Summary

Ex Vivo Tarm Sacs å vurdere slimhinner Permeabilitet i modeller av gastrointestinal sykdom

Published: February 09, 2016
doi:

Summary

This protocol describes the use of excised intestinal tissue preparations or “intestinal sacs” as an ex vivo model of intestinal barrier function. This model may be used to assess integrity of both the epithelial barrier and the mucous gel layer at specific intestinal sites in animal models of digestive disease.

Abstract

Epiteliale barrieren er den første medfødt forsvar av mage-tarmkanalen og selektivt regulerer transport fra lumenet til de underliggende vev kamrene, som begrenser transporten av mindre molekyler på tvers av epitelet og nesten fullstendig forbud mot epitel makromolekylær transport. Denne selektivitet er bestemt av den slimete gel-lag, som begrenser transporten av lipofile molekyler og både de apikale reseptorer og stramme synaptiske proteinkomplekser av epitelet. In vitro cellekultur modeller av epitelet er praktisk, men som en modell, de mangler kompleksiteten i samspillet mellom bakterieflora, slimete-gel, epitel og immunsystem. På den annen side, kan in vivo-evaluering av intestinal absorpsjon eller permeabilitet skal utføres, men disse analysene måle samlet gastrointestinal absorpsjon, uten noen indikasjon på området spesifisitet. Ex vivo-permeabilitet-analyser ved hjelp av "tarm" sekker; er en hurtig og følsom metode for å måle enten samlet intestinal integritet eller sammen transport av et spesifikt molekyl, med den ekstra fordelen av intestinale området spesifisitet. Her beskriver vi utarbeidelsen av tarm sekker for permeabilitet studier og beregningen av den tilsynelatende permeabilitet (P app) av et molekyl på tvers av tarmbarrieren. Denne teknikken kan bli anvendt som en metode for å vurdere medikament absorpsjonen, eller for å undersøke regional epitele barrieren dysfunksjon i dyremodeller av gastrointestinal sykdom.

Introduction

Intestinal epithelial barrieren i fordøyelseskanalen er en slimhinneoverflateareal beregnet på 400 m 2 i et voksent menneske. Følgelig er det stadig utsatt flagget fra mikrober, inntatte legemidler, næringsstoffer og bakterielle toksiner. Verten må ikke bare skille mellom tolererkommensale bakterier og potensielle patogener, men må forhindre at disse arter og deres utskilte molekyler fra krysset epiteliale barriere, mens på samme tid slik at absorpsjon av næringsstoffer. Således er rollen til tarmepitelet for å virke som en selektiv barriere for de luminale innhold 1. Dette oppnås delvis ved det medfødte epithelial forsvarssystemet på mukosa, som virker gjennom en responsiv biologisk system som består av konstitutive og induserbare mekanismer 2.

Tap av epitelial barrierefunksjonen er en patologi som er karakteristisk for en rekke av gastrointestinale sykdommer. In vivo-undersøkelse av epitelial barrierefunksjonen kan bli vurdert gjennom oralt inntak av en tracer molekyl og påfølgende serum analyse 3. Men denne teknikken gir ingen indikasjon med hensyn til området for barrieren dysfunksjon. In vitro og ex vivo vurdering av transepitelial motstand ved hjelp av Transwell systemer 3 og Ussing-kammere 4,5 henholdsvis, blir ofte anvendt som surrogatmarkører for epitelial barrierefunksjon, men mangler den medvirkende sykdom fysiologi av dyremodeller 6. I denne protokollen beskriver vi en ex vivo vev fremstilling modell som gjør det mulig direkte og lokalisert evaluering av intestinal integritet, og som kan brukes til å vurdere mucosal barrierefunksjon på en rekke nivåer. Viktigere, kan denne teknikken bli anvendt for å dyremodeller av sykdom, eller kan være farmakologisk manipulert til å tillate grundig utspørring av slimhinnebarriere dysfunksjon.

Protocol

Alle dyr arbeid i denne protokollen er utført med streng overholdelse av University of Newcastle dyreetikk Komiteen godkjente prosedyrer. 1. Utarbeidelse av instrumenter, Culture Media and Dishes Forvarm Media 199 (TC199) eller Dulbeccos Modified Eagle Medium (DMEM) media til 37 ° C. Pre-oksygenatom mediet ved å boble med 95% O2 / 5% CO2. Sjekk at mediet har en endelig pH på 7,3. Forbered sutur ved å kutte to 5 cm seksjoner for hve…

Representative Results

Denne protokollen kan bli brukt til å undersøke regionale forandringer i tarmbarriere i dyremodeller av gastrointestinal sykdom. Ved å måle fluksen av en paracellulære sonde over mukosal overflate ved forskjellige områder av mage-tarmkanalen 7, kan integriteten av epiteliale tett veikryss bli vurdert. I tillegg, ved å variere arten av den paracellulære sonde med størrelse (figur 2) eller hydrofobi (figur 3), graden av epiteliale forst…

Discussion

Her har vi inngående isolasjon og forberedelse av tarm sekker for å vurdere slimhinnene barrierefunksjon ex vivo. Tarm sac forberedelsene har først og fremst vært brukt i farmasøytisk forskning, undersøke opptaket av kandidat narkotika over tarmen. Imidlertid er denne analysen like godt egnet for undersøkelse av tarmsykdom. Intestinal permeabilitet kan variere sterkt fra region til region og språk konkret vurdering av permeabilitet gir en bedre forståelse av den regionale betydningen av mucosal integri…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work was funded by National Health and Medical Research Project Grant APP1021582 and a Hunter Medical Research Institute grant sponsored by Sparke Helmore/NBN Triathlon and the Estate of the late Leslie Kenneth McFarlane.

Materials

Dekantel  Non-absorbable Silk suture Braintree Scientific SUT-S 116
Media 199 (TC199)  Life Technologies 11043-023 No phenol red as this interferes with fluorescence
Dulbecco's Modified Eagle Medium (DMEM) Life Technologies 21063-045 No phenol red as this interferes with fluorescence
N-acetylcysteine Sigma Aldrich Use at 10mM in media
Small animal vascular cathether: Physiocath Data Sciences International 277-1-002
FITC-Dextran 4400 MW Sigma Aldrich FD-4
FITC-Dextran 20,000 MW Sigma Aldrich FD-20
FITC-Dextran 70,000 MW Sigma Aldrich FD-70

References

  1. Goggins, B. J., Chaney, C., Radford-Smith, G. L., Horvat, J. C., Keely, S. Hypoxia and Integrin-Mediated Epithelial Restitution during Mucosal Inflammation. Frontiers in immunology. 4, 272 (2013).
  2. Otte, J. M., Kiehne, K., Herzig, K. H. Antimicrobial peptides in innate immunity of the human intestine. Journal of gastroenterology. 38, 717-726 (2003).
  3. Robinson, A., et al. Mucosal protection by hypoxia-inducible factor prolyl hydroxylase inhibition. Gastroenterology. 134, 145-155 (2008).
  4. Feighery, L., et al. Increased intestinal permeability in rats subjected to traumatic frontal lobe percussion brain injury. The Journal of trauma. 64, 131-137 (2008).
  5. Keely, S., et al. Chloride-led disruption of the intestinal mucous layer impedes Salmonella invasion: evidence for an ‘enteric tear’ mechanism. Cellular physiology and biochemistry : international journal of experimental cellular physiology, biochemistry, and pharmacology. 28, 743-752 (2011).
  6. Keely, S., et al. Contribution of epithelial innate immunity to systemic protection afforded by prolyl hydroxylase inhibition in murine colitis. Mucosal immunology. 7, 114-123 (2014).
  7. Sourisseau, T., et al. Regulation of PCNA and cyclin D1 expression and epithelial morphogenesis by the ZO-1-regulated transcription factor ZONAB/DbpA. Mol Cell Biol. 26, 2387-2398 (2006).
  8. Ruehl-Fehlert, C., et al. Revised guides for organ sampling and trimming in rats and mice–part 1. Exp Toxicol Pathol. 55, 91-106 (2003).
  9. Barthe, L., Woodley, J. F., Kenworthy, S., Houin, G. An improved everted gut sac as a simple and accurate technique to measure paracellular transport across the small intestine. European journal of drug metabolism and pharmacokinetics. 23, 313-323 (1998).
  10. Marks, E., et al. Oral Delivery of Prolyl Hydroxylase Inhibitor: AKB-4924 Promotes Localized Mucosal Healing in a Mouse Model of Colitis. Inflammatory bowel diseases. 21, 267-275 (2015).
  11. Keely, S., et al. Hypoxia-inducible factor-dependent regulation of platelet-activating factor receptor as a route for gram-positive bacterial translocation across epithelia. Mol Biol Cell. 21, 538-546 (2010).
  12. Brayden, D. J., Bzik, V. A., Lewis, A. L., Illum, L. CriticalSorb promotes permeation of flux markers across isolated rat intestinal mucosae and Caco-2 monolayers. Pharmaceutical research. 29, 2543-2554 (2012).
  13. Hubbard, D., Ghandehari, H., Brayden, D. J. Transepithelial transport of PAMAM dendrimers across isolated rat jejunal mucosae in ussing chambers. Biomacromolecules. 15, 2889-2895 (2014).
  14. Keely, S., et al. In vitro and ex vivo intestinal tissue models to measure mucoadhesion of poly (methacrylate) and N-trimethylated chitosan polymers. Pharmaceutical research. 22, 38-49 (2005).
  15. Maher, S., et al. Evaluation of intestinal absorption enhancement and local mucosal toxicity of two promoters. I. Studies in isolated rat and human colonic mucosae. European journal of pharmaceutical sciences : official journal of the European Federation for Pharmaceutical Sciences. 38, 291-300 (2009).
  16. Balda, M. S., et al. Functional dissociation of paracellular permeability and transepithelial electrical resistance and disruption of the apical-basolateral intramembrane diffusion barrier by expression of a mutant tight junction membrane protein. The Journal of cell biology. 134, 1031-1049 (1996).
  17. Behrens, I., Stenberg, P., Artursson, P., Kissel, T. Transport of lipophilic drug molecules in a new mucus-secreting cell culture model based on HT29-MTX cells. Pharmaceutical research. 18, 1138-1145 (2001).
  18. Stefka, A. T., et al. Commensal bacteria protect against food allergen sensitization. Proc Natl Acad Sci U S A. 111, 13145-13150 (2014).
  19. Keely, S., et al. Activated fluid transport regulates bacterial-epithelial interactions and significantly shifts the murine colonic microbiome. Gut microbes. 3, 250-260 (2012).
  20. Barrett, K. E., Keely, S. J. Chloride secretion by the intestinal epithelium: molecular basis and regulatory aspects. Annual review of physiology. 62, 535-572 (2000).
  21. Soni, J., et al. Rat, ovine and bovine Peyer’s patches mounted in horizontal diffusion chambers display sampling function. Journal of controlled release : official journal of the Controlled Release Society. 115, 68-77 (2006).
  22. Justino, P. F., et al. Regulatory role of Lactobacillus acidophilus on inflammation and gastric dysmotility in intestinal mucositis induced by 5-fluorouracil in mice. Cancer chemotherapy and pharmacology. , (2015).
  23. Tran, C. D., Sundar, S., Howarth, G. S. Dietary zinc supplementation and methotrexate-induced small intestinal mucositis in metallothionein-knockout and wild-type mice. Cancer biology & therapy. 8, 1662-1667 (2009).
  24. Musch, M. W., Wang, Y., Claud, E. C., Chang, E. B. Lubiprostone decreases mouse colonic inner mucus layer thickness and alters intestinal microbiota. Digestive diseases and sciences. 58, 668-677 (2013).
check_url/kr/53250?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Mateer, S. W., Cardona, J., Marks, E., Goggin, B. J., Hua, S., Keely, S. Ex Vivo Intestinal Sacs to Assess Mucosal Permeability in Models of Gastrointestinal Disease. J. Vis. Exp. (108), e53250, doi:10.3791/53250 (2016).

View Video