Summary

C57BL / 6 चूहों में प्रणालीगत एक प्रकार का वृक्ष की bm12 inducible मॉडल (एसएलई)

Published: November 01, 2015
doi:

Summary

The transfer of bm12 lymphocytes into a C57BL/6 recipient is an established model of systemic lupus erythematosus. Here we describe how to initiate disease using this model and how to characterize T follicular helper cells, germinal center B cells and plasma cells by flow cytometry.

Abstract

Systemic lupus erythematosus (SLE) is an autoimmune disease with diverse clinical and immunological manifestations. Several spontaneous and inducible animal models mirror common components of human disease, including the bm12 transfer model. Upon transfer of bm12 splenocytes or purified CD4 T cells, C57BL/6 mice rapidly develop large frequencies of T follicular helper cells (Tfh), germinal center (GC) B cells, and plasma cells followed by high levels of circulating anti-nuclear antibodies. Since this model utilizes mice on a pure C57BL/6 background, researchers can quickly and easily study disease progression in transgenic or knockout mouse strains in a relatively short period of time. Here we describe protocols for the induction of the model and the quantitation Tfh, GC B cells, and plasma cells by multi-color flow cytometry. Importantly, these protocols can also be used to characterize disease in most mouse models of SLE and identify Tfh, GC B cells, and plasma cells in other disease models.

Introduction

प्रणालीगत एक प्रकार का वृक्ष (एसएलई) परमाणु विरोधी एंटीबॉडी (एएनए) के उत्पादन और स्तवकवृक्कशोथ द्वारा prototypically विशेषता एक जटिल ऑटोइम्यून रोग है। कई अन्य त्वचीय सहित sequelae, कार्डियो-फेफड़े, यकृत और घावों कुछ व्यक्तियों में रोग के साथ जुड़े रहे हैं। अमेरिका में व्यापकता का अनुमान महिलाओं और अल्पसंख्यकों 3 में विशेष रूप से उच्च घटना के साथ, 150,000-1,500,000 1,2 से व्यापक रूप से भिन्न। एसएलई के एटियलजि विचार करने के लिए मुश्किल हो गया है, यद्यपि यह प्रणालीगत औतोइम्मुिनित में culminate जो विभिन्न आनुवांशिक और पर्यावरणीय कारकों की परस्पर क्रिया से पैदा करने के लिए सोचा है।

कई पशु मॉडल रोग की शुरुआत और प्रगति के लिए अग्रणी कारकों का अध्ययन करने के लिए नियोजित किया गया है। एसएलई की क्लासिक माउस मॉडल ऐसे पी के रूप में NZW F1 मॉडल और उसके NZM डेरिवेटिव, एमएलआर / LPR तनाव, और BXSB / Yaa तनाव, और inducible सिस्टम निजामाबाद एक्स सहित आनुवंशिक रूप से संवेदनशील माउस उपभेदों शामिलristane और पुरानी भ्रष्टाचार बनाम मेजबान रोग (cGVHD) मॉडल 4। GVHD मॉडल में स्वप्रतिपिण्ड उत्पादन की प्रारंभिक रिपोर्ट एफ 1 स्थानान्तरण 5 में माता पिता के लिए विभिन्न माउस उपभेदों या हम्सटर उपभेदों इस्तेमाल किया – 8; एक प्रकार का वृक्ष की तरह इस रोग का अध्ययन करने के लिए इस्तेमाल किया और अधिक आम तरीकों वर्तमान में डीबीए / 2 माता पिता → (C57BL / 6 एक्स डी बी / 2) एफ 1, और यहाँ वर्णित bm12 हस्तांतरण मॉडल शामिल हैं। प्रत्येक मॉडल अपने आप ही निरंतर है, लेकिन वे आम तौर पर मानव रोग के नैदानिक ​​सुविधाओं के साथ संबंध स्थापित कि सुविधाओं की एक आम सेट का हिस्सा है। माउस मॉडल में सबसे अधिक बार सूचना दी मापदंडों, तिल्ली का बढ़ना lymphadenopathy, नेफ्रैटिस, एना उत्पादन में शामिल हैं, और सेलुलर स्तर पर, टी कूपिक सहायक कोशिकाओं (Tfh), कीटाणु केंद्र (जीसी) बी कोशिकाओं, और प्लाज्मा कोशिकाओं के विस्तार।

एच 2 – – AB1 bm12 / KhEgJ (bm12) चूहों, एक तनाव मैं inducible bm12 मॉडल आइए bm12 बी -6 (सी) से लिम्फोसाइट के दत्तक हस्तांतरण द्वारा हासिल की हैMHC वर्ग द्वितीय पर 3 एमिनो एसिड प्रतिस्थापन के लिए छोड़कर C57BL 6 / करने के लिए dentical, आइए में C57BL / 6 (बी -6) चूहों बी। प्राप्तकर्ता APCs द्वारा दाता सीडी 4 टी कोशिकाओं की Alloactivation लक्षण बारीकी एसएलई दिखने के साथ cGVHD की ओर जाता है। विशेष रूप से, इन दाता व्युत्पन्न Tfh के विस्तार, प्राप्तकर्ता व्युत्पन्न जीसी बी कोशिकाओं और प्लाज्मा कोशिकाओं के विस्तार, और विरोधी dsDNA, विरोधी ssDNA, विरोधी क्रोमेटिन, और विरोधी आरबीसी एंटीबॉडी 9 सहित अनस के उत्पादन में शामिल हैं। समय के साथ, प्राप्तकर्ता चूहों केशिकागुच्छीय, मध्य में आईजीजी जमा है, और गुर्दे 10 की नाड़ी क्षेत्रों के साथ जुड़े स्तवकवृक्कशोथ का विकास। हमने हाल ही में मानव रोग के लिए भी इसी तरह, मैं इस मॉडल 11 में IFN प्रकार के लिए एक महत्वपूर्ण भूमिका है, वहाँ भी कर दिखाया है। विशेष रूप से, मानव एसएलई के लिए परिभाषित मापदंड विरोधी dsDNA की उपस्थिति में एसएलई के साथ संगत नेफ्रैटिस के विकास के इस माउस मॉडल की प्रमुख विशेषताएं हैं, जो दोनों के 12 एंटीबॉडी शामिल हैं।

वहाँ से कर रहे हैंसहज अधिक मॉडल bm12 मॉडल की veral लाभ। अनायास एसएलई-तरह के संकेत हैं कि विकसित क्लासिक मॉडल पीटकर या अन्यथा आनुवंशिक रूप से संशोधित चूहों कठिन और समय लेने के लिए पार करने जो संकर माउस उपभेदों, नहीं -6 पृष्ठभूमि पर बी -6 पृष्ठभूमि, या बड़े आनुवंशिक लोकी पर जन्मजात माउस उपभेदों, या तो पर भरोसा करते हैं। Bm12 inducible मॉडल के साथ, आनुवंशिक रूप से संशोधित चूहों विशेष जीन की बीमारी के लिए महत्वपूर्ण हो सकता है, जिसमें सेलुलर डिब्बे के और अधिक तेजी से पहचान की अनुमति, दाता या प्राप्तकर्ता या तो के रूप में काम कर सकते हैं। इसके अलावा, bm12 मॉडल में रोग विकास सबसे सहज मॉडल के लिए कई महीनों की तुलना में, अनस की उपस्थिति तक केवल 2 सप्ताह की आवश्यकता होती है, बहुत तेजी से होता है। इसके अलावा, अलग अलग समय बिंदुओं पर रोग का विकास है कि सहज मॉडल के विपरीत, bm12 → बी -6 मॉडल में रोग की शुरुआत और प्रगति अत्यधिक सिंक्रनाइज़ है। इस ख कर सकते हैं कि उचित आकार साथियों की पीढ़ी के लिए अनुमति देता हैई रोग के विकास के किसी भी स्तर पर हस्तक्षेप या चिकित्सीय रणनीतियों के लिए इस्तेमाल किया।

क्या इस प्रकार बी -6 की पृष्ठभूमि पर C57BL / 6 चूहों में bm12 लिम्फोसाइटों के दत्तक हस्तांतरण, या आनुवंशिक वेरिएंट द्वारा एसएलई-तरह औतोइम्मुिनित की शुरुआत के लिए एक विस्तृत प्रोटोकॉल है। इसके अतिरिक्त, हम Tfh, जीसी बी कोशिकाओं की गणना के लिए एक प्रवाह cytometric धुंधला प्रोटोकॉल का वर्णन है, और प्लाज्मा कोशिकाओं सेल प्रकार मानव रोग के साथ जुड़े। महत्वपूर्ण बात है, इन प्रोटोकॉल भी एसएलई के सबसे माउस मॉडल में रोग विशेषताएँ और अन्य रोग मॉडल में Tfh, जीसी बी कोशिकाओं और प्लाज्मा कोशिकाओं की पहचान करने के लिए इस्तेमाल किया जा सकता है।

Protocol

पशु काम आकलन और प्रयोगशाला पशु केयर इंटरनेशनल के प्रत्यायन और हमारे संस्थागत पशु की देखभाल और उपयोग समिति के लिए एसोसिएशन (IACUC) द्वारा निर्धारित दिशा निर्देशों के अनुसार विशिष्ट रोगज़नक़ मुक्त शर्तों…

Representative Results

रोगग्रस्त चूहों द्रव्यमान और कोषमयता (चित्रा 2) के मामले में spleens 2-3 बार स्वस्थ चूहों के आकार का प्रदर्शन, के रूप में छोटा रूप में 14 दिनों में तिल्ली का बढ़ना विकसित करना। Splenocytes क्रमिक रूप स?…

Discussion

bm12 inducible मॉडल एसएलई के सेलुलर और आणविक प्रक्रियाओं का अध्ययन करने के लिए एक अपेक्षाकृत आसान और कारगर तरीका है। स्व प्रतिजनों के खिलाफ निर्देशित adoptively का तबादला सीडी 4 टी कोशिकाओं की जीर्ण सक्रियण यहाँ वर्?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work was supported in part by the Lupus Research Institute, NCI grant CA138617, NIDDK grant DK090978, Charlotte Schmidlapp Award (to E.M.J.), and the Albert J. Ryan Fellowship (to J.K.). We are grateful for the support and instrumentation provided by the Research Flow Cytometry Core in the Division of Rheumatology at Cincinnati Children’s Hospital Medical Center, supported in part by NIH AR-47363, NIH DK78392 and NIH DK90971.

Materials

B6.SJL-Ptprca Pepcb/BoyJ The Jackson Laboratory 001162 CD45.1+ BoyJ mouse strain
B6(C)-H2-Ab1bm12/KhEgJ The Jackson Laboratory 001162 Bm12 mouse strain
FastDigest PsuI Life Technologies FD1554 Restriction digest enzyme for genotyping
1X RBC Lysis Buffer eBioscience 00-4333-57
IMDM GE Healthcare SH30228.01
Plasma Separation Tube (PST) BD 365974 Blood collection tube with Dipotassium EDTA
Serum Separation Tube (SST) BD 365967 Blood collection tube with Clot activator / SST Gel
Ficoll GE Healthcare 17-1440-02  High density cell separation solution
Lympholyte-M Cedarlane CL5030 High density cell separation solution
GL-7-biotin eBioscience 13-5902-82 
Streptavidin-BUV395 BD 564176
CD138-BV421 BioLegend 142508
CD4-BV510 BioLegend 100559
TCRβ-BV605 BD 562840
CD45.1-BV711 BioLegend 110739
CD45.2-FITC BioLegend 109806
PD-1-PE BioLegend 135206
CD19-PerCP BioLegend 115532
Fas-PE-Cy7 BD 557653
CXCR5-APC BioLegend 145506
Fixable Viability Dye ef780 eBioscience 65-0865-18
CD4-BV421 BioLegend 100443
1.2 ml FACS tube inserts, racked USA Scientific 1412-1400
BD Falcon™ Round-Bottom Tubes BD 352017

References

  1. Helmick, C. G., Felson, D. T., et al. Part I. Arthritis Rheum. Estimates of the prevalence of arthritis and other rheumatic conditions in the United States. 58, 15-25 (2008).
  2. Somers, E. C., Marder, W., et al. Population-based incidence and prevalence of systemic lupus erythematosus: The Michigan lupus epidemiology and surveillance program. Arthritis and Rheumatol. 66, 369-378 (2014).
  3. Perry, D., Sang, A., Yin, Y., Zheng, Y. -. Y., Morel, L. Murine models of systemic lupus erythematosus. J Biomed Biotechnol. 2011, 271694 (2011).
  4. Lindholm, L., Rydberg, L., Strannegård, O. Development of host plasma cells during graft-versus-host reactions in mice. Eur J Immunol. 3 (8), 511-515 (1973).
  5. Fialkow, P. J., Gilchrist, C., Allison, A. C. Autoimmunity in chronic graft-versus-host disease. Clin Exp Immunol. 13, 479-486 (1973).
  6. Streilein, J. W., Stone, M. J., Duncan, W. R. Studies on the Specificity of Autoantibodies Produced in Systemic Graft-vs-Host Disease. J Immunol. 114 (1), 255-260 (1975).
  7. Gleichmann, E., Gleichmann, H. Diseases caused by reactions of T lymphocytes to in compatible structures of the major histocompatibility complex. I. Autoimmune hemolytic anemia. Eur J Immunol. 6 (12), 899 (1976).
  8. Morris, S., Cohen, P. L., Eisenberg, R. Experimental induction of systemic lupus erythematosus by recognition of foreign Ia. Clin Immunol Immunopathol. 57 (2), 263-273 (1990).
  9. Chen, F., Maldonado, M., Madaio, M., Eisenberg, R. The Role of Host (Endogenous) T Cells in Chronic Graft-Versus-Host Autoimmune Disease. J Immunol. 161 (11), 5880-5885 (1998).
  10. Klarquist, J., Hennies, C. M., Lehn, M. A., Reboulet, R. A., Feau, S., Janssen, E. M. STING-Mediated DNA Sensing Promotes Antitumor and Autoimmune Responses to Dying Cells. J Immunol. 193, 6124-6134 (2014).
  11. Petri, M., Orbai, A. -. M., et al. Derivation and validation of systemic lupus international collaborating clinics classification criteria for systemic lupus erythematosus. Arthritis Rheum. 64 (8), 2677-2686 (2012).
  12. Zangala, T. Isolation of genomic DNA from mouse tails. J Vis Exp. (6), e246 (2007).
  13. Lorenz, T. C. Polymerase Chain Reaction: Basic Protocol Plus Troubleshooting and Optimization Strategies. J Vis Exp. (63), e3998 (2012).
  14. . Product information: Thermo Scientific FastDigest PsuI Available from: https://tools.lifetechnologies.com/content/sfs/manuals/MAN0012567_FastDigest_PsuI_UG.pdf (2012)
  15. Matheu, M. P., Parker, I., Cahalan, M. D. Dissection and 2-photon imaging of peripheral lymph nodes in mice. J Vis Exp. (7), e265 (2007).
  16. Harrell, M. I., Iritani, B. M., Ruddell, A. Lymph node mapping in the mouse. J Immunol Methods. 332 (1-2), 170-174 (2008).
  17. Covelli, V. Chapter 3, Internal examination. Guide to the necroscopy of the mouse. , (2009).
  18. Quah, B. J. C., Parish, C. R. The use of carboxyfluorescein diacetate succinimidyl ester (CFSE) to monitor lymphocyte proliferation. J Vis Exp. (44), e2259 (2010).
  19. Matheu, M. P., Cahalan, M. D. Isolation of CD4+ T cells from mouse lymph nodes using Miltenyi MACS purification. J Vis Exp. (9), e53319 (2007).
  20. Machholz, E., Mulder, G., Ruiz, C., Corning, B. F., Pritchett-Corning, K. R. Manual Restraint and Common Compound Administration Routes in Mice and Rats. J Vis Exp. (67), e2771 (2012).
  21. Hoff, J. Methods of Blood Collection in the Mouse. Lab Animal. 29 (10), 47-53 (2000).
  22. Cohen, M., Varki, N. M., Jankowski, M. D., Gagneux, P. Using Unfixed, Frozen Tissues to Study Natural Mucin Distribution. J Vis Exp. (67), e3928 (2012).
  23. Cohen, P. L., Maldonado, M. A. Animal models for SLE. Curr Protoc Immunol.. Chapter 15, Unit 15.20 (2003).
  24. Seavey, M. M., Lu, L. D., Stump, K. L. Animal models of systemic lupus erythematosus (SLE) and ex vivo assay design for drug discovery. Curr Protoc Pharmacol. Chapter 5, Unit 5 (2011).
  25. McKenna, K. C., Vicetti Miguel, R. D., Beatty, K. M., Bilonick, R. A. A caveat for T cell transfer studies: generation of cytotoxic anti-Thy1.2 antibodies in Thy1.1 congenic mice given Thy1.2+ tumors or T cells. J Leukoc Biol. 89 (2), 291-300 (2011).
  26. Scott, D. M., Ehrmann, I. E., et al. Identification of a mouse male-specific transplantation antigen H-Y.. Nature. 376, 695-698 (1995).
  27. Joly, E., Hudrisier, D. What is trogocytosis and what is its purpose. Nat Immunol. 4 (9), 815 (2003).
  28. Brown, D. R., Calpe, S., et al. Cutting edge: an NK cell-independent role for Slamf4 in controlling humoral autoimmunity. J Immunol. 187 (1), 21-25 (2011).
  29. Morris, S. C., Cheek, R. L., Cohen, P. L., Eisenberg, R. A. Allotype-specific immunoregulation of autoantibody production by host B cells in chronic graft-versus host disease. J Immunol. 144 (3), 916-922 (1990).
  30. Choudhury, A., Cohen, P. L., Eisenberg, R. A. B cells require “nurturing” by CD4 T cells during development in order to respond in chronic graft-versus-host model of systemic lupus erythematosus. Clin Immunol. 136 (1), 105-115 (2010).
  31. Slifka, M. K., Antia, R., Whitmire, J. K., Ahmed, R. Humoral immunity due to long-lived plasma cells. Immunity. 8 (3), 363-372 (1998).
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Klarquist, J., Janssen, E. M. The bm12 Inducible Model of Systemic Lupus Erythematosus (SLE) in C57BL/6 Mice. J. Vis. Exp. (105), e53319, doi:10.3791/53319 (2015).

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