Summary

רוז בנגל Photothrombosis ידי דימות אופטי Confocal<em> In vivo</em>: דגם של שבץ כלי אחד

Published: June 23, 2015
doi:

Summary

Here, we describe a semi-invasive optical microscopy approach for the induction of a Rose Bengal photothrombotic clot in the somatosensory cortex of a mouse in vivo. The technical aspects of the imaging procedure are described from induction of a photothrombotic event to application and data collection.

Abstract

In vivo imaging techniques have increased in utilization due to recent advances in imaging dyes and optical technologies, allowing for the ability to image cellular events in an intact animal. Additionally, the ability to induce physiological disease states such as stroke in vivo increases its utility. The technique described herein allows for physiological assessment of cellular responses within the CNS following a stroke and can be adapted for other pathological conditions being studied. The technique presented uses laser excitation of the photosensitive dye Rose Bengal in vivo to induce a focal ischemic event in a single blood vessel.

The video protocol demonstrates the preparation of a thin-skulled cranial window over the somatosensory cortex in a mouse for the induction of a Rose Bengal photothrombotic event keeping injury to the underlying dura matter and brain at a minimum. Surgical preparation is initially performed under a dissecting microscope with a custom-made surgical/imaging platform, which is then transferred to a confocal microscope equipped with an inverted objective adaptor. Representative images acquired utilizing this protocol are presented as well as time-lapse sequences of stroke induction. This technique is powerful in that the same area can be imaged repeatedly on subsequent days facilitating longitudinal in vivo studies of pathological processes following stroke.

Introduction

ההדמיה היתרי הטכניקה המתוארת של in vivo תגובות הסלולר הבאה אינדוקציה של רוז בנגל מייד photothrombosis בעכבר ללא פגע. רוז בנגל (4,5,6,7-tetrachloro-2 ', 4', 5 ', 7'-tetraiodofluorescein) הוא צבע רגיש לשימוש כדי לגרום שבץ איסכמי במודלים של בעלי חיים (עכבר וחולדה). בעקבות הזרקה של RB בולוס דרך וריד הזנב והתאורה שלאחר מכן דרך גולגולת דלילה עם אור לייזר 564 ננומטר, פקיק מושרה גורם שבץ פיסיולוגי 1. השיטה שתוארה במקור על ידי רוזנבלום ואל-Sabban בשנת 1977, ומאוחר יותר הותאמה על ידי ווטסון באמצע 1980 1,2. בקיצור, רוז בנגל הוא מוקרן עם אור ירוק העירור (לייזר 561 ננומטר במקרה שלנו), אשר מייצר את הייצור של מיני חמצן מגיבים, אשר לאחר מכן מפעיל גורם רקמה, יוזם מפל הקרישה. האינדוקציה של מפל הקרישה מייצרת איסכמי lesיון שהוא פתולוגית רלוונטי לשבץ קליני 3.

יש שבץ הפתופיזיולוגיה מורכבת בשל יחסי הגומלין של סוגי תאים שונים רבים, כולל נוירונים, גליה, האנדותל ואת המערכת החיסונית. בחירת הטכניקה הטובה ביותר ללמוד תהליך סלולארי מסוים מחייב שיקולים רבים. טכניקות ניסיוניות נופלות באופן כללי לאחת משלוש קטגוריות: במבחנה, in vivo ובסיליקון ועם כל יתרונות וחסרונות שיש במבחנה יש חסרון העיקרי של הסרת תאים מהסביבה הטבעית שלהם ולכן לא יכולה להתרבות תופעות ראו בשלמותה,. חיים של בעלי חיים. בvivo טכניקות לספק לשכפול ניסיוני משופר של מדינות מחלה עם משמעות translational גדלה. בסיליקון ובדרך כלל מתייחס למודלים ממוחשבים של מחלה או תהליך סלולארי, ובזמן שמנוצל יותר ויותר ללמוד תגובות בין תרופתיות פוטנציאליות לבחינהple, כל מידע שלוקט חייב עדיין להיבדק בתאים חיים או רקמה.

המודל האידיאלי של שבץ במעבדת ההגדרה צריך להפגין תכונות פתולוגיים דומות לאלה ראו באוכלוסייה האנושית. אמנם יש מאפיינים פיסיולוגיים שכיחים של שבץ באוכלוסייה האנושית, יש גם הבדלים רבים, תלוי בסוג של פציעה חווה. שבץ באוכלוסייה האנושית מתרחש כחסימות קטנות או גדולות ספינה, נגעים מדממים, ועורק לעורק או לב ותסחיפים שיגרמו כרכי אוטם מגוונים כמו גם הבדלים במנגנונים הקשורים לכל פתולוגיה. היתרון של שימוש במודלים של בעלי החיים שבץ הוא הדור של אוטמים לשחזור המחקים מאפיינים של שבץ אדם. דגמי השבץ בבעלי החיים הנפוצים ביותר כוללים חסימת עורק באמצעות: עורקים התיכון ספיגה מוחין (שיטות נימה תסחיפים או endovascular) שMCAO דיסטלי דגמים ומודל photothrombosis. היתרונותחסרונות של כל דגם ד נבדקו במקום אחר (ראה 4 ו -5). מודלים גלובליים איסכמי (MCAO), בעוד קל יחסית לביצוע הם פחות רלוונטיים לאירוע מוחי אנושי מאשר דגמי שבץ מוקדי. בנוסף, שיטות אלה הן משתנים מאוד בגרימת נגעי אוטם המוח לשחזור. מודל photothrombosis הוא מאוד לשחזור, כל עוד הניסוי שולט ניסויים שלהם גם, מתן יתרון ברור על פני דגמי MCAO. עם זאת, בשל עלבון microvasculature המודל שתואר להציג פנומברה איסכמית מינימאלית, האזור שבו תאים נחשבים להציל 6,7. בנוסף, בצקת vasogenic והיווצרות בצקת ציטוטוקסיות יכולים גם להיגרם ההקרנה של אזור ההדמיה הבאה. למרות מגבלות אלה הטכניקה סיפקה תובנה חדשה תהליכים פיסיולוגיים רבים לאחר שבץ 8, 9, 10, 11.

Protocol

הערה: נהלי כל החיה אושרו על ידי ועדת הטיפול ושימוש בבעלי חיים המוסדיים של האוניברסיטה למדעי בריאות טקסס מרכז סן אנטוניו ועלו בקנה אחד עם ההנחיות להגיע. 1. הרדמה לקליפת מוח הכנה מני?…

Representative Results

מטרתה של שיטה זו הייתה לגרום לשבץ איסכמי במודלים של בעלי חיים (עכבר וחולדה) הבאים הזרקה של RB בולוס דרך וריד הזנב והתאורה הבאה של גולגולת דלילה עם אור לייזר 561 ננומטר. התמונות באיור 4 מדגימות את ההתקדמות של היווצרות קריש דם בתוך כלי אחד לאחר הקרנה של האזור בדקות…

Discussion

היכולת לתרגם הפתופיזיולוגיה שבץ ניסיונית מבעלי חיים לבני אדם יישום כבר נגועה בכישלון. עם זאת, השימוש במודלים של בעלי חיים, כגון מודל photothrombosis, מאפשר להבנה משופרת של הפתופיזיולוגיה שבץ וחקר גישות טיפוליות חדשות כדי לספק neuroprotection בעקבות שבץ. משיכות בקליפת המוח קטנות וmi…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Funding for this work was provided by: AG007218 and NIH F32 AG031606.

Images were generated in the Core Optical Imaging Facility, which is supported by UTHSCSA, NIH-NCI P30 CA54174 (CTRC at UTHSCSA) and NIH-NIA P01AG19316.

Materials

Reagents
Rose Bengal Sigma 330000
Isoflurane Anesthetic MWI Veterinary Supply 088-076
Vetbond 1469SB 1469SB
aCSF  126 mM NaCl, 2.5 mM KCl, 1.25 mM NaH2PO4, 2 mM MgCl2, 2 mM CaCl2, 10 mM glucose and 26 mM NaHCO3 (pH 7.4).
[header]
Equipment
Dissecting Scissors Bioindustrial Products 500-410
Operating scissors 14 cm Bioindustrial Products 12-055
Forceps Dumont High Tech #5 style, straight Bioindustrial Products TWZ-301.22
LabJack 132X80 Optosigma Co 123-6670
Platform for Labjack 8X 8 Optosigma Co 145-1110
Ear bar holder from stereotaxic setup Stoelting/Cyborg 51654
Dispomed Labvent Rodent anesthesia machine DRE, Inc. 15001
Tech IV Isoflurane vaporizer DRE, Inc. 34001
F Air Canister DRE, Inc 80120
Bain circuit breathing tube DRE, Inc 86111B
Rodent adapter for bain tube DRE, Inc 891000
O2 regulator for oxygen tanks DRE, Inc CE001E
Rodent induction chamber DRE, Inc 15004C
Ethicon Silk 6-0; 18 in with P-3 needle Suture Express 1639G
Objective inverter Optical Adapter LSM technologies
Foredom drill Dual voltage 110/120 Foredom 134.53

References

  1. Watson, B. D., Dietrich, W. D., Busto, R., Wachtel, M. S., Ginsberg, M. D. Induction of reproducible brain infarction by photochemically initiated thrombosis. Annals of Neurology. 17, 497-504 (1985).
  2. Rosenblum, W. I., El-Sabban, F. Platelet aggregation in the cerebral microcirculation: effect of aspirin and other agents. Circulation Research. 40, 320-328 (1977).
  3. Owens, A. P., Mackman, N. Sources of tissue factor that contribute to thrombosis after rupture of an atherosclerotic plaque. Thrombosis Research. 129, S30-S33 (2012).
  4. Carmichael, S. T. Rodent models of focal stroke: size, mechanism, and purpose. NeuroRx : the journal of the American Society for Experimental NeuroTherapeutics. 2, 396-409 (2005).
  5. . . Manual of stroke models in rats. , (2009).
  6. Herz, R. C., Kasbergen, C. M., Hillen, B., Versteeg, D. H., de Wildt, D. J. Rat middle cerebral artery occlusion by an intraluminal thread compromises collateral blood flow. Brain Research. 791, 223-228 (1998).
  7. Brint, S., Jacewicz, M., Kiessling, M., Tanabe, J., Pulsinelli, W. Focal brain ischemia in the rat: methods for reproducible neocortical infarction using tandem occlusion of the distal middle cerebral and ipsilateral common carotid arteries. Journal of Cerebral Blood Flow and Metabolism : Official Journal of the International Society of Cerebral Blood Flow and Metabolism. 8, 474-485 (1988).
  8. Zheng, W., et al. Purinergic receptor stimulation reduces cytotoxic edema and brain infarcts in mouse induced by photothrombosis by energizing glial mitochondria. PloS One. 5, e14401 (2010).
  9. Zheng, D. M., Wewer, J., Lechleiter, J. P. 2. Y. 1. R. -. i. n. i. t. i. a. t. e. d. IP3R-dependent stimulation of astrocyte mitochondrial metabolism reduces and partially reverses ischemic neuronal damage in mouse. Journal of Cerebral Blood Flow and Metabolism. 33, 600-611 (2013).
  10. Witte, O. W., Stoll, G. Delayed and remote effects of focal cortical infarctions: secondary damage and reactive plasticity. Advances in Neurology. 73, 207-227 (1997).
  11. Hagemann, G., Redecker, C., Neumann-Haefelin, T., Freund, H. J., Witte, O. W. Increased long-term potentiation in the surround of experimentally induced focal cortical infarction. Annals of Neurology. 44, 255-258 (1998).
  12. Kramer, M., et al. TTC staining of damaged brain areas after MCA occlusion in the rat does not constrict quantitative gene and protein analyses. Journal of Neuroscience Methods. 187, 84-89 (2010).
  13. Blinder, P., Shih, A. Y., Rafie, C., Kleinfeld, D. Topological basis for the robust distribution of blood to rodent neocortex. Proceedings of the National Academy of Sciences. 107, 12670-12675 (2010).
  14. Nishimura, N., Rosidi, N. L., Iadecola, C., Schaffer, C. B. Limitations of collateral flow after occlusion of a single cortical penetrating arteriole. Journal of Cerebral Blood Flow & Metabolism. 30, 1914-1927 (2010).
  15. Nishimura, N., Schaffer, C. B., Friedman, B., Lyden, P. D., Kleinfeld, D. Penetrating arterioles are a bottleneck in the perfusion of neocortex. Proceedings of the National Academy of Sciences. 104, 365 (2007).
  16. Blum, S., et al. Memory after silent stroke: Hippocampus and infarcts both matter. Neurology. 78, 38-46 (2012).
  17. Heinsius, T., Bogousslavsky, J., Van Melle, G. Large infarcts in the middle cerebral artery territory Etiology and outcome patterns. Neurology. 50, 341-350 (1998).
  18. Wardlaw, J. What causes lacunar stroke. Journal of Neurology, Neurosurgery & Psychiatry. 76, 617-619 (2005).
  19. Inoue, Y., et al. Ischemic stroke under anticoagulant therapy]. Rinsho shinkeigaku. Clinical Neurology. 50, 455-460 (2010).
  20. Tiannan Wang, W. C., Xie, Y., Zhang, W., Ding, S. Controlling the Volume of the Focal Cerebral Ischemic Lesion through Photothrombosis. American Journal of Biomedical Sciences. 2, 33-42 (2009).
  21. Head, B. P., Patel, P. Anesthetics and brain protection. Current Opinion in Anaesthesiology. 20, 395-399 (2007).
  22. Kirsch, J. R., Traystman, R. J., Hurn, P. D. Anesthetics and cerebroprotection: experimental aspects. International Anesthesiology Clinics. 34, 73-93 (1996).
  23. Koerner, I. P., Brambrink, A. M. Brain protection by anesthetic agents. Current Opinion in Anaesthesiology. 19, 481-486 (2006).
  24. Gelb, A. W., Bayona, N. A., Wilson, J. X., Cechetto, D. F. Propofol anesthesia compared to awake reduces infarct size in rats. Anesthesiology. 96, 1183-1190 (2002).
  25. Bhardwaj, A., Castro, I. A., Alkayed, N. J., Hurn, P. D., Kirsch, J. R. Anesthetic choice of halothane versus propofol: impact on experimental perioperative stroke. Stroke; A Journal Of Cerebral Circulation. 32, 1920-1925 (2001).
  26. Barretto, R. P., Messerschmidt, B., Schnitzer, M. J. In vivo fluorescence imaging with high-resolution microlenses. Nature Methods. 6, 511-512 (2009).
check_url/52794?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Talley Watts, L., Zheng, W., Garling, R. J., Frohlich, V. C., Lechleiter, J. D. Rose Bengal Photothrombosis by Confocal Optical Imaging In Vivo: A Model of Single Vessel Stroke. J. Vis. Exp. (100), e52794, doi:10.3791/52794 (2015).

View Video