimulering för att producera mer lokala uppvärmningseffekter i vävnaden. Huang et al. Visade denna princip genom att använda superpara ferrit nanopartiklar för att fjärraktivera de temperaturkänsliga TRPV1 kanaler i HEK 293 celler med en radiofrekvent magnetfält 5. Även om denna teknik kan möjliggöra djupare penetration (magnetfält samverkar relativt svagt med vävnad) var synpunkterna endast noterats under perioder av sekunder, snarare än de millisekund löptider som krävs i Bionic enheter 5. Likaså Farah et al. Visade elektrisk stimulering av råtta kortikala neuron med svarta mikropartiklar in vitro. De visade cellnivå precision i stimulering med hjälp pulsvaraktig på order av hundratals ps och energier i intervallet μJ, potentiellt möjliggör snabbare repetitionsfrekvenser 6.

Användningen av yttre absorbenter har även tillämpats för att induceramorfologiska förändringar in vitro. Ciofani et al., Visade en ökning av neuronal cell utväxt ~ 40% med hjälp av piezoelektriska bornitrid nanorör upphetsade av ultraljud 7. På liknande sätt har endocyteras järnoxidnanopartiklar i PC12-celler rapporterats öka neurite differentiering på ett dos-beroende sätt, på grund av aktivering av cellvidhäftningsmolekyler med järnoxiden 8.

Nyligen har intresset för yttre absorbatorer att hjälpa nervstimulering också fokuserat på användningen av guld nanopartiklar (Au NP). Au NP har förmågan att effektivt absorbera laserljus vid plasmoniska topp och att avleda det till den omgivande miljön i form av värme 9. Bland alla tillgängliga partikelformer, den optiska absorptionen av guld nanostavar (Au ​​NR) matchar lämpligen det terapeutiska fönstret av biologiska vävnader (nära infraröd – NIR, våglängd mellan 750-1,400 nm) 10. Dessutom i fortsext av neural stimulering, användandet av Au NR ger relativt gynnsam biokompatibilitet och ett brett utbud av ytfunktionalisering alternativ 11. Nyligen genomförda studier har visat att en stimulerande effekt på differentiering kan induceras efter löpande laser exponeringar av Au NR i NG108-15 neuronala celler 12. Likaså var intracellulära kalcium transienter inspelad i nervceller odlade med Au NR efter laserstrålning modulerad med variabla frekvenser och pulslängder 13. Cell membrandepolarisering registrerades också efter NIR laser belysning av Au NR i primära kulturer av spiral ganglieneuroner 14. Den första in vivo ansökan med bestrålad Au NR har visats nyligen. EOM och medarbetare exponerades Au NR på deras plasmoniska topp och spelade in en sexfaldig ökning av amplituden av förening nervaktionspotentialer (CNAPs) och en tre-faldig minskning i tröskelstimulering i råttischiasnerver. Den svEnhanced svar skrevs närvärmeeffekter till följd av excitation av NR plasmoniska topp 15.

I föreliggande dokument är protokoll för att undersöka effekterna av laserstimulering i NG108-15 neuronala celler odlade med Au NR anges. Dessa metoder ger en enkel, men ändå kraftfullt, sätt att bestråla cellpopulationer in vitro med användning av standardbiologiska tekniker och material. Protokollet är baserat på en fiberkopplad laserdiod (LD) som möjliggör säker drift och repeterbar uppriktning. De Au NR beredning och laserprov bestrålningstjänster metoder kan utökas ytterligare till olika partikel former och neuronala cellkulturer, förutsatt att de specifika syntes och kultur protokollen är kända, respektive.

Protocol

1. Au NR Framställning Anm: Au NR kan syntetiseras genom ett antal recept 16, eller köpas från kommersiella leverantörer. Mät den initiala optiska densiteten (OD) för Au NR lösningen via UV-Vis-spektroskopi, genom att registrera absorptions- värden från 300 nm till 1000 nm med en upplösning av 0,5-2 nm. Variera volymen av lösningen som skall användas med den tillgängliga kyvetten. Utvärdera den inledande NP molkoncentration med en lämplig teknik…

Representative Results

Genom att använda protokollen 1, 2 och 3 som beskrivs här, var en stimulerande effekt på differentiering observerats i NG108-15 neuronala celler odlade med Au NP (Au NR, poly (styrensulfonat) -belagda Au NR och kiselbelagd Au NR) efter laser exponeringar mellan 1,25 och 7,5 W · cm -2. Konfokala bilder av rhodamineB-märkt Au NR visade att partiklarna var intern från dag 1 av inkubation 12. Lokaliseringen ades observerades främst i cellens cytoplasma, vilket tyder på att den föredragna mekan…

Discussion

De protokoll som beskrivs i denna presentation beskriver hur kulturen, differentiera och optiskt stimulera nervceller använder yttre absorbenter. NR egenskaperna (till exempel dimensioner, form, plasmonresonans våglängd och ytkemi) och laserstimuleringsparametrarna (såsom våglängd, pulslängd, repetitionshastighet etc.) kan varieras för att passa olika experimentella behov. Effekterna på cellbeteende kan övervakas med användning av standard biologiska analyser och material. Övergripande meto…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Författarna vill tacka för NanoVentures Australien för resor finansieringsstöd och Prof. John Haycock för att ha delvis värd denna forskning vid University of Sheffield och Ms Jaimee Mayne för hennes hjälp under inspelningen.

Materials

Au NR Sigma Aldrich 716812
NG108-15 Sigma Aldrich 8811230
DMEM Sigma Aldrich D6546
FCS Life Technologies 10100147
L-glutamine Sigma Aldrich G7513
Penicillin/streptomycin Life Technologies 15140122
Amphotericin B Life Technologies 15290018
Formaldehyde Sigma Aldrich F8775
Triton X-100 BDH T8532
BSA Sigma Aldrich A2058
Anti-βIII-tubulin Promega G7121
TRITC-conjugated anti-mouse IgG antibody Sigma Aldrich T5393
DAPI Invitrogen D1306
Fluo-4 AM Invitrogen F14201
DMSO Sigma Aldrich 472301
Pluronic F-127 Invitrogen P6867
Equipment name Company Catalogue Number
UV-Vis spectrometer Varian Medical Systems Inc. Cary 50 Bio
Mini centrifuge Eppendorf Mini Spin
Sonic bath Unisonics Australia FPX 10D
Cell culture incubator Kendro Hera Cell 150
Cell culture centrifuge Hettich Rotofix 32A
Laser diode Optotech 780 nm single mode fibre – coupled LD
Optical fiber Thorlabs 780 HP
Power meter Coherent Laser Check
ImageJ http://rsb.info.nih.gov/ij/index.html
Epifluorescent microscope Axon Instruments ImageX-press 5000A
μ-slide well Ibidi 80826
Inverted confocal microscope Carl Zeiss Microscopy Ltd. LSM 510 meta-confocal microscope
Oscilloscope Tektronix TDS210

References

  1. Richter, C. P., Matic, A. I., Wells, J. D., Jansen, E. D., Walsh, J. T. Neural stimulation with optical radiation. Laser. Photonics Rev. 5 (1), 68-80 (2011).
  2. Dittami, G. M., Rajguru, S. M., Lasher, R. A., Hitchcock, R. W., Rabbitt, R. D. Intracellular calcium transients evoked by pulsed infrared radiation in neonatal cardiomyocytes. J. Physiol. 589 (6), 1295-1306 (2011).
  3. Thompson, A. C., Wade, S. A., Brown, W. G. A., Stoddart, P. R. Modeling of light absorption in tissue during infrared neural stimulation. J. Biomed. Opt. 17 (7), 075002-075002 (2012).
  4. Thompson, A. C., Wade, S. A., Cadusch, P. J., Brown, W. G., Stoddart, P. R. Modeling of the temporal effects of heating during infrared neural stimulation. J. Biomed. Opt. 18 (3), 035004 (2013).
  5. Huang, H., Delikanli, S., Zeng, H., Ferkey, D. M., Pralle, A. Remote control of ion channels and neurons through magnetic-field heating of nanoparticles. Nat. Nanotechnol. 5 (8), 602-606 (2010).
  6. Farah, N., et al. Holographically patterned activation using photo-absorber induced neural-thermal stimulation. J. Neural. Eng. 10 (5), (2013).
  7. Ciofani, G., et al. Enhancement of neurite outgrowth in neuronal-like cells following boron nitride nanotube-mediated stimulation. ACS Nano. 4 (10), 6267-6277 (2010).
  8. Kim, J. A., et al. Enhancement of neurite outgrowth in PC12 cells by iron oxide nanoparticles. Biomaterials. 32 (11), 2871-2877 (2011).
  9. Myroshnychenko, V., et al. Modelling the optical response of gold nanoparticles. Chem. Soc. Rev. 37 (9), 1792-1805 (2008).
  10. Choi, W. I., Sahu, A., Kim, Y. H., Tae, G. Photothermal cancer therapy and imaging based on gold nanorods. Ann. Biomed. Eng. 40 (2), 534-546 (2011).
  11. Zhan, Q., Qian, J., Li, X., He, S. A study of mesoporous silica-encapsulated gold nanorods as enhanced light scattering probes for cancer cell imaging. Nanotechnology. 21 (5), 055704 (2010).
  12. Paviolo, C., et al. Laser exposure of gold nanorods can increase neuronal cell outgrowth. Biotechnol. Bioeng. 110 (8), 2277-2291 (2013).
  13. Paviolo, C., Haycock, J. W., Cadusch, P. J., McArthur, S. L., Stoddart, P. R. Laser exposure of gold nanorods can induce intracellular calcium transients. J. Biophotonics. 7 (10), 761-765 (2014).
  14. Yong, J., et al. Gold-nanorod-assisted near-infrared stimulation of primary auditory neurons. Adv. Healthcare Mater. , (2014).
  15. Eom, K., et al. Enhanced infrared neural stimulation using localized surface plasmon resonance of gold nanorods. Small. , (2014).
  16. Juste, J., Pastoriza-Santos, I., Liz-Marzán, L. M., Mulvaney, P. Gold nanorods: Synthesis, characterization and applications. Coordination Chemistry Reviews. (17-18), 1870-1901 (2005).
  17. Shang, J., Gao, X. Nanoparticle counting: towards accurate determination of the molar concentration. Chem. Soc. Rev. 43 (21), 7267-7278 (2014).
  18. Sharma, V., Park, K., Srinivasarao, M. Shape separation of gold nanorods using centrifugation. Proc. Natl. Acad. Sci. 106 (13), 4981-4985 (2009).
  19. Kaewkhaw, R., Scutt, A. M., Haycock, J. W. Anatomical site influences the differentiation of adipose-derived stem cells for schwann-cell phenotype and function. Glia. 59 (5), 734-749 (2011).
  20. Brown, W. G. A., Needham, K., Nayagam, B. A., Stoddart, P. R. Whole cell patch clamp for investigating the mechanisms of infrared neural stimulation. JoVE. (77), (2013).
  21. Cadusch, P. J., Hlaing, M. M., Wade, S. A., McArthur, S. L., Stoddart, P. R. Improved methods for fluorescence background subtraction from Raman spectra. J. Raman Spectrosc. 44 (11), 1587-1595 (2013).
  22. Daud, M. F. B., Pawar, K. C., Claeyssens, F., Ryan, A. J., Haycock, J. W. An aligned 3D neuronal-glial co-culture model for peripheral nerve studies. Biomaterials. 33 (25), 5901-5913 (2012).
  23. Jung, S., et al. Intracellular gold nanoparticles increase neuronal excitability and aggravate seizure activity in the mouse brain. PLoS ONE. 9 (3), e91360 (2014).
  24. Salinas, K., Kereselidze, Z., DeLuna, F., Peralta, X., Santamaria, F. Transient extracellular application of gold nanostars increases hippocampal neuronal activity. J. Nanobiotechnology. 12 (1), 31 (2014).
  25. Ebbesen, C. L., Bruus, H. Analysis of laser-induced heating in optical neuronal guidance. J. Neurosci. Meth. 209 (1), 168-177 (2012).
  26. Iwanaga, S., et al. Location-dependent photogeneration of calcium waves in HeLa cells. Cell Biochem. Biophys. 45 (2), 167-176 (2006).
  27. Huang, X., Jain, P. K., El-Sayed, I. H., El-Sayed, M. A. Determination of the minimum temperature required for selective photothermal destruction of cancer cells with the use of immunotargeted gold nanoparticles. Photochem. Photobiol. 82 (2), 412-417 (2006).
  28. Connor, E. E., Mwamuka, J., Gole, A., Murphy, C. J., Wyatt, M. D. Gold nanoparticles are taken up by human cells but do not cause acute cytotoxicity. Small. 1 (3), 325-327 (2005).
  29. Isomaa, B., Reuter, J., Djupsund, B. M. The subacute and chronic toxicity of cetyltrimethylammonium bromide (CTAB), a cationic surfactant, in the rat. Arch. Toxicol. 35 (2), 91-96 (1976).
  30. Juste, J., Pastoriza-Santos, I., Liz-Marzán, L., Mulvaney, P. Gold nanorods: synthesis, characterization and applications. Coord. Chem. Rev. 249 (17-18), 1870-1901 (2005).
  31. Dreaden, E. C., Alkilany, A. M., Huang, X., Murphy, C. J., El-Sayed, M. A. The golden age: gold nanoparticles for biomedicine. Chem. Soc. Rev. 41 (7), 2740-2779 (2012).
  32. Huang, X., Jain, P. K., El-Sayed, I. H., El-Sayed, M. A. Plasmonic photothermal therapy (PPTT) using gold nanoparticles. Lasers Med. Sci. 23 (3), 217-228 (2008).
  33. Albert, E. S., et al. TRPV4 channels mediate the infrared laser-evoked response in sensory neurons. J. Neurophysiol. 107 (12), 3227-3234 (2012).
  34. Garcia-Elias, A., et al. Phosphatidylinositol-4,5-biphosphate-dependent rearrangement of TRPV4 cytosolic tails enables channel activation by physiological stimuli. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 110 (23), 9553-9558 (2013).
  35. Shapiro, M. G., Homma, K., Villarreal, S., Richter, C. -. P., Bezanilla, F. Infrared light excites cells by changing their electrical capacitance. Nat. Commun. 3 (736), (2012).
  36. Roggan, A., Friebel, M., Dörschel, K., Hahn, A., Müller, G. Optical properties of circulating human blood in the wavelength range 400-2500 nm. J. Biomed. Opt. 4 (1), 36-46 (1999).
  37. Byrnes, K. R., et al. Light promotes regeneration and functional recovery and alters the immune response after spinal cord injury. Lasers Surg. Med. 36 (3), 171-185 (2005).
  38. Wu, X., et al. 810 nm wavelength light: an effective therapy for transected or contused rat spinal cord. Lasers Surg. Med. 41 (1), 36-41 (2009).
  39. Grossman, N., Schneid, N., Reuveni, H., Halevy, S., Lubart, R. 780 nm low power diode laser irradiation stimulates proliferation of keratinocyte cultures: involvement of reactive oxygen species. Lasers Surg. Med. 22 (4), 212-218 (1998).
  40. Wong-Riley, M. T. T., et al. Photobiomodulation directly benefits primary neurons functionally inactivated by toxins – Role of cytochrome c oxidase. J. Biol. Chem. 280 (6), 4761-4771 (2005).
  41. Beauvoit, B., Kitai, T., Chance, B. Contribution of the mitochondrial compartment to the optical properties pf the rat liver: a theoretical and practical approach. Biophys. J. 67 (6), 2501-2510 (1994).
check_url/kr/52566?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Paviolo, C., McArthur, S. L., Stoddart, P. R. Gold Nanorod-assisted Optical Stimulation of Neuronal Cells. J. Vis. Exp. (98), e52566, doi:10.3791/52566 (2015).

View Video