Summary

Identificatie van de kinase-substraat Paren Met behulp van high throughput screening

Published: August 29, 2015
doi:

Summary

Protein phosphorylation is a central feature of how cells interpret and respond to information in their extracellular milieu. Here, we present a high throughput screening protocol using kinases purified from mammalian cells to rapidly identify kinases that phosphorylate a substrate(s) of interest.

Abstract

We hebben een screeningsplatform dedicated humane eiwitkinasen gefosforyleerd identificeren substraten die kunnen worden gebruikt om nieuwe signaaltransductieroutes ophelderen ontwikkeld. Onze aanpak biedt het gebruik van een bibliotheek van gezuiverde GST-gelabeld humaan proteïne kinasen en een recombinant eiwit substraat plaats. We hebben gebruik gemaakt van deze technologie MAP / microtubule-affiniteit regulerende kinase 2 (MARK2) identificeren als de kinase voor glucose gereguleerde plaats op CREB Regulated Transciptie coactivator 2 (CRTC2), een eiwit dat nodig is voor betaceldeling, alsmede de Axl familie van tyrosinekinasen als regulatoren van cel metastase door fosforylering van de adapter eiwit ELMO. We beschrijven deze technologie en te bespreken hoe het kan helpen om een ​​uitgebreide kaart van hoe cellen reageren op prikkels uit de omgeving vast te stellen.

Introduction

Protein post-translationele modificaties (PTMs) zijn essentieel voor intracellulaire communicatie. Misschien is het beste bestudeerd van PTMs is fosforylering gekatalyseerd door proteïne kinases, die een groot aantal eiwit functies, waaronder hun biochemische activiteit, subcellulaire lokalisatie, conformatie, stabiliteit en reguleren. De identificatie van fosforyleringsplaatsen op doeleiwitten kan door tryptische fosfopeptidekartering of nu standaard proteomische technieken waarbij monsters verrijkt gefosforyleerde peptides 1,2. Terwijl driekwart van het tot expressie proteoom verwachting worden gefosforyleerd 3 en een geïdentificeerde 200.000 fosforyleringslocaties 5, met schattingen tot 1 miljoen 6, veel van deze geen toegewezen biologie, signaalweg of proteïne kinase.

Terwijl de identificatie van gefosforyleerd sites is relatief eenvoudig, een relatief grotere uitdaging is omidentificeren van de verwante kinase (s) die deze plaatsen gericht een werkwijze we noemen mapping kinase: substraat paren. Verschillende benaderingen voor het identificeren van kinase: substraat paren zijn beschreven, beginnend met een kinase van belang zijn en op zoek naar de substraten of het starten met een substraat van belang en een poging om een modificerend kinase experimenteel 11/07 of computationeel 12 te vinden. Om kinases een bekende gefosforyleerd substraat identificeren, kan bioinformatica worden gebruikt om eiwitten die een korte geconserveerde sequentie van aminozuren aan weerszijden van de gefosforyleerde residu (de consensus plaatse), alsook het identificeren van kinasen die een bezinkbare complex met het substraat bevat te identificeren. Echter, deze methoden zijn tijdrovend en vaak niet met succes bekroond.

We ontwikkelden een systematische functionele benadering om snel kinasen die een bepaald substraat 13 kan fosforyleren identificeren. Het scherm test produceert uitstekende specifieketeit, met een zeer duidelijke keuze voor potentiële verwante kinases. Gezien de centrale plaats van fosforylering biologische signalering, het scherm is nuttig voor ontdekking in nagenoeg alle cellen signaalroutes 14-16. Het scherm omvat het uitvoeren van een grootschalig kinase assay met een bibliotheek van menselijk eiwit kinasen. De kinasen zijn gelabeld met bacteriële glutathion S-transferase (GST) eiwit worden gezuiverd uit zoogdiercellen celextracten, hetgeen betekent dat de recombinante enzymen – anders dan die bereid uit bacteriën – gegenereerd in aanwezigheid van het stroomopwaartse eiwit kinasen vaak nodig voor het recombinante enzymen activiteit in vitro. Inderdaad, terwijl serine, threonine en tyrosine kinase-activiteit vereist voor downstream kinase activatie aanwezig in gist 10 zijn, de gist genoom codeert 122 proteïnekinasen, wat aangeeft dat het zoogdier kinome, meer dan 500 genen 17 is geworden aanzienlijk complexer om regulaTÉ de processen die uniek zijn voor hogere orde organismen. Bovendien kan het effect van verschillende stimuli voor celbiologie en menselijke ziekten (bijvoorbeeld kleine moleculen, groeifactoren, hormonen, enz.) Worden gebruikt om relevante 14,15 moduleren kinaseactiviteit in een geschikte omgeving.

Protocol

1. Voorbereiding van de reagentia, platen, en cellen Voeg 500 ml lysis buffer: 25 mM Tris pH 7,5, 150 mM NaCl, 50 mM NaF, 0,5 mM EDTA pH 8,0, 0,5% Triton X-100, 5 mM beta-glycerofosfaat, 5% glycerol. Bewaar bij 4 ° C. Onmiddellijk vóór gebruik, voeg 1 mM dithiothreitol (DTT), 1 mM fenylmethylsulfonylfluoride (PMSF), en 1 mM natriumvanadaat. Na deze stap wordt PMSF niet vereist in spoelbuffer. Maak 20 ml van 10x kinase buffer: 200 mM Tris pH 7,5, 50 mM beta-glycerofosfaat (FW 216), 2 mM natriumvan…

Representative Results

Representatieve resultaten van een scherm worden getoond in Figuur 2. 180 kinasen werden gescreend met behulp van een GST-gelabeld peptidesubstraat overeenkomende met aa 268-283 van CRTC2 evenals de klassieke kinase assay substraat myeline basisch eiwit (MBP). Slechts twee kinasen, MARK2 en de nauw verwante kinase gefosforyleerd MARK3 de CRTC2 peptide. MBP wordt opgenomen als een interne controle in alle assays, zoals het bevat veel fosforyleerbare residuen en loopt bij 18 kDa, naar de …

Discussion

Aangezien de oorspronkelijke publicaties waarin de benadering 14,15, is de oorspronkelijke bibliotheek van 180 GST-kinases uitgebreid met 420 leden, en ~ 80% van het humane eiwit kinome. Met de uitgebreide bibliotheek, het protocol zoals beschreven duurt 4-5 dagen en dan 1-4 dagen om films te ontwikkelen (als noodzakelijk geacht), die door het gebruik van fosforimaging en digitale verhoging signaal kon worden ingekort. Er zijn een aantal belangrijke stappen waarbij zorg moet worden genomen (zie figuur…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dit werk werd ondersteund door NSERC subsidie 386634. Wij willen de leden van de Screaton Lab bedanken voor nuttig discussies.

Materials

Lysis buffer Made in house See Protocol step 1.1
10x kinase buffer Made in house See Protocol step 1.2
10x M-ATP Made in house See Protocol step 1.3
Human kinase plasmids Orfeome, Invitrogen, Origene GST-tagged in house
96 well plates Fisher Scientific CS003595
293T cells ATCC CRL-11268
DMEM  Fisher Scientific SH3002201 supplement with 100U/ml penicillin, 100ug/ml streptomycin, 10% fetal calf serum.
CO2 incubator Sanyo MCO-17AIC
15 cm cell culture dishes Fisher Scientific 877224
Reduced serum medium Invitrogen 22600-050
Lipid-based transfection reagent Invitrogen 11668-019
Automated liquid dispenser Thermo Scientific 5840300
Small cassette attachment Thermo Scientific 24073295
Standard cassette attachment Thermo Scientific 14072670
4mM pervanadate Made in house See Protocol step 3.1
0.25 M CaCl2 Made in house
Multichannel pipette (20-200 uL) Labnet p4812-200
Multichannel pipette (1-10 uL) Thermo Scientific 4661040
V-bottom 6-well plates Evergreen Scientific 290-8116-01V
Glutathione coated 96-well plates Fisher Scientific PI-15240
Hybridization oven Biostad 350355
GST tagged substrate Made in house
Myelin Basic Protein (MBP) Sigma M1891
Repeater pipette (1 mL) Eppendorf 22266209
32P gamma-ATP Perkin Elmer BLU502Z500UC
2X SDS lysis buffer (100 mL) Made in house See Protocol step 1.4
26-well precast TGX gels BioRad 567-1045 gel percentage required is dependent on the molecular weight of the substrate of interest
Coomassie stain Made in house 0.1% Coomassie R250, 10% acetic acid, 40% methanol
Coomassie destain Made in house 10% acetic acid, 20% methanol
Labeled gel containers Made in house Used plastic lids from empty tip boxes, just big enough to contain one gel
Whatman filter paper Fisher Scientific 57144
Cellophane sheets (2) BioRad 165-0963
Gel dryer Labconco 4330150
Double emulsion autoradiography film VWR IB1651454
Film cassette Fisher Scientific FBAC-1417
Intensifying screen Fisher Scientific FBIS-1417
Plate sealing rubber roller Sigma R1275

References

  1. Meisenhelder, J., Hunter, T., van der Geer, P. Phosphopeptide mapping and identification of phosphorylation sites. Curr Protoc Mol Biol. 18, Unit 18 19 (2001).
  2. Doll, S., Burlingame, A. L. Mass spectrometry-based detection and assignment of protein posttranslational modifications. ACS chem. 10, 63-71 (2015).
  3. Sharma, K., et al. Ultradeep human phosphoproteome reveals a distinct regulatory nature of Tyr and Ser/Thr-based signaling. Cell rep. 8, 1583-1594 (2014).
  4. Cohen, P. The regulation of protein function by multisite phosphorylation–a 25 year update. Trends Biochem Sci. 25, 596-601 (2000).
  5. Walsh, C. T. . Posttranslation Modification of Proteins: Expanding Nature’s Inventory. , (2006).
  6. Boersema, P. J., et al. In-depth qualitative and quantitative profiling of tyrosine phosphorylation using a combination of phosphopeptide immunoaffinity purification and stable isotope dimethyl labeling. Mol Cell Proteomics. 9, 84-99 (2010).
  7. Hutti, J. E., et al. A rapid method for determining protein kinase phosphorylation specificity. Nat Methods. 1, 27-29 (2004).
  8. Johnson, S. A., Hunter, T. Kinomics: methods for deciphering the kinome. Nat Methods. 2, 17-25 (2005).
  9. Pawson, T., Nash, P. Assembly of cell regulatory systems through protein interaction domains. Science. 300, 445-452 (2003).
  10. Zhu, H., et al. Analysis of yeast protein kinases using protein chips. Nat Genet. 26, 283-289 (2000).
  11. Shah, K., Shokat, K. M. A chemical genetic approach for the identification of direct substrates of protein kinases. Methods Mol Biol. 233, 253-271 (2003).
  12. Zou, L., et al. PKIS: computational identification of protein kinases for experimentally discovered protein phosphorylation sites. BMC bioinform. 14, 247 (2013).
  13. Varjosalo, M., et al. Application of active and kinase-deficient kinome collection for identification of kinases regulating hedgehog signaling. Cell. 133, 537-548 (2008).
  14. Jansson, D., et al. Glucose controls CREB activity in islet cells via regulated phosphorylation of TORC2. Proc Natl Acad Sci U S A. 105, 10161-10166 (2008).
  15. Fu, A., Screaton, R. A. Using kinomics to delineate signaling pathways: control of CRTC2/TORC2 by the AMPK family. Cell Cycle. 7, 3823-3828 (2008).
  16. Abu-Thuraia, A., et al. Axl phosphorylates elmo scaffold proteins to promote rac activation and cell invasion. Mol Cell Biol. 35, 76-87 (2015).
  17. Manning, G., Whyte, D. B., Martinez, R., Hunter, T., Sudarsanam, S. The protein kinase complement of the human genome. Science. 298, 1912-1934 (2002).
check_url/kr/53152?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Reeks, C., Screaton, R. A. Identification of Kinase-substrate Pairs Using High Throughput Screening. J. Vis. Exp. (102), e53152, doi:10.3791/53152 (2015).

View Video