Summary

Isolering och karakterisering av neutrofiler med Anti-tumöregenskaper

Published: June 19, 2015
doi:

Summary

Neutrophils play an important role not only in host defense against invading microorganisms, but are also involved in the immune surveillance of tumor cells. Here, we describe techniques related to the isolation of neutrophils with anti-tumor properties and methods for monitoring anti-tumor neutrophil function in vitro and in vivo.

Abstract

Neutrofiler, den vanligast förekommande av samtliga vita blodkroppar i den humana cirkulationen, spelar en viktig roll i värdförsvar mot invaderande mikroorganismer. Dessutom neutrofiler spelar en central roll i immunövervakning av tumörceller. De har förmågan att känna igen tumörceller och inducera tumörcelldöd antingen genom en cellkontaktberoende mekanism som innefattar väteperoxid eller genom antikroppsberoende cellmedierad cytotoxicitet (ADCC). Neutrofiler med antitumöraktivitet kan isoleras från perifert blod av cancerpatienter och hos tumörbärande möss. Dessa neutrofiler kallas tumörburna neutrofiler (TEN) för att skilja dem från neutrofiler av friska försökspersoner eller naiva möss som inte visar någon signifikant tumörcytotoxisk aktivitet. Jämfört med andra vita blodkroppar, neutrofiler visar olika flytkraft som gör det möjligt att erhålla en> 98% ren neutrofila populationen när det utsätts för en densitetsgradient. Men förutomden normala hög densitet neutrofila populationen (HDN), i cancerpatienter, i tumörbärande möss, samt under kroniska inflammatoriska tillstånd, olika låg densitet neutrofila populationer (LDN) återfinns i cirkulationen. LDN samrenas med den mononukleära fraktionen och kan separeras från mononukleära celler genom att använda antingen positiva eller negativa strategier för urvalet. När renheten hos de isolerade neutrofiler bestäms genom flödescytometri, kan de användas för in vitro-och in vivo-funktionella analyser. Vi beskriver metoder för övervakning av antitumöraktivitet av neutrofiler, deras förmåga att migrera och att producera reaktiva syreradikaler, samt att övervaka deras fagocytisk kapacitet ex vivo. Vi beskriver ytterligare metoder för att märka neutrofiler för in vivo-spårning, och för att bestämma deras anti-metastatiska kapacitet in vivo. Alla dessa tekniker är nödvändiga för att förstå hur du skaffar och karakterisera neutrofiler med antitumörfunktion.

Introduction

Neutrofiler ursprungligen karakteriserades som det medfödda immunceller, vilka fungerar som första linjens försvar mot invaderande mikroorganismer. Idag är det känt att neutrofiler har mer långtgående funktioner, vara delaktiga i montering adaptiva immunsvar mot främmande antigener 1,2, som reglerar blodbildningen 3, angiogenes 4 och sårläknings 5. Dessutom kan neutrofiler påverka tumörtillväxt och metastasutvecklingen i kraft av deras pro- och anti-tumöraktiviteter 6,7. Neutrofiler kännetecknas av en polymorf segmenterad kärna (därav kallas polymorfonukleära (PMN) leukocyter) och innehåller åtminstone tre distinkta underklasser av granulat samt sekretoriska vesiklar 8 (Figur 1A-C).

Neutrofiler har hög fagocytisk kapacitet och hög NADPH-oxidasaktivitet kritisk för mikrobiell eliminering, och utsöndrar ett brett spektrum av kemokiner som är viktiga för pådragning av ytterligare neutrofiler och andra immunceller till platsen för inflammation 8,9. Neutrofiler kännetecknas av uttrycket av en stor mängd av ytreceptorer inklusive Toll-liknande receptorer (TLRs), C-typ Lectin Receptorer (CLR), komplementreceptor 3 (CD11b / CD18) och andra adhesionsmolekyler (t.ex., L-selektin, LFA-1, VLA-4 och karcinoembryoantigen relaterade celladhesionsmolekyl 3 (CEACAM3 / CD66b)), kemokinreceptorer (t.ex. CXCR1, CXCR2, CCR1, CCR2), kemoattraherande receptorer (t.ex. PAFR, LTB4 R och C5AR) , cytokinreceptorer (t.ex. G-CSFR, IL-1R, IL-4R, IL-12R, IL-18R, TNFR), formyl-peptidreceptorer (t.ex. FPR1-3) och Fc-receptorer (t ex CD16 (FcyRIII ), CD32 (FcyRII) och CD64 (FcyRI) 10. Hos möss är neutrofiler vanligen identifieras som CD11b + Ly6G +, medan humana neutrofiler identifieras med hjälp av CD11b, CD15, CD16 och CD66b leukocyter markörer. Det är också allmänt accepterat att färga för granulproteiner myeloperoxidas (MPO) och neutrofilelastas (NE) för detektering av neutrofiler i vävnader.

Det är fortfarande oklart om de olika funktionerna hos neutrofiler förmedlas av samma cell eller olika cellunderpopulationer. Ackumulerande data tyder på närvaron av en heterogen neutrofil population som uppvisar en hög grad av plasticitet som påverkas av pro-inflammatoriska stimuli och mikromiljön 11,12. Fridlender et al. 13 har grovt delas neutrofilerna i cancer i två stora delpopulationer kallas N1 med anti-tumöregenskaper och N2 med pro-tumöregenskaper. I cancer, såväl som vid kronisk inflammation, finns det ytterligare en subpopulation sammansatt av granulocytiska myeloida härledda suppressorceller (G-MDSCs) som undertrycker T-cellsvar 14. G-MDSCs anses vara omogna myeloidceller som kännetecknas av en CD11b + Ly6Clåg Ly6G hej fenotyp i möss 15, samtidigt som en CD15 + / CD16 låg fenotyp i mänsklig 16. G-MDSCs uttrycka högre nivåer av arginas och myeloperoxidas, medan lägre nivåer av cytokiner och kemokiner än normalt cirkulerande neutrofiler. De är mindre fagocytiska och flyttande, men ger högre nivåer av ROS 15,17,18. I föreliggande dokument kommer vi att beskriva några grundläggande metoder för isolering och karakterisering av neutrofiler med antitumöregenskaper.

Medan neutrofiler utgör den största befolkningen av alla vita blodkroppar i den mänskliga cirkulationen (45 – 70%, 1800 – 6000 / l), hos möss, under normala förhållanden, de är ganska glesa (10 – 15%, från 300 till 500 / il ). Neutrofilantalet ökar stadigt vid inflammation och ibland i cancer, som representerar ett tillstånd av kronisk inflammation 7. Neutrofiler utvecklas från multi gemensam myeloid föregångare (CMP) cells i benmärgen, genom en differentieringsprocess som passerar de olika stadierna i myeloblaster (MB), promyelocyter (PM), myelocyter (MC), metamyelocyter (MM) och bandceller (BC) 8. De mogna, efter mitotiska neutrofiler kan förbli i benmärgen 4 – 7 dagar innan de släpps till cirkulationen 8. Neutrofil omsättning i blodet är vanligtvis snabb med en genomsnittlig halveringstid på 6 – 12 timmar, som kan förlängas i enlighet med inflammatoriska tillstånd. Ostimulerade neutrofiler har begränsad anti-tumörframkallande aktivitet, en funktion som kan förvärvas genom att exponera de naiva neutrofiler till kemokinerna IL-8 (CXCL2), CCL2, CCL5 och CXCL5 6,19 eller artificiellt, genom att utsätta dem för forbolestem forbol 12 -myristate 13-acetat (PMA) 6.

Den korta halveringstiden för blodneutrofiler tillsammans med det låga antalet neutrofiler (~ 3-5 x 10 5) uppnås från en ml blod från en naiv 6-8 veckor gammal mus, har gjort detsvårt att utforska funktionen av cirkulerande mus neutrofiler in vitro. För att övervinna denna svårighet har andra källor använts. Exempelvis kan ett stort antal neutrofiler erhållas från benmärg 20 eller bukhinnan efter induktionen av steril inflammation (t.ex., efter intraperitoneal injektion av tioglykolat buljong eller Zymosan A). Det bör noteras att neutrofiler erhållna från peritonealhålan inte utövar något antitumörframkallande aktivitet (opublicerad observation).

Et al. Granot 6 observerat att BALB / c-möss ympades ortotopiskt med musen 4T1 bröstkarcinom cellinjen utveckla neutrofili vilket förvärrar med tumörprogression 6 (figur 2A), så att 20 till 40.000.000 blodneutrofiler kan lätt isoleras från en ml blod 3-4 veckor efter tumörinokulering. Dessa neutrofiler har förvärvat anti-tumöraktiviteter, och har därför varit coibestämda tumörburna neutrofiler (TEN), i syfte att skilja dem från naiva neutrofiler 6 (Figur 2B). Medan hög densitet neutrofiler (HDN, Figur 1A) är starkt antitumörframkallande, låg densitet neutrofiler (LDN, Figur 1B) som genereras i samband med cancer är inte 21. Även hög densitet neutrofiler från benmärgen och mjälten hos tumörbärande möss har anti-tumöraktivitet (opublicerade data). Det bör noteras att med tumörprogression mjälten blir gradvis förstorad (splenomegali), med ökande mängder neutrofiler.

Det bör noteras att TEN genereras också i andra modeller av cancer inklusive både spontana (MMTV-pymt och MMTV-Wnt1 brösttumörer och K-Ras-drivna lungtumörer) och injicerades (AT-3 (MMTV-pymt) och E0771 bröstkarcinom celler, LLC Lewis lungkarcinomceller och B16-F10-melanomceller). Men omfattningen av neutrofila mobilisering i dessa tumeller modeller är betydligt mindre än i 4T1-ympade möss, når 5 – 10 x 10 6 neutrofiler i 1 ml blod efter 3 veckor.

Protocol

Djur: 5-7 veckor gamla BALB / c-möss köptes från Harlan (Israel). Alla experiment på djur har godkänts av Hebrew University institutionella Djurvård och användning kommittén (IACUC). Mänskliga prov: Insamling av blod från cancerpatienter och friska försökspersoner godkändes av Hadassah Medical Center Institutional Review Board (IRB). 1. Induktion av neutrofiler med Anti-tumöregenskaper in vivo hjälp av en bröstcancer musmodell. OBS: Alla st…

Representative Results

I en nyligen genomförd studie identifierade vi en anti-metastaserande funktion för neutrofiler 6. Neutrofiler från tumörbärande möss förvärva en cytotoxiska fenotyp och har förmåga att döda tumörceller 6. Detta är i motsats till neutrofiler från naiva möss som inte har någon signifikant antitumöreffekt 6. Flera av de tekniker som beskrivits i protokollenheten har använts för att studera antitumör neutrofil funktion in vitro och in vivo-6. …

Discussion

Neutrofiler är den vanligast förekommande av alla vita blodkroppar och är de första responders i fall av infektion och inflammation. Som sådana är de mycket känsliga för yttre signaler och är lätt aktiveras. Dessutom neutrofiler har en mycket kort halveringstid och en snabb omsättning. Tillsammans utgör dessa egenskaper upp flera svårigheter att arbeta med neutrofiler, så att unika experimentella strategier krävs. Till exempel finns det flera neutrofila strategier renings, alla med sina egna fördelar och…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

ZG stöds av bidrag från I-CORE-programmet i Israel Science Foundation (Grant nr 41/11), den Abisch-Frenkel Foundation, Rosetrees Trust, Israel Cancer Research Foundation (ICRF – Forskning Career Development Award) och ORO stiftelse. ZGF stöds av bidrag från Israel Cancer Research Foundation (ICRF – Forskning Career Development Award), chefsforskare i Israel hälsoministeriet och Israel Lung Association.

Materials

CELL LINES
Mouse 4T1 breast carcinoma cells ADCC CRL-2539 Growth medium: DMEM + 10 % heat-inactivated FBS
PLASTIC WARES AND EQUIPMENTS
24-well Tissue Culture Plate  Falcon 353047 Sterile
100 mm Tissue Culture Plate  Corning 430167 Sterile
25 cm2 Tissue Culture Flask Nunc 156340 Sterile
90 mm Bacterial Grade Culture Dish  Miniplast, Ein Shemer, Israel 20090-01-017 Sterile
15 ml Sterile Conical Centrifuge Tube  Miniplast, Ein Shemer, Israel 835015-40-111 Sterile
50 ml Sterile Conical Centrifuge Tube  Miniplast, Ein Shemer, Israel 835050-21-111 Sterile
Falcon 12×75 mm Round-Bottom Polystyrene Tube  Becton Dickinson 352058 Sterile
Millicell 24 Migration Plate with a pore size of 5μm  Merck Millipore PSMT010R1 Sterile
White 96-Flat-Bottom Well Plate  Costar 3917 Sterile
Cell Strainer (40 mm)  BD Falcon 352340 Sterile
20G 1.5" Needle BD Microlance 3  301300 Sterile
23G 1" Needle  BD Microlance 4 300800 Sterile
25Gx5/8" Needle  BD Microlance 5 300600 Sterile
0.3 ml Syringe with a 30Gx8mm Needle BD Micro-Fine Plus Demi 320829 Sterile
9 mm Clips  BD, AutoClip  427631 Sterile
EasySep Magnet  STEMCELL Technologies 18000
MACS LS Separation Column  Miltenyi Biotech 130-042-201 Sterile
MidiMACS Separator Magnet Miltenyi Biotech 130-042-302
MACS MultiStand Miltenyi Biotech 130-042-303
Microscope Glass Slide  Menzel-Gläser Superfrost  Plus Thermo J1800AMNZ
Orbital Shaker  Sky line, ELMI S-3.02.10L
Plate Reader  TECAN InfiniteF200Pro
POWDER
Bovine serum albumin (BSA), fraction V Sigma A7906
Bromodeoxyuridine (BrdU)  BD Pharmingen 550891 Sterile
CFSE (5-(and 6-)-Carboxyfluorescein diacetate, succinimidyl ester) Molecular Probes C1157
Dextran T500 Sigma 31392
Heparin sodium salt from porcine intestinal mucosa  Sigma H3149
Sodium azide (NaN3) Sigma S8032 Highly toxic, handle with care
Thioglycollate powder  Difco 225650
Zymosan A Sigma Z4250
MEDIA AND SUPPLEMENTS
Dulbecco's modified Eagle medium (DMEM) Sigma D5796 Sterile
Opti-MEM® I reduced serum medium  Life Technologies 31985062 Sterile
Roswell Park Memorial Institute (RPMI)-1640 medium Sigma R8758 Sterile
Foetal bovine serum (FBS), heat-inactivated Sigma F9665 Sterile
L-Glutamine Biological Industries, Beth HaEmek, Israel 03-020-1A Sterile
Sodium pyruvate Biological Industries, Beth HaEmek, Israel 03-042-1B Sterile
Penicillin Streptomycin x1000 solution Biological Industries, Beth HaEmek, Israel 03-031-5 Sterile
Phosphate buffered saline (PBS) without Mg2+ and Ca2+  Biological Industries, Beth HaEmek, Israel 02-023-1 Sterile
PBSx10 without Ca2+ and Mg2+  Biological Industries, Beth HaEmek, Israel 02-023-5A Sterile
HPLC grade water  J.T. Baker 4218-03 Autoclave
SOLUTIONS
ACK – Ammonium-Chloride-Potassium Life Technologies  A10492-01
Bromodeoxyuridine (BrdU) solution (10 mg/ml) in PBS Dissolve 10 mg of BrdU in 1 ml PBS and sterile filter.
CFSE, 5 mM in DMSO Dissolve 2.8 mg of CFSE in 1 ml DMSO. Divide into 10 ml aliquots in sterile 200 ml tubes and store in the dark at -20oC.
Eosin Y solution Sigma HT110-2-32
Hanks' balanced salt solution Biological Industries, Beth HaEmek, Israel 02-016-1A Sterile
Heparin, 20 mg/ml in PBS Dissolve 100 mg Heparin in 5 ml sterile PBS, and sterile filter through a 0.2 mm filter. 
Histopaque-1119  Sigma 11191 Sterile filter through a 0.2 mm filter.
Histopaque-1077  Sigma 10771 Sterile filter through a 0.2 mm filter.
 Luciferase cell culture lysis buffer x5 Promega E153A Dilute 1:5 in sterile water just before use.
Luciferase assay solution Promega E1501 Contains luciferase assay substrate powder (E151A) and luciferase assay buffer (E152A)
Mayer's Hematoxylin solution  Sigma MHS-32
PBS+0.5% BSA Dissolve 2.5g BSA in 500 ml PBS, and sterile filter through a 0.2 mm filter.
PBS+1% BSA Dissolve 1g BSA in 100 ml PBS, and sterile filter through a 0.2 mm filter.
5x PBS with 2.5% BSA                Dissolve 12.5g BSA in a mixture of 250 ml sterile HPLC-grade water                     and 250 ml PBSx10, and sterile filter through a 0.2 mm filter.
PBS containing 0.5% BSA and 2 mM EDTA         Dissolve 250 mg BSA in 50 ml sterile PBS  and add 200 ml of 0.5M EDTA pH 8.0, sterile filter through a 0.2 mm filter.
FACS buffer (PBS containing 0.5% BSA, 2 mM EDTA and 0.02% NaN3)              Dissolve 250 mg BSA in 50 ml sterile PBS  and add 200 ml of 0.5M EDTA pH 8.0 and 500 ml of 2% NaN3, sterile filter through a 0.2 mm filter.
Saline (0.9% NaCl) Dissolve 9 g NaCl in 1000 ml ddw, autoclave
0.2% NaCl solution Dissolve 2 g NaCl in 1000 ml ddw, autoclave
1.6% NaCl solution Dissolve 16 g NaCl in 1000 ml ddw, autoclave
2 % Sodium azide Dissolve 1g sodium azide in 50 ml sterile ddw, keep at 4oC. Highly toxic.
3% Thioglycollate solution                                        Dissolve 3 g of thioglycollate powder in 100 ml ddw.                                        Boil until solution becomes yellow and autoclave.
Trypan blue solution (0.4%) Sigma T8154 Dilute 1:10 in PBS to get a 0.04% solution.
Trypsin solution B  Biological Industries, Beth HaEmek, Israel 03-046-1 Sterile
1 mg/ml Zymosan A                    Resuspend 1 mg Zymosan A  in 1 ml sterile PBS in an Eppendorf tube.                            Vortex vigorously and incubate the tube at 37 oC for 30 min. Do not autoclave.            Prepare the solution freshly before use. 
KITS
EasySep PE selection kit STEMCELL Technologies 18557
EasySep PE selection cocktail  STEMCELL Technologies 18151
the EasySep magnetic nanoparticles  STEMCELL Technologies 18150
Anti-Ly6G mouse MicroBead Kit Miltenyi Biotec 130-092-332
EasySep Mouse Neutrophil Enrichment Kit STEMCELL Technologies 19762
EasySep Human Neutrophil Enrichment Kit STEMCELL Technologies 19257
FITC BrdU flow kit BD Pharmingen  559619
MACS Neutrophil isolation kit Miltenyi Biotec 130-097-658
Phagocytosis Assay Kit  Cayman Chemical Company  500290
ANTIBODIES
FcR blocking antibody  Biolegend 101302
Purified rat anti-Ly6G antibody  BD Pharmingen  551459 Clone 1A8
PE-conjugated rat anti-mouse Ly6G antibody  Biolegend 127608 Clone 1A8
FITC-conjugated rat anti-mouse Ly6G BD Pharmingen  551460 Clone 1A8
PerCP-Cy5.5 rat anti-mouse Ly6G  TONBO Biosciences 65-1276 Clone 1A8
violetFluor 450-conjugated rat anti-mouse Ly6G  TONBO Biosciences 75-1276 Clone 1A8
FITC-conjugated rat anti-mouse CD11b BD Pharmingen  553310 Clone M1/70
FITC-conjugated rat anti-mouse Ly-6G and Ly-6C (GR-1) BD Pharmingen  553127 Clone RB6-8C5
PE-conjugated rat anti-mouse CD45 BD Pharmingen  553081 Clone 30-F11
FITC-conjugated rat anti-mouse F4/80  Abcam ab60343 Clone BM8
FITC-conjugated mouse anti-human CD66b  Biolegend 305103 Clone G10F5
Purified rat isotype control antibody (IgG2a, k)  BD Pharmingen  553927 Clone R35-95
LEAF purified Armenian hamster anti-mouse CD3e antibody BioLegend 100314 Clone 145-2C11

References

  1. Tangye, S. G., Brink, R. A helping hand from neutrophils in T cell-independent antibody responses. Nat Immunol. 13, 111-113 (2012).
  2. Mantovani, A., Cassatella, M. A., Costantini, C., Jaillon, S. Neutrophils in the activation and regulation of innate and adaptive immunity. Nat Rev Immunol. 11, 519-531 (2011).
  3. Pruijt, J. F., et al. Neutrophils are indispensable for hematopoietic stem cell mobilization induced by interleukin-8 in mice. Proc Natl Acad Sci U S A. 99, 6228-6233 (2002).
  4. Tecchio, C., Cassatella, M. A. Neutrophil-derived cytokines involved in physiological and pathological angiogenesis. Chem Immunol Allergy. 99, 123-137 (2014).
  5. Liu, M., et al. Formylpeptide receptors mediate rapid neutrophil mobilization to accelerate wound healing. PloS one. 9, e90613 (2014).
  6. Granot, Z., et al. Tumor entrained neutrophils inhibit seeding in the premetastatic lung. Cancer Cell. 20, 300-314 (2011).
  7. Sionov, R. V., Fridlender, Z. G., Granot, Z. The Multifaceted Roles Neutrophils Play in the Tumor Microenvironment. Cancer Microenviron. , (2014).
  8. Borregaard, N. Neutrophils, from marrow to microbes. Immunity. 33, 657-670 (2010).
  9. Yamashiro, S., et al. Phenotypic and functional change of cytokine-activated neutrophils: inflammatory neutrophils are heterogeneous and enhance adaptive immune responses. J Leukoc Biol. 69, 698-704 (2001).
  10. Futosi, K., Fodor, S., Mocsai, A. Neutrophil cell surface receptors and their intracellular signal transduction pathways. Int Immunopharmacol. 17, 638-650 (2013).
  11. Scapini, P., Cassatella, M. A. Social networking of human neutrophils within the immune system. Blood. 124, 710-719 (2014).
  12. Fridlender, Z. G., et al. Transcriptomic analysis comparing tumor-associated neutrophils with granulocytic myeloid-derived suppressor cells and normal neutrophils. PloS one. 7, e31524 (2012).
  13. Fridlender, Z. G., et al. Polarization of tumor-associated neutrophil phenotype by TGF-beta: ‘N1’ versus ‘N2. TAN. Cancer Cell. 16, 183-194 (2009).
  14. Talmadge, J. E., Gabrilovich, D. I. History of myeloid-derived suppressor cells. Nat Rev Cancer. 13, 739-752 (2013).
  15. Youn, J. I., Nagaraj, S., Collazo, M., Gabrilovich, D. I. Subsets of myeloid-derived suppressor cells in tumor-bearing mice. J Immunol. 181, 5791-5802 (2008).
  16. Choi, J., et al. CD15+/CD16low human granulocytes from terminal cancer patients: granulocytic myeloid-derived suppressor cells that have suppressive function. Tumour Biol. 33, 121-129 (2012).
  17. Brandau, S., et al. Myeloid-derived suppressor cells in the peripheral blood of cancer patients contain a subset of immature neutrophils with impaired migratory properties. J Leukoc Biol. 89, 311-317 (2011).
  18. Pillay, J., Tak, T., Kamp, V. M., Koenderman, L. Immune suppression by neutrophils and granulocytic myeloid-derived suppressor cells: similarities and differences. Cell Mol Life Sci. 70, 3813-3827 (2013).
  19. Lopez-Lago, M. A., et al. Neutrophil chemokines secreted by tumor cells mount a lung antimetastatic response during renal cell carcinoma progression. Oncogene. 32, 1752-1760 (2013).
  20. Boxio, R., Bossenmeyer-Pourie, C., Steinckwich, N., Dournon, C., Nusse, O. Mouse bone marrow contains large numbers of functionally competent neutrophils. J Leukoc Biol. 75, 604-611 (2004).
  21. Sagiv, J., et al. Phenotypic Diversity and Plasticity in Circulating Neutrophil Subpopulations in Cancer. Cell Reports. , (2015).
check_url/kr/52933?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Sionov, R. V., Assi, S., Gershkovitz, M., Sagiv, J. Y., Polyansky, L., Mishalian, I., Fridlender, Z. G., Granot, Z. Isolation and Characterization of Neutrophils with Anti-Tumor Properties. J. Vis. Exp. (100), e52933, doi:10.3791/52933 (2015).

View Video