Summary

Enkel Polyakrylamid-baserade Multiwell Stelhet analys för studier av Stelhet-beroende cellsvar

Published: March 25, 2015
doi:

Summary

Here, a method that enables quick, efficient, and inexpensive preparation of polyacrylamide gels in a multiwell plate format is described. The method does not require any specialized equipment and could be easily adopted by any research laboratory. It would be particularly useful in research focused on understanding stiffness-dependent cell responses.

Abstract

Currently, most of the in vitro cell research is performed on rigid tissue culture polystyrene (~1 GPa), while most cells in the body are attached to a matrix that is elastic and much softer (0.1 – 100 kPa). Since such stiffness mismatch greatly affects cell responses, there is a strong interest in developing hydrogel materials that span a wide range of stiffness to serve as cell substrates. Polyacrylamide gels, which are inexpensive and cover the stiffness range of all soft tissues in the body, are the hydrogel of choice for many research groups. However, polyacrylamide gel preparation is lengthy, tedious, and only suitable for small batches. Here, we describe an assay which by utilizing a permanent flexible plastic film as a structural support for the gels, enables the preparation of polyacrylamide gels in a multiwell plate format. The technique is faster, more efficient, and less costly than current methods and permits the preparation of gels of custom sizes not otherwise available. As it doesn’t require any specialized equipment, the method could be easily adopted by any research laboratory and would be particularly useful in research focused on understanding stiffness-dependent cell responses.

Introduction

De flesta vävnader i kroppen är mjuka viskoelastiska material med en Youngs modul som sträcker sig från 0,1 kPa för hjärnan till 100 kPa för mjukt brosk, men ändå, de flesta in vitro cellforskning bedrivs på vävnadskulturpolystyren (TCP) som har en modul av ~ 1 GPa . 1 Denna stelhet obalans påverkar i hög grad hur celler reagerar på sin omgivning. En växande mängd forskning är alltså tillägnad belysa effekten av substrat styvhet på öde olika celltyper, 2,3 inklusive stamceller. 4 Som ett resultat har flera hydrogeler utvecklats för att underlätta förståelsen av styvhet beroende cell biologi inklusive polyakrylamid (PA), 5-7 polyetylenglykol (PEG), 8,9 polydimetylsiloxan (PDMS), 10 och alginat. 11 Medan bevis för att underlaget stelhet har en betydande inverkan på cell öde växer, är de flesta studierna bedrivs på liten skala med ett litet antal spel. Systematiska, flerdimensionella studier om effekten av substrat styvhet för en rad celltyper eller miljöförhållanden är sällsynta. 12

Flera lovande hög kapacitet hydrogel teknik har utvecklats, bland annat PEG-baserade microarrays, 13 mikrofluidikanordningar för produktion av agaros hydrogel mikropärlor, 14 eller mikro och nanostavar där styvhet moduleras av diametern och höjden på microrods. 15 Dock , den teknik för att förbereda sådana substrat är sofistikerade och tillgängliga för ett begränsat antal laboratorier. Mycket forskning involverar styvhet modulerad cellsvar utnyttjar polyakrylamid (PA) geler som inte bara är billig och enkel att genomföra, men uppvisar också ett fysiologiskt relevant utbud av Youngs modul, nämligen 0,3 -. 300 kPa 16-22 Men befintliga metoder för att tillverka PA geler för cellodling är arbetskrävande och därmed prepared i små satser. Några av de svårigheter som är förknippade med beredningen av PA geler som cellsubstrat härrör från kravet att gelerna måste vara beredda: 1) i frånvaro av syre för att möjliggöra fullständig polymerisation, 2) med en plan och jämn yta för att möjliggöra en enhetlig cell fastsättning och spridning, och 3) som är permanent fäst på botten av cellodlingsskål för att förhindra flytande.

Flera grupper har försökt att producera PA geler för cellodling i stora serier. Semler et al., Beredda tjocka ark av PA-geler vilka därefter "cut" med en hålstans och placerades i 96-brunnsplattor. 23 Emellertid är denna metod begränsad till styvare geler, dvs,> 1 kPa i Youngs modul, eftersom mjukare geler är "klibbiga", svårt att skära, och skadas lätt. Mih et al. Utvecklat en mer sofistikerad teknik som tillåter gelema att bli direkt polymeriseras i en glasbottnad flerkällsplatta. <supp> 6 Detta uppnåddes genom att hälla gellösningarna i funktionglasbottnade plattor och bildar geler med "sandwich" dem med en egen coverglass array. 6 Även om mycket lovande, små kanteffekter observerades fortfarande med denna teknik. Dessutom kräver tekniken ett skräddarsytt array inte omedelbart tillgänglig för många laboratorier samt dyra glasbottnade flerbrunnsplattor.

Detta dokument beskriver ett enkelt och billigt sätt att montera PA geler i en flerkällsplatta som lätt kan antas av alla laboratorier. Här är en flexibel plaststöd utnyttjas, som har två sidor – en hydrofob en, som är motbjudande till PA geler, och en hydrofil en, som kovalent binder PA gel vid deponering. När PA gel ark deponeras och permanent fäst på flexibla plaststöd, möjliggör det hanterar geler av valfri tjocklek eller styvhet och skär dem i någon önskad form. Denna ca.oach inte bara producerar anpassade plast 'täck' i storlekar som inte på annat sätt är kommersiellt tillgängliga, utan även undanröjer behovet av att förbehandla glasytor, antingen glas täckglas eller brunnarna i kostsamma glasbottnade flerbrunnsplattor, med ett PA-bindande lösning, som är en mödosam och tidskrävande steg. Slutligen kan enhetliga PA geler ark framställas i stora satser och lagras de-hydrerad under flera månader.

Sammanfattningsvis analysen presenteras här är en förbättring jämfört med befintliga metoder i flera aspekter. Först, är processen för flerkällsplatta aggregatet effektiv, och den totala kostnaden för de material som behövs är låg. För det andra är de hydrogeler framställs i stora satser i en enda homogen gelfilm. Slutligen är endast material som är kommersiellt tillgängliga som krävs. Nyttan av analysen illustreras genom att utforska effekten av substrat styvhet på cellmorfologi och spridningsareal.

Protocol

1. Framställning av hydrogel-associerade Lösningar och Alikvoter Framställning av polyakrylamidgel prekursorlösning. Bered polyakrylamidgel prekursorlösning genom blandning akrylamid (A) (40% vikt / volym, M r 71,08 g / mol), tvärbindningsmedlet bisakrylamid (B) (2% vikt / volym, M r 154,17 g / mol), och de- joniserat vatten i volym procentsatser som anges i tabell 1. OBS: Dessa lösningar kan framställas i stora satser och lagrades vid 4 ° C i up…

Representative Results

Polyakrylamid (PA) hydrogeler används allmänt för att testa styvhetsberoende cellsvar. 17,24 Genom att blanda olika koncentrationer av akrylamid (A) och bis-akrylamid (B) en kan göra PA-geler som spänner styvhetsintervall för de flesta mjuka vävnader i kroppen – 0,3 -.. 300 kPa Youngs modul 1 är emellertid omständlig framställning av polyakrylamidgeler och tidskrävande, ofta begränsar deras användbarhet i "high-throughput" tillämpningar såsom exempelvis drogscreening 1…

Discussion

Polyakrylamidgeler, ursprungligen utvecklats för elektrofores, 28 nu rutinmässigt används som cellodling för att studera effekterna av substrat styvhet på cellmorfologi, motilitet, och kommunikation 3,24,29 bland andra egenskaper cell. Polyakrylamid möjliggör manipulering av substrat styvhet att omfatta styvhet alla mjuka vävnader i kroppen (0,3-300 kPa) 1 med en enkel ändring i polymerprekursor koncentration (Figur 2, Tabell 1, se även referenserna 17,25,…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work was funded by start-up funds provided to Dr. Silviya Zustiak by Saint Louis University as well as by a President’s Research Fund (PRF) grant awarded to Dr. Silviya Zustiak by Saint Louis University. We thank Naveed Ahmed and Keval Shah for technical assistance.

Materials

Reagents
40% Acrylamide Bio-Rad 161-0140
2% Bis-acrylamide Bio-Rad 161-0142
Ammonium Persulfate Bio-Rad 161-07000
TEMED Sigma Aldrich T9281
Sulfo-SANPAH Thermo Scientific 22589
Collagen Type 1, from Rat tail, 3.68 mg/mL BD Biosciences 354236
Dimethyl sulfoxide (DMSO) Fisher Scientific  BP231-100
Hydrophobic solution – Repel Silane  GE Healthcare Bio-Sciences 17-1332-01
PBS (1x), pH 7.4 HyClone SH30256.01
Polydimehylsiloxane (PDMS) [Slygard 182 Elastomer Kit] Elsworth Adhesives 3097358-1004
Tyrpsin/EDTA (10x) Sigma Aldrich 44174
RPMI-1640 Medium (1x) HyClone SH30027-02
Fetal Bovine Serum HyClone SH30073-03
Penicillin Streptomycin MP Biomedicals 1670046
Detergent – Triton-X Sigma Aldrich T8787
Formaldehyde 37% Solution Sigma Aldrich F1635
Bovine Serum Albumin (BSA) Sigma Aldrich A2153
BSA-based cell adhesion blocking kit – ECM Cell Adhesion Array Kit Chemicon International ECM540
Disposable lab equipment
flexible plastic support – GelBond PAG Film for Polyacrylamide Gels GE Healthcare Bio-Sciences 309819
Glass Plates Slumpys GBS4100SFSL
50 mL Conicals Fisher Scinetific 3181345107
15 mL Conicals FALCON 352097
Micro centrifuge tubes Fisher Scinetific 2 mL: 02681258
96-well plate (flat bottom) Fisher Scinetific 12565501
Disposable Pipettes (1 mL, 2mL, 5mL, 10mL, 25 mL, 50mL) Fisher Scinetific 1 mL: 13-678-11B, 2mL: 05214038, 5mL(FALCON): 357529, 10mL: 13-678-11E, 25mL: 13-678-11, 50mL: 13-678-11F
Glass Transfer Pipettes Fisher Scinetific 5 3/4": 1367820A, 9":136786B
Pipette Tips (1-200uL, 101-1000uL) Fisher Scinetific 2707509
Plastic Standard Disposable Transfer Pipettes Fisher Scientific 13-711-9D
Parafilm PARAFILM  PM992
Powder Free Examination Gloves Quest 92897
Silicone spacers – Silicone sheet, 0.5 mm thick/13 cm x 18 cm Grace Bio-Labs JTR-S-0.5
Large/non-disposable lab equipment
Light and Flourescent Microscope (Axiovert 200M) Zeiss 3820005619
Microscope Software Zeiss AxioVision Rel. 4.8.2
UV oven UVITRON UV1080
Vacuum chamber/degasser BelArt 999320237
Vacuum pump for degasser KNF Lab 5097482
Tissue Culture Hood NUAIRE NU-425-600
Chemical Fume Hood KEWAUNEE 99151
Inverted Microscope (Axiovert 25) Zeiss 663526
Incubator NUAIRE NU-8500
Pipette Aid Drummond Scientific Co. P-76864
Hemacytometer Bright-Line 383684

References

  1. Levental, I., Georges, P. C., Janmey, P. A. Soft biological materials and their impact on cell function. Soft Matter. 3, 299-306 (2007).
  2. Minton, K. Mechanotransduction: A stiff response. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 15 (8), 500-500 (2014).
  3. Yeung, T., et al. Effects of substrate stiffness on cell morphology, cytoskeletal structure, and adhesion. Cell motility and the cytoskeleton. 60 (1), 24-34 (2005).
  4. Watt, F. M., Huck, W. T. Role of the extracellular matrix in regulating stem cell fate. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 14 (8), 467-473 (2013).
  5. Zustiak, S., Nossal, R., Sackett, D. L. Multiwell stiffness assay for the study of cell responsiveness to cytotoxic drugs. Biotechnology and bioengineering. 111 (2), (2014).
  6. Mih, J. D., et al. A multiwell platform for studying stiffness-dependent cell biology. PLoS One. 6 (5), e19929 (2011).
  7. Sunyer, R., Jin, A. J., Nossal, R., Sackett, D. L. Fabrication of hydrogels with steep stiffness gradients for studying cell mechanical response. PloS one. 7 (10), e46107 (2012).
  8. Herrick, W. G., et al. PEG-phosphorylcholine hydrogels as tunable and versatile platforms for mechanobiology. Biomacromolecules. 14 (7), 2294-2304 (2013).
  9. Tokuda, E. Y., Leight, J. L., Anseth, K. S. Modulation of matrix elasticity with PEG hydrogels to study melanoma drug responsiveness. Biomaterials. 35 (14), 4310-4318 (2014).
  10. Feng, J., et al. Substrate stiffness influences the outcome of antitumor drug screening in vitro. Clinical hemorheology and microcirculation. 55 (1), 121-131 (2013).
  11. Ramamoorthi, K., Hara, J., Ito, C., Asuri, P. Role of Three-Dimensional Matrix Stiffness in Regulating the Response of Human Neural Cells to Toxins. Cellular and Molecular Bioengineering. 7 (2), 1-7 (2014).
  12. Tilghman, R. W., et al. Matrix rigidity regulates cancer cell growth and cellular phenotype. PloS one. 5 (9), e12905 (2010).
  13. Gobaa, S., et al. Artificial niche microarrays for probing single stem cell fate in high throughput. Nature methods. 8 (11), 949-955 (2011).
  14. Kumachev, A., et al. High-throughput generation of hydrogel microbeads with varying elasticity for cell encapsulation. Biomaterials. 32 (6), 1477-1483 (2011).
  15. Fu, J., et al. Mechanical regulation of cell function with geometrically modulated elastomeric substrates. Nature Methods. 7 (9), 733-736 (2010).
  16. Pelham, R. J., Wang, Y. Cell locomotion and focal adhesions are regulated by substrate flexibility. Proc Natl Acad Sci U S A. 94 (25), 13661-13665 (1997).
  17. Tse, J. R., Engler, A. J., et al. Preparation of hydrogel substrates with tunable mechanical properties. Current protocols in cell biology / editorial board, Juan S. Bonifacino … [et al.]. 10 (Unit 10 16), (2010).
  18. Yeung, T., et al. Effects of substrate stiffness on cell morphology, cytoskeletal structure, and adhesion. Cell motility and the cytoskeleton. 60 (1), 24-34 (2005).
  19. Lo, C. -. M., Wang, H. -. B., Dembo, M., Wang, Y. -. l. Cell movement is guided by the rigidity of the substrate. Biophysical journal. 79 (1), 144-152 (2000).
  20. Engler, A. J., Sen, S., Sweeney, H. L., Discher, D. E. Matrix elasticity directs stem cell lineage specification. Cell. 126 (4), 677-689 (2006).
  21. Discher, D. E., Janmey, P., Wang, Y. -. l. Tissue cells feel and respond to the stiffness of their substrate. Science. 310 (5751), 1139-1143 (2005).
  22. Young, D. A., Choi, Y. S., Engler, A. J., Christman, K. L. Stimulation of adipogenesis of adult adipose-derived stem cells using substrates that mimic the stiffness of adipose tissue. Biomaterials. 34 (34), 8581-8588 (2013).
  23. Semler, E. J., Lancin, P. A., Dasgupta, A., Moghe, P. V. Engineering hepatocellular morphogenesis and function via ligand-presenting hydrogels with graded mechanical compliance. Biotechnology Bioengineering. 89 (3), 296-307 (2005).
  24. Reinhart-King, C. A., Dembo, M., Hammer, D. A. Cell-cell mechanical communication through compliant substrates. Biophysical journal. 95 (12), 6044-6051 (2008).
  25. Fischer, R. S., Myers, K. A., Gardel, M. L., Waterman, C. M. Stiffness-controlled three-dimensional extracellular matrices for high-resolution imaging of cell behavior. Nature protocols. 7 (11), 2056-2066 (2012).
  26. Quinlan, A. M., Billiar, K. L. Investigating the role of substrate stiffness in the persistence of valvular interstitial cell activation. Journal of Biomedical Materials Research Part A. 100 (9), 2474-2482 (2012).
  27. Zustiak, S. P., Leach, J. B. Hydrolytically degradable poly(ethylene glycol) hydrogel scaffolds with tunable degradation and mechanical properties. Biomacromolecules. 11 (5), 1348-1357 (2010).
  28. Chrambach, A., Rodbard, D. Polyacrylamide gel electrophoresis. Science. 172 (3982), 440-451 (1971).
  29. Lin, Y. C., et al. Mechanosensing of substrate thickness. Physical review. E, Statistical, nonlinear, and soft matter physics. 82 (4), 041918 (2010).
  30. Chrambach, A. . The Practice of Quantitative Gel Electrophoresis. , (1985).
  31. Sagvolden, G., Giaever, I., Pettersen, E. O., Feder, J. Cell adhesion force microscopy. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 96 (2), 471-476 (1999).
  32. Javaherian, S., Li, K. J., McGuigan, A. P. A simple and rapid method for generating patterned co-cultures with stable interfaces. BioTechniques. 55 (1), 21-26 (2013).
  33. Tarone, G., Galetto, G., Prat, M., Comoglio, P. M. Cell surface molecules and fibronectin-mediated cell adhesion: effect of proteolytic digestion of membrane proteins. The Journal of cell biology. 94 (1), 179-186 (1982).
  34. Trujillo, V., Kim, J., Hayward, R. C. Creasing instability of surface-attached hydrogels. Soft Matter. 4 (3), 564-569 (2008).
  35. Saha, K., et al. Surface creasing instability of soft polyacrylamide cell culture substrates. Biophysical journal. 99 (12), L94-L96 (2010).
  36. Buxboim, A., Rajagopal, K., Andre’EX, B., Discher, D. E. How deeply cells feel: methods for thin gels. Journal of Physics: Condensed Matter. 22 (19), 194116 (2010).
  37. Merkel, R., Kirchgessner, N., Cesa, C. M., Hoffmann, B. Cell force microscopy on elastic layers of finite thickness. Biophysical journal. 93 (9), 3314-3323 (2007).
check_url/kr/52643?article_type=t&slug=simple-polyacrylamide-based-multiwell-stiffness-assay-for-study

Play Video

Cite This Article
Syed, S., Karadaghy, A., Zustiak, S. Simple Polyacrylamide-based Multiwell Stiffness Assay for the Study of Stiffness-dependent Cell Responses. J. Vis. Exp. (97), e52643, doi:10.3791/52643 (2015).

View Video