Vascular cell functiondepends on activity of intracellular messengers. Described here is an ex vivo two photon imaging method that allows the measurement of intracellular calcium and nitric oxide levels in response to physiological and pharmacological stimuli in individual endothelial and smooth muscle cells of an isolated aorta.
Kalsium er en meget viktig regulator for mange fysiologiske prosesser i vaskulære vev. De fleste endoteliale og glatte muskelceller funksjoner sterkt avhenge av forandringer i intracellulært kalsium ([Ca2 +] i) og nitrogenoksid (NO). For å forstå hvordan [Ca 2+] i, NO og nedstrøms molekyler håndteres av en blodåre som svar på vasoconstrictors og vasodilatorer, har vi utviklet en ny teknikk som gjelder kalsium-merking (eller NO-merking) fargestoffer med to foton mikroskopi å måle kalsium håndtering (eller NO-produksjon) i isolerte blodkar. Beskrevet her er en detaljerte trinn-for-trinn fremgangsmåte som demonstrerer hvordan å isolere en aorta fra en rotte, etikett kalsium eller NO i løpet av de endoteliale og glatte muskelceller, og bilde kalsium-transienter (eller NO-produksjon) ved hjelp av en to-foton mikroskop følgende fysiologiske eller farmakologiske stimuli. Fordelene med å bruke metoden er multi-fold: 1) er det mulig å samtidigly måle kalsium transienter i både endotelceller og glatte muskelceller som respons på forskjellige stimuli; 2) det gjør det mulig å image endotelceller og glatte muskelceller i sitt eget setting; 3) denne metoden er svært følsom for intracellulær kalsium eller ingen endringer og genererer høyoppløselige bilder for nøyaktige målinger; og 4) beskrevne metode kan anvendes til måling av andre molekyler, slik som reaktive oksygenarter. I sammendrag, til påføring av to foton laseremisjon mikros overvåke kalsium transienter og NO-produksjon i endotelceller og glatte muskelceller i en isolert blodkar har gitt høy kvalitet kvantitative data og fremmet vår forståelse av mekanismene som regulerer vaskulær funksjon.
Kalsium er en fundamental andre budbringer i vaskulære celler som endotelceller og glatte muskelceller. Det er den primære stimulus for vaskulær kontraksjon og spiller en viktig rolle i vaskulær dilatasjon, inkludert dens virkninger gjennom ingen generasjon innen endotelet. På grunn av begrensninger av avbildningsteknologi, har det vært praktisk talt umulig å observere kalsium håndtering inne i intakt kar. Utviklingen av to foton imaging-systemer og etablering av nye kalsium eller ingen merking fargestoffer, som gjør det mulig å avbilde på en tilstrekkelig dybde og oppløsning for å begynne å forstå kalsiumdynamikk og NO produksjon innenfor blodkar.
To fotonmikroskopi har nylig blitt anvendt i vev, organer og til og med hele dyrestudier på grunn av sin overlegne evne til å penetrere dypt vev med lav bakgrunnsfluorescens og høy signalfølsomhet. 1,2 Den smale spekteret av to foton-eksitasjon ved illumination Brennpunkt og bruk av ikke-descanned detektorer er årsakene til at to foton mikroskopi er bedre enn tradisjonell konfokalmikroskopi. Konfokalmikroskopi kan ikke produsere bilder av høy kvalitet på den nødvendige vev dybde på grunn av auto-fluorescens og spredning av ut-av-fokus lys inn i konfokale pinhole. Vi har derfor utviklet en metode under anvendelse av en to-foton mikroskop for å måle [Ca2 +] signalering og NO-produksjon i intakte blodkar, individuelle celler med høy oppløsning og et lavt signal-støy-forhold.
Eksperimentell Oversikt. For bedre å forstå bidraget av kalsium og NO til vaskulær fysiologi, ble en ny fremgangsmåte utviklet for måling av [Ca2 +] og NO i glatt muskulatur og endotelceller isolert intakt aortaer. Sammen, består denne protokollen av disse kritiske trinn: 1) Mekanisk isolering og rensing (ikke enzymatisk fordøyelse) av fartøyet. Det er viktig å holde vevet sunne og intakt så mye som mulig for å oppnå optimale fysiologiske opptak. 2) Inkubasjon i kalsium-merking…
The authors have nothing to disclose.
Vi takker Dr. William Cashdollar, og Northwestern Mutual Foundation Imaging Center ved Blod Research Institute of Wisconsin for å få hjelp med bildediagnostikk. Vi takker også Dr. Daria Ilatovskaya for kritisk lesning av dette manuskriptet og nyttig diskusjon. Denne studien ble støttet av National Institutes of Health Grants HL108880 (til AS) og DP2-OD008396 (til AMG).
DAF-FM | Life Technologies | D-23842 | |
Fluo 4 AM | Life Technologies | F14217 | 500µl in DMSO |
Pluronic F-68 solution | Sigma-Aldrich | P5556 | |
L-Name | Tocris | 0665 | |
Olympus upright microscope | Olympus | Fluoview FV1000 | |
MaiTai HP DeepSee-OL | Spectra Physics | Ti:sapphire laser 690nm — 1040nm | |
Filters | Olympus | FV10-MRL/R | 495 to 540 nm |
25× water-immersion objective lens | Olympus | XLPL25XWMP | N.A. 1.05 and working distance 2 mm |
Slice Anchor grid | Warner Instrument | SHD-27LH | |
Other basic reagents | Sigma-Aldrich |