This manuscript details a method used to generate prostate cancer patient derived xenografts (PDXs) from circulating tumor cells (CTCs). The generation of PDX models from CTCs provides an alternative experimental model to study prostate cancer; the most commonly diagnosed tumor and a frequent cause of death from cancer in men.
Patient derived xenograft (PDX) models are gaining popularity in cancer research and are used for preclinical drug evaluation, biomarker identification, biologic studies, and personalized medicine strategies. Circulating tumor cells (CTC) play a critical role in tumor metastasis and have been isolated from patients with several tumor types. Recently, CTCs have been used to generate PDX experimental models of breast and prostate cancer. This manuscript details the method for the generation of prostate cancer PDX models from CTCs developed by our group. Advantages of this method over conventional PDX models include independence from surgical sample collection and generating experimental models at various disease stages. Density gradient centrifugation followed by red blood cell lysis and flow cytometry depletion of CD45 positive mononuclear cells is used to enrich CTCs from peripheral blood samples collected from patients with metastatic disease. The CTCs are then injected into immunocompromised mice; subsequently generated xenografts can be used for functional studies or harvested for molecular characterization. The primary limitation of this method is the negative selection method used for CTC enrichment. Despite this limitation, the generation of PDX models from CTCs provides a novel experimental model to be applied to prostate cancer research.
Patient härledda xenografter blir alltmer populära experimentella modeller som används för cancerforskning. De kan användas för karakterisering av biomarkörer och biologiska vägar, pre-klinisk utvärdering av läkemedlets effektivitet och skapande av avatarer för personligt cancerterapier 1,2. Tidigare har andra forskargrupper utvecklade PDX modeller antingen genom att implantera eller injicera enstaka tumör cellsuspensioner eller hela tumör explants i nedsatt immunförsvar möss 1. Dessa PDX modeller kräver kirurgisk samling av färsk solid tumör, malign ascites eller pleurautgjutning från en patient som genomgår ett kirurgiskt ingrepp som är både kostsamt och utsätter patienten för ökad risk för iatrogen sjuklighet.
En betydande ny utveckling inom cancerforskningen har varit att upptäcka, isolering och karakterisering av cirkulerande tumörceller. Dessa tumörceller fly från den primära tumörmassan och börjar cirkuleradär de spelar en avgörande roll i metastas och återfall, den vanligaste orsaken till cancerrelaterad dödlighet 3. Utvärderingen och karakterisering av CTCs från flera solida tumörtyper har gett klinisk information för diagnos, prognos och övervakning kvarvarande sjukdom 3. En mängd olika för närvarande använda metoder som förlitar sig på antingen de fysikaliska egenskaper, uttryck av biomarkörer, eller funktionella egenskaper hos CTCs kan användas för att effektivt isolera CTC 4. Befintliga makroskala CTC isoleringsmetoder inkluderar densitetsgradientcentrifugering, fysisk filtrering med filter porer och separation mot ytmolekyler. Den mest använda CTC isolering metoder är baserade på antikroppsbaserad infångning av CTCs. Både positiva och negativa urval av cellytemarkörer kan användas för att isolera CTCs från perifert blod. Positiv selektion för CTCs i perifera cirkulationen använder vanligen epitelceller markörer (t.ex. EpCAM) som enre uttrycks på CTCs men inte hematopoietiska celler. Nackdelen med denna metod är att CTCs med metastatisk potential ofta har genomgått epitelial-till-mesenkymala övergång (EMT), som nedreglerar epiteliala ytmarkörer 3. För att isolera CTCs med metastatisk potential, till en negativ selektionsmetodik vilken utnyttjar det hematopoietiska ytmarkör, CD45, utarma den normala cellpopulationen av leukocyter kan användas 5.
Prostatacancer är den vanligaste diagnosen cancer och en viktig orsak till cancerrelaterade dödsfall hos män 6. Mekanismerna för tumörprogression och aggressivitet är inte klarlagd och därför genereringen och karakteriseringen av experimentella modeller som rekapitulera den molekylära heterogeniteten hos prostatacancer är av betydande intresse. PDX modeller av prostatacancer har varit tidigare genereras genom inympning av humana prostatacancerceller i immunocomutlovade möss 7,8. Emellertid genereringen av sådana modeller har hämmats av den låga engraftment hastigheten för prostatacancer i immunförsvagade möss, som i första hand tillskrivs den indolenta sjukdomens art. Nyligen har CTC använts för att generera bröstcancer 9, lungcancer 10 och prostatacancer 11 PDX modeller. Dessa proof-of-concept studier infört möjligheten att generera PDX modeller oberoende av behovet av kirurgisk provtagning. I denna artikel kommer vi i detalj beskriva en metod för generering av denna nya experimentmodell.
Detta manuskript beskriver ett förfarande för generering av prostatacancer PDX modeller ur CTC. Användningen av CTCs för genereringen av PDX modeller har flera potentiella viktiga fördelar jämfört med existerande metoder. Först, tillgänglig samling av CTCs från perifert blod möjliggör generering av experimentella modeller från samma patient vid olika sjukdomsstadier. För det andra representerar bloduppsamling en säkrare och billig metod för att isolera tumörceller jämfört med befint…
The authors have nothing to disclose.
We thank Dr. Jordi Ochando from the Flow Cytometry Shared Resources at the Mount Sinai Medical Center for their assistance in flow cytometry analysis. We thank Dr. Rumana Huq from the Microscopy Shared Resource Facility at the Mount Sinai Medical Center for their imaging assistance. The authors thank the TJ Martell Foundation for its support in this project.
Roswell Park Memorial Institute (RPMI) 1640 | Gibco Life Technologies | 11875-093 | |
Fetal Bovine Serum (FBS) | Gibco Life Technologies | 10437-028 | |
Penicillin Streptomycin | Gibco Life Technologies | 15140-122 | |
Phosphate Buffered Saline (PBS) | Corning Cell Gro | 21-031-CM | |
35 µm Cell Strainer | BD Falcon | 352340 | |
50 ml polystyrene conical tube | Crystalgen | 23-2263 | |
Red blood cell lysing buffer | Sigma | R7757 | |
DAPI | Invitrogen | d3571 | |
Ficoll-Paque Plus | GE Healthcare | 17-1440 | |
12 mm x 75 mm Polystyrene tubes with cell strainer cap | BD Falcon | 352235 | |
BD Vacutainer Lavender Blood Collection Tubes with EDTA | |||
BD Winged Blood Collection Set with Push Button Retract Needle 23 gauge | |||
BD Vacutainer One Use Needle Holder | |||
Disposable Latex Tourniquet | |||
Latex or non-latex gloves | |||
alcohol swabs | |||
2×2 cotton gauze pads | |||
Adhesive bandage | |||
25 gauge needle | |||
1 ml syringe |