Summary

미생물 학적으로 방해석 강수량 유도에 의해 중재<em> Sporosarcina pasteurii</em

Published: April 16, 2016
doi:

Summary

Protocols for microbiologically induced calcite precipitation (MICP) using the bacterium Sporosarcina pasteurii are presented here. The precipitated calcium carbonate was characterized through optical microscopy and scanning electron microscopy (SEM). It is also shown that exposure to MICP increases the compressive strength of sponge.

Abstract

여기에서 조사중인 특정 세균 (S.의 pasteurii)는 자연 효소 분해 효소의 분비를 통해 환경을 발생에 요소 (ureolysis)의 가수 분해를 유도하기 위해, 오른쪽 조건, 능력에 고유합니다. ureolysis이 과정은 화학 반응의 체인을 통해, 탄산 칼슘 침전물의 형성을 이끈다. 이것은 미생물 학적 유도 방해석 강수량 (MICP)로 알려져있다. MICP에 대한 적절한 배양 프로토콜은 여기에 자세히 설명되어 있습니다. 마지막으로, 현미경의 다양한 모드 하에서 가시화 실험은 침전 과정의 다양한 양상을 이해하기 위해 수행 하였다. 광학 현미경과 같은 기술은, 주사 전자 현미경 (SEM) 및 X 선 사진 전자 분광법 (XPS)을 화학적으로 최종 제품의 특성을 이용 하였다. 또한, 천연 다공성 매질의 내부에 기공이 막히게하는 석출물의 능력은 어디 스폰지 질적 실험을 통해 증명되었다막대는 길이 스케일의 범위의 기공 망을 모방 하였다. 균체를 함유하는 배양액에 침지 스폰지 바 인해 화학적 침전의 연속 공정에서 얻어진 그 기공의 막힘 경화. 경화 된 바 거의 변형과 동일한 중량을지지 할 수있는 반면, 압축 및인가되는 외력의 작용에 의해 압착된다 제어 스폰지 바 비교했을 때 강화 된 스폰지 바는 우수한 강도를 나타낸다.

Introduction

Sporosarcina pasteurii이 높은 알칼리성 환경 (pH를 ~ 10) 1 살아남을 수 그람 양성 세균과 (MICP) 2-4 미생물 학적 유도 방해석 강수량라는 현상의 원인 물질이 될 수있는 박테리아 종 중 하나입니다. MICP 탄산 칼슘의 침전은 적합한 환경 조건 하에서 특정 미생물에 의해 유발되는 것을 특징으로하는 공정이다. S. pasteurii 인해 특정 조건에서 MICP의 상당한 볼륨을 유도 가능한 에이전트로의 식별에 최근 몇 년 동안 중요성을 가정하고있다. 이러한 가능성은 사실에서 유래하는 S. pasteurii는 효소 분해 효소의 풍부한 양을 분비하는 고유 한 기능이 있습니다. 이 효소는 물 분자의 존재 하에서 우레아 가속 분해 (광범위하고 풍부한 공급 천연 생화학 화합물)을 촉진하는 촉매로서 작용한다. 반응의 폭포,이 과정 궁극적 통해LY는 음전하 탄산염 이온의 발생을 이끈다. 이러한 이온 차례로 마지막 탄산 칼슘 (방해석)의 침전물을 형성하는 양의 칼슘 등의 금속 이온과 반응; 따라서 라벨 MICP 5-9.

MICP 과정은 수십 10,11 알려져 및 연구되어왔다. 지난 몇 년간, MICP 엔지니어링 상향식 녹색 건설 12 대규모 구조 (13, 14) 및 탄소 제거 및 스토리지 (15, 16)의 개선을 포함하여 환경 광범위한 애플리케이션에 대해 조사되었다.

예를 들어, Cunnigham 동부 표준시 01시 07분. 알은 베레 사암 코어를 포함하는 고압 적당한 온도 유동 반응기를 설계 하였다. 반응기 세균 S. 접종시켰다 fridgidimarina 고압의 초 임계 이산화탄소를 주입, 세공 용적 내부 ​​미생물의 대량 축적의 조건 하에서을 메은 투과성이 95 % 이상 감소되었다하는 관찰되었다. Jonkers 및 슐 랑겐 (18)는 콘크리트의 자기 치유 과정에 대한 박테리아의 특수한 변형의 효과를 연구 하였다. 표면의 기공을 통해 입력 기공 네트워크로 전송 외부 물은 다시 MICP를 통해 구조 강도 도움이 휴면 박테리아를 활성화 할 것으로 예상된다. TOBLER (19) 등. S. ureolytic의 활성을 비교 한 대규모 MCIP를 선호하는 조건에서 원주민 지하수 ureolytic의 소우주로 pasteurii 것을 발견 S. pasteurii은 토착 공동체 전에 분해 효소 활동이 부족하더라도 방해석의 침전을 개선하기 위해 일관성있는 기능이 있습니다. MORTENSEN 20 et.al 토양 종류, 염화 암모늄, 염분 농도, 산소 농도 및 MICP에 세포의 용해 농도 등 외부 요인의 영향을 연구 하였다. 생물학적 처리 공정 RESP 매우 강력한 그들의 데모요법 파라미터 공간에서 넓은 변동이 수행되는 박테리아를 강화 적절한 농축 과정을 제공하는 다양한 대규모 교정 애플리케이션이 프로세스의 적합성을 입증 할. 필립스 동부 표준시 02시 01분. 알은 S. 주입 후 모래 열 및 사암 코어의 투자율과 강도의 변화를 연구하는 실험을 설계 pasteurii 문화. 파단 강도가 세 배 증가하면서 4 번 – 그들은 투과성이 감소하면서하였습니다.

S.의 pasteurii과 MICP의 역할은 활발한 연구 및 화학 침전의 메커니즘에 관한 몇 가지 문제의 주제는 아직 완전히 이해되지 않습니다 있습니다. 이것에 비추어,에 정확하게 배양 S.를 적절히 농축 스톡 일관된 표준 프로토콜 집합이 매우 중요 MICP를 달성하기 위해 pasteurii. 여기서 우리는 반복성과 재현성을 보장하는 엄격한 프로토콜을 설명합니다. 이 엄마nuscript는 S.을 배양하기위한 상세한 프로토콜을 설명합니다 pasteurii 적절 침전을 유도하는 배양 배지를 농축. 이 공정은 광학 및 주사 전자 현미경 (SEM) 및 X 선 사진 전자 분광법 (XPS) 등의 각종 현미경 기술을 통해 조사된다. 원고의 초점은 MICP의 과정에 있습니다. 잘 확립 된 표준 프로토콜 인 SEM과 SIMS 같은 절차는 별도로 설명하지 않는다.

Protocol

주 : 이하의 순서로 실험 프로토콜을 수행한다. 세균 배양 프로토콜이 제 1 절에 설명되어 있습니다 (또한 그림 1 참조). 제 2 절 외부 첨가제를 사용하여 배양 배지를 농축하기위한 프로토콜을 설명합니다. 3 장에서는 다중 모드 현미경을위한 프로토콜을 설명합니다. 모든 각 요소의 가중치는 분석 저울을 사용하여 측정 될 수있다. 각 용액의 부피 체적 실린더를 사용하여 측정 될 수있…

Representative Results

S.는 alkaliphile (24)는 상대적으로 가혹한 조건에서 살아남을 수있는 pasteurii. 전술 한 배양 프로토콜 및 S. 하였다 때 pasteurii 박테리아 시간 (도 2a)을 통해 탄산 칼슘의 석출을 유도, 챔버 내부에서 성장된다.도 2 (b) 배양액 내의 박테리아 세포 집단의 위상차 광학 현미경 이미지를 나타낸다. 각 셀은 매우 명백 세균 …

Discussion

중요한 단계 :이 논문은 S.의 가능한 샘플을 배양 상세히 설명 프로토콜 pasteurii. 배양이 readied 한 후에는 적절히 농축되어야한다. 적절한 화학적 환경을 제공하는 실패가 어느 매우 긴 시간 척도 침전 또는 이들 전체 부족 리드 때문에 실험의 성공에 필수적인 중요한 단계이다. S. pasteurii 여러 외부 기관에 매우 민감하며 생화학 적 안정성과 반복성을 보장하는 치료…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

We wish to acknowledge the partners in the Helmholtz-Alberta Initiative, the Helmholtz Association and the University of Alberta, for the support resulting from participation in this collaboration. Research funding is provided by the Helmholtz Association’s Initiative and Networking Fund, the participating Helmholtz Centers and by the Government of Alberta through Alberta Environment’s ecoTrust program.

Dr. Tanushree Ghosh is gratefully acknowledged for her critical inputs at a number of crucial stages.

Materials

Petridish Fisher Scientific FB0875712 Petridishes being used as Agar plate
Pyrex Flasks Fisher Scientific S63268 Corning Erlenmeyer
Tris-Base Promega H5133 being used to make Tris-Buffer
Hydrochloric Acid Sigma-Aldrich H9892 1.0 N, Bioreagent, suitable for cell culture
Agar Powder Sigma-Aldrich A1296 microbiology tested, plant cell culture tested, cell culture tested, powder
Ammonium Sulphate Sigma-Aldrich A4418 for Molecular Biology
Yeast extract powder Sigma-Aldrich 51475
Measuring Cylinder Cole-Parmer CP08559GC Cole-Parmer Class A Graduated Cylinder w/Cal Cert,TC;1000ml,1/Pk
Analytical Balance OHAUS AX124E being used to measure weight of reagents
Autoclave Brinkmann 58619000
Autoclave Tape VWR 52428864
Aluminum Foil Sigma-Aldrich Z185140 being used to seal the flask before placing it in Autoclave
Bacterial Stock Cedarlane 11859 -80°C stock of S. pasteurii, ATCC No. is mentioned against Cat. No.
Mline Single-Channel Mechanical Pipettors, Variable Volume Biohit 725010 Marketed by VWR under catalog number 14005976
Micropipette Tip Fisher Scientific 212772B Used for scratching Agar plates
Incubator Binder 80079098 Microbiology Incubator,BF Series
Shaking Incubator VWR 14004300 VWR Signature Benchtop Shaking Incubators
Phosphate Buffer Saline (PBS)  Sigma-Aldrich P7059
BD Falcon Express Pipet-Aid Pipetting Device BD Biosciences 357590 Marketed by VWR under catalog number 53106220
Parafilm Sigma-Aldrich P7793 Being used to seal Agar plates
Urea Sigma-Aldrich U1250 Enrichment for nutrient medium
Sodium Bicarbonate Sigma-Aldrich S8875 Enrichment for nutrient medium
Calcium chloride Sigma-Aldrich C1016 Enrichment for nutrient medium

References

  1. Gibson, T. An investigation of the Bacillus pasteurii group. Journal of Bacteriology. 28, 491-502 (1934).
  2. Greenfield, L. J. Metabolism and concentration of calcium and magnesium and precipitation of calcium carbonate by a marine bacterium. Annals of the New York Academy of Sciences. 109, 23-45 (1963).
  3. Phillips, A. J. Engineered applications of ureolytic biomineralization: a review. Biofouling. 29, 715-733 (2013).
  4. Dhami, N. K., et al. Biomineralization of calcium carbonates and their engineered applications: a review. Frontiers in microbiology. 4, 314 (2013).
  5. Cuthbert, M. O., et al. Controls on the rate of ureolysis and the morphology of carbonate precipitated by S. Pasteurii biofilms and limits due to bacterial encapsulation. Ecological Engineering. 41, 32-40 (2012).
  6. Okwadha, G. D., et al. Optimum conditions for microbial carbonate precipitation. Chemosphere. 81, 1143-1148 (2010).
  7. Stocks-Fischer, S., et al. Microbiological precipitation of CaCO3. Soil Biology and Biochemistry. 31, 1563-1571 (1999).
  8. Lauchnor, E. G., et al. Bacterially induced calcium carbonate precipitation and strontium coprecipitation in a porous media flow system. Environmental science & technology. 47, 1557-1564 (2013).
  9. Al Qabany, A., et al. Factors Affecting Efficiency of Microbially Induced Calcite Precipitation. Journal of Geotechnical and Geoenvironmental Engineering. 138, 992-1001 (2012).
  10. Morita, R. Y. Calcite precipitation by marine bacteria. Geomicrobiology Journal. 2, 63-82 (2009).
  11. Chafetz, H. S. Marine peloids: A product of bacterially induced carbonate precipitation. Journal of Sedimentary Petrology. 56, 812-817 (1986).
  12. Whiffin, V. S. . Microbial CaCO3 precipitation for the production of biocement. , (2004).
  13. Paassen, L. A., et al. Scale up of BioGrout: a biological ground reinforcement method. Proceedings of the 17th International Conference on Soil Mechanics and Geotechnical Engineering. , 2328-2333 (2009).
  14. Cunningham, A. B., et al. Microbially enhanced geologic containment of sequestered supercritical CO2. Energy Procedia. 1, 3245-3252 (2009).
  15. Mitchell, A. C., et al. Biofilm enhanced geologic sequestration of supercritical CO2. International Journal of Greenhouse Gas Control. 3, 90-99 (2009).
  16. Cunningham, A. B., et al. Reducing the risk of well bore leakage of CO2 using engineered biomineralization barriers. Energy Procedia. 4, 5178-5185 (2011).
  17. Jonkers, H. M., et al. Application of bacteria as self-healing agent for the development of sustainable concrete. Ecological Engineering. 36, 230-235 (2010).
  18. Tobler, D. J., et al. Transport of Sporosarcina pasteurii in sandstone and its significance for subsurface engineering technologies. Applied Geochemistry. 42, 38-44 (2014).
  19. Mortensen, B. M., et al. Effects of environmental factors on microbial induced calcium carbonate precipitation. Journal of applied microbiology. 111, 338-349 (2011).
  20. Phillips, A. J., et al. Potential CO2 leakage reduction through biofilm-induced calcium carbonate precipitation. Environmental science & technology. 47, 142-149 (2013).
  21. vander Heide, P. . X-ray Photoelectron Spectroscopy: An introduction to Principles and Practices. , (2011).
  22. Wiley, W. R., et al. Requirement of an alkaline pH and ammonia for substrate oxidation by Bacillus pasteurii. Journal of Bacteriology. 84, (1962).
  23. Tagliaferri, F., et al. Observing strain localisation processes in bio-cemented sand using x-ray imaging. Granular Matter. 13, 247-250 (2011).
  24. Kumar, A., et al. Microscale confinement features can affect biofilm formation. Microfluidics and Nanofluidics. 14, 895-902 (2012).
  25. Valiei, A., et al. A web of streamers: biofilm formation in a porous microfluidic device. Lab on a chip. 12, 5133-5137 (2012).
  26. . LIVE/DEAD Bacterial Viability kit, Two-color bacterial viability assay Available from: https://tools.lifetechnologies.com/content/sfs/manuals/mp07007.pdf (2004)
check_url/kr/53253?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Bhaduri, S., Debnath, N., Mitra, S., Liu, Y., Kumar, A. Microbiologically Induced Calcite Precipitation Mediated by Sporosarcina pasteurii. J. Vis. Exp. (110), e53253, doi:10.3791/53253 (2016).

View Video