Summary

Utarbeidelse og Foto-akustisk analyse av Cellular Kjøretøy inneholder gull nanorods

Published: May 02, 2016
doi:

Summary

We show the preparation and address the feasibility of cellular vehicles containing gold nanorods for the photoacoustic imaging of cancer.

Abstract

Gull nanorods er attraktive for en rekke biomedisinske applikasjoner, for eksempel fototermiske ablasjon og foto-akustiske avbildning av kreft, takket være deres intense optisk absorbans i nær-infrarøde vinduet, lav cytotoksisitet og potensial til hjem i svulstene. Men fortsatt gjenstår sine leveranser til svulster et problem. En innovativ tilnærming består av utnyttelse av tropisme av tumorassosierte makrofager som kan lastes med gull nanorods in vitro. Her beskriver vi forberedelse og foto-akustiske inspeksjon av cellulære biler inneholder gull nanorods. PEGylerte gull nanostaver er modifisert med kvaternære ammoniumforbindelser, for å oppnå en kationisk profil. Ved kontakt med murine makrofager i vanlige petriskåler, er disse partiklene funnet å gjennomgå massiv opptak i endocytiske vesikler. Da disse cellene er innleiret i biopolymeric hydrogeler, som brukes til å verifisere at stabiliteten av foto-akustiske omdannelseav partiklene holdes i deres inkludering i cellulære kjøretøyer. Vi er sikre på at disse resultatene kan gi ny inspirasjon for utvikling av nye strategier for å levere Plasmonic partikler til svulster.

Introduction

I løpet av det siste tiåret, har ulike Plasmonic partikler som gullnanostaver, nanoshells og nanocages, fått stor oppmerksomhet for applikasjoner i biomedisinsk optikk 1, 2, 3, 4. I strid med standard gull nanospheres, disse nyere partikler resonere i nær infrarød (NIR) vindu som gir dypeste optisk penetrasjon gjennom kroppen og høyest optisk kontrast løpet endogene deler 1. Denne funksjonen har vekket interesse for innovative applikasjoner, for eksempel foto-akustiske (PA) bildebehandling og fototermiske ablasjon av kreft. Imidlertid flere problemer begrense den kliniske inntrengning av disse partiklene. For eksempel, deres optisk aktivering har en tendens til å indusere deres overoppvarming og for å modifisere deres funksjonelle former mot mer sfæriske profiler, som driver en photoinstability 5, 6, 7, 8 </sup>, 9. Et annet problem som dominerer den vitenskapelige debatten er deres systemisk levering i svulstene. Spesielt gull nanorods kombinere størrelser som er ideell for å gjennomsyre svulster som viser økt permeabilitet og oppbevaring og enkel konjugering med spesifikke prober av ondartede markører. Derfor er deres forberedelse for en direkte injeksjon i blodstrømmen oppfattes som en mulig ordning 10, 11, 12, 13. Imidlertid er denne rute problematisk, med de fleste av partiklene bli fanget opp av den mononukleære fagocytt-systemet 10, 11, 12. I tillegg er en annen bekymring den optiske og biokjemisk stabilitet av partiklene etter sirkulasjon gjennom legemet 14. Når partiklene mister kolloidal stabilitet og samlet, kan deres Plasmonic funksjoner og varmeoverførings dynamikk lider plasmonic koplingen 15, </sopp> 16, 17 og kryss overoppheting 18.

Mer nylig har begrepet å utnytte tropisme av tumorassosierte makrofager dukket opp som et smart alternativ 19, 20, 21. Disse cellene holder en medfødt evne til å oppdage og gjennomsyre svulster med høy spesifisitet. Derfor kan man perspektiv være å isolere disse cellene fra en pasient, legger du dem med gull nanorods in vitro og deretter injisere dem tilbake til pasienten, med den hensikt å bruke dem som cellulære biler som har ansvaret for leveransen. En annen fordel ville være å få bedre kontroll over den optiske og biokjemisk stabilitet av partiklene, fordi deres biologiske grensesnitt ville være konstruert in vitro. Likevel, forestillinger av disse cellulære biler som optiske kontrastmidler trenger en kritisk analyse.

I dette arbeidet, beskriver vi forberedelse og kritiske spørsmål om cellular kjøretøyer som inneholder gull nanorods for PA avbildning av kreft. PEGylerte gull nanostaver er modifisert med kvartære ammoniumforbindelser 22, for å oppnå en kationisk profil som er ventet å fremme deres interaksjoner med plasmamembraner 23, 24. Disse partiklene gjennomgå effektiv og uspesifikk opptak fra de fleste cellulære slag, forhåpentligvis uten å forstyrre mye med sine biologiske funksjoner. Murine makrofager er lastet med opp til så mange som 200, 000 kationiske gull nanorods per celle, som blir trange innenfor stramme endocytiske vesikler. Denne konfigurasjonen skulle oppstå bekymring, på grunn av trusselen om plasmonic kopling og tverr overoppheting inni disse blemmer. Derfor er makrofager innleiret i biopolymeric hydrogeler som etterligner biologisk vev, for å verifisere at det meste av stabiliteten PA omdannelse av partiklene holdes i overføringen fra vekstmediet til de endocytiske vesikler. effective målekriterier er utarbeidet for å måle stabiliteten av PA omdannelse under betingelser med umiddelbar interesse for PA-avbildning. En omforming terskel er satt helt på utbruddet av optisk ustabilitet etter et tog av 50 laserpulser med den typiske repetisjonsfrekvens på 10 Hz.

Vi er sikre på at disse resultatene kan gi momentum for utvikling av nye strategier for å levere Plasmonic partikler til svulster.

Protocol

Merk: Alle konsentrasjoner av gull nanorods er uttrykt i form av nominelle Au molaritetene. Til sammenligning med andre verker, oppmerksom på at en M Au tilsvarer omtrent 20 mikrometer gull nanorods, i vårt tilfelle. 1. Utarbeidelse av Cationic Gold nanorods Merk: Fremgangsmåten begynner med syntesen av cetrimonium-bromid (CTAB) -capped gullnanostaver ved autokatalytisk reduksjon av HAuCl 4 med askorbinsyre, i henhold til protokollen introdusert av Ni…

Representative Results

Her er muligheten for mobilnettet kjøretøy som inneholder gull nanorods for PA avbildning av kreft vises sammen med typiske utfall av protokollen. TEM-bilder i figur 1 viser det vanlige utseende av partiklene etter trinn 1, og deres cellulære kjøretøy etter trinn 2. Fremstillingen av partiklene og av cellene for TEM-avbildning er beskrevet andre steder 17. Kationiske gull nanorods gjennomgå en…

Discussion

Oppfatningen å målrette tumor-assosiert makrofager fremstår som en kraftig konsept for å bekjempe kreft 34, 35, 36. Her, i stedet for deres ødeleggelse, er disse cellene rekruttert som cellulære kjøretøy for å bringe gull nanorods inn i en svulst, ved utnyttelse av deres tropisme. Dette perspektivet krever en gjennomtenkt design av partiklene, deres integrering i cellene og deres karakterisering. Vi har funnet at fotostabiliteten av murine makrofager lastet…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble delvis støttet av Regione Toscana og EU innenfor rammen av ERANET + Prosjekter LUS BUBBLE og BI-TRE.

Materials

Hexadecyltrimethylammonium bromide Sigma-Aldrich H6269 To synthesize gold nanorods
Gold(III) chloride trihydrate Sigma-Aldrich 520918 To synthesize gold nanorods
Silver nitrate Sigma-Aldrich S6506 To synthesize gold nanorods
L-ascorbic acid Sigma-Aldrich A5960 To synthesize gold nanorods
Sodium borohydride Sigma-Aldrich To synthesize gold nanoseeds
MeO-PEG-SH Iris Biotech PEG1171 To PEGylate gold nanorods. Molecular weight about 5,000 Da
Acetic acid Sigma-Aldrich 320099 To PEGylate gold nanorods and solubilize chitosan
Sodium acetate Sigma-Aldrich S8750 To PEGylate gold nanorods
(11-Mercaptoundecyl)-N,N,N-trimethylammonium bromide Sigma-Aldrich 733305 To modify gold nanorods with quaternary ammonium compounds
Dimethyl sulfoxide Sigma-Aldrich 276855 To solubilize (11-mercaptoundecyl)-N,N,N-trimethylammonium bromide
  Polysorbate 20 Sigma-Aldrich P2287 To centrifuge PEGylated gold nanorods
PBS Lonza BE17-516F To suspend gold nanorods before incubation with cells and to treat pellets of cells
J774a.1 ATCC TIB-67 Monocyte/macrophage murine cell line
DMEM Lonza BE12-707F Cell culture medium
FBS Lonza DE14-801F To be added to cell culture medium
L-glutamine Lonza BE17-605E To be added to cell culture medium
Penicillin/streptomycin Lonza DE17-602E To be added to cell culture medium
Petri dish NEST 705001 Cell culture dish
Cell scraper EuroClone ES7018 To detach cells
Formaldehyde Fluka 47630 To fix cells
Chitosan, low molecular weight  Sigma-Aldrich 448869 75-85% deacetylated. Molecular weight about 120,000 Da
Sodium hydroxyde Sigma-Aldrich 306576 To insolubilize chitosan and generate the hydrogel
Polystyrene cell culture plates NEST 702011 Used as molds to fabricate chitosan hydrogels
Optical parametric oscillator pumped by the third harmonic of a Q-switched Nd:YAG laser Continuum, Santa Clara, USA  Surelite OPO plus Source of optical excitation for photoacoustic tests
Pyroelectric detector  Gentec, Quebec, Canada QE8SP To monitor optical fluence for photoacoustic tests
Pre amplified needle hydrophone Precision Acoustic, Dorset, UK Model with 1 mm sensor diameter and 1-20 MHz frequency range To measure photoacoustic signals

References

  1. Ratto, F., Matteini, P., Centi, S., Rossi, F., Pini, R. Gold nanorods as new nanochromophores for photothermal therapies. J. Biophotonics. (1-2), 4-41 (2011).
  2. Dreaden, E. C., Alkilany, A. M., Huang, X., Murphy, C. J., El-Sayed, M. A. The golden age: gold nanoparticles for biomedicine. Chem. Soc. Rev. 41, 2740-2779 (2012).
  3. Hahn, M. A., Singh, A. K., Sharma, P., Brown, S. C., Moudgil, B. M. Nanoparticles as Contrast Agents for in-Vivo Bioimaging: Current Status and Future Perspectives. Anal. Bioanal. Chem. 399 (1), 3-27 (2011).
  4. Dreaden, E. C., Austin, L. A., Mackey, M. A., El-Sayed, M. A. Size matters: gold nanoparticles in targeted cancer drug delivery. Ther. Deliv. 3 (4), 457-478 (2012).
  5. Manohar, S., Ungureanu, C., Van Leeuwen, T. G. Gold nanorods as molecular contrast agents in photoacoustic imaging: The promises and the caveats. Contrast Media Mol. Imaging. 6 (5), 389-400 (2011).
  6. Cavigli, L., et al. Size Affects the Stability of the Photoacoustic Conversion of Gold Nanorods. J. Phys. Chem. C. 118 (29), 16140-16146 (2014).
  7. Chen, L. -. C., et al. Enhanced photoacoustic stability of gold nanorods by silica matrix confinement. J. Biomed. Opt. 15 (1), 016010 (2010).
  8. Ratto, F., et al. CW laser-induced photothermal conversion and shape transformation of gold nanodogbones in hydrated chitosan films. J. Nanopart. Res. 13, 4337-4348 (2011).
  9. Mercatelli, R., et al. Quantitative readout of optically encoded gold nanorods using an ordinary dark-field microscope. Nanoscale. 5 (20), 9645-9650 (2013).
  10. Von Maltzahn, G., et al. Computationally guided photothermal tumor therapy using long-circulating gold nanorod antennas. Cancer Res. 69 (9), 3892-3900 (2009).
  11. Jokerst, J. V., Cole, A. J., Van De Sompel, D., Gambhir, S. S. Gold nanorods for ovarian cancer detection with photoacoustic imaging and resection guidance via Raman imaging in living mice. ACS Nano. 6 (11), 10366-10377 (2012).
  12. Huang, X., et al. A reexamination of active and passive tumor targeting by using rod-shaped gold nanocrystals and covalently conjugated peptide ligands. ACS Nano. 4 (10), 5887-5896 (2010).
  13. Alkilany, A. M., Thompson, L. B., Boulos, S. P., Sisco, P. N., Murphy, C. J. Gold nanorods: Their potential for photothermal therapeutics and drug delivery, tempered by the complexity of their biological interactions. Adv. Drug Deliv. Rev. 64, 190-199 (2012).
  14. Centi, S., et al. In vitro assessment of antibody-conjugated gold nanorods for systemic injections. J. Nanobiotechnology. 12, 55 (2014).
  15. Jain, P. K., Eustis, S., El-Sayed, M. A. Plasmon coupling in nanorod assemblies: Optical absorption, discrete dipole approximation simulation, and exciton-coupling model. J. Phys. Chem. B. 110 (37), 18243-18253 (2006).
  16. Funston, A. M., Novo, C., Davis, T. J., Mulvaney, P. Plasmon coupling of gold nanorods at short distances and in different geometries. Nano Lett. 9 (4), 1651-1658 (2009).
  17. Mazzoni, M., Ratto, F., Fortunato, C., Centi, S., Tatini, F., Pini, R. Partial Decoupling in Aggregates of Silanized Gold Nanorods. J. Phys. Chem. C. 118 (34), 20018-20025 (2014).
  18. Lapotko, D. O., Lukianova, E., Oraevsky, A. A. Selective laser nano-thermolysis of human leukemia cells with microbubbles generated around clusters of gold nanoparticles. Lasers Surg. Med. 38 (6), 631-642 (2006).
  19. Choi, M. R., et al. A cellular trojan horse for delivery of therapeutic nanoparticles into tumors. Nano Letters. 7 (12), 3759-3765 (2007).
  20. Dreaden, E. C., Mwakwari, S. C., La Austin, ., Kieffer, M. J., Oyelere, A. K., El-Sayed, M. A. Small molecule-gold nanorod conjugates selectively target and induce macrophage cytotoxicity towards breast cancer cells. Small. 8 (18), 2819-2822 (2012).
  21. Yang, T. D., et al. Real-time phase-contrast imaging of photothermal treatment of head and neck squamous cell carcinoma: an in vitro study of macrophages as a vector for the delivery of gold nanoshells. J. Biomed. Opt. 17 (12), 128003 (2012).
  22. Vigderman, L., Manna, P., Zubarev, E. R. Quantitative Replacement of Cetyl Trimethylammonium Bromide by Cationic Thiol Ligands on the Surface of Gold Nanorods and Their Extremely Large Uptake by Cancer Cells. Angew. Chem. Int. Ed. (English). 51 (3), 636-641 (2012).
  23. Richard, J. P., et al. Cell-penetrating peptides: A reevaluation of the mechanism of cellular uptake. J. Biol. Chem. 278 (1), 585-590 (2003).
  24. Delehanty, J. B., Boeneman, K., Bradburne, C. E., Robertson, K., Bongard, J. E., Medintz, I. L. Peptides for specific intracellular delivery and targeting of nanoparticles: implications for developing nanoparticle-mediated drug delivery. Ther. Deliv. 1, 411-433 (2010).
  25. Nikoobakht, B., El-Sayed, M. A. Preparation and growth mechanism of gold nanorods (NRs) using seed-mediated growth method. Chem. Mater. 15 (10), 1957-1962 (2003).
  26. Ratto, F., Matteini, P., Rossi, F., Pini, R. Size and shape control in the overgrowth of gold nanorods. J. Nanopart. Res. 12 (6), 2029-2036 (2009).
  27. Niidome, T., et al. PEG-modified gold nanorods with a stealth character for in vivo applications. J. Control. Release. 114 (3), 343-347 (2006).
  28. Tatini, F., et al. Size dependent biological profiles of PEGylated gold nanorods. J. Mater. Chem. B. 2, 6072-6080 (2014).
  29. Matteini, P., Ratto, F., Rossi, F., Centi, S., Dei, L., Pini, R. Chitosan films doped with gold nanorods as laser-activatable hybrid bioadhesives. Adv. Mater. 22 (38), 4313-4316 (2010).
  30. Matteini, P., Ratto, F., Rossi, F., de Angelis, M., Cavigli, L., Pini, R. Hybrid nanocomposite films for laser-activated tissue bonding. J. Biophotonics. 5 (11-12), 868-877 (2012).
  31. Matteini, P., Tatini, F., Cavigli, L., Ottaviano, S., Ghini, G., Pini, R. Graphene as a photothermal switch for controlled drug release. Nanoscale. 6, 7947-7953 (2014).
  32. Ratto, F., Witort, E., et al. Plasmonic Particles that Hit Hypoxic Cells. Adv. Funct. Mater. 25 (2), 316-323 (2015).
  33. Chithrani, D. B. Intracellular uptake, transport, and processing of gold nanostructures. Molec. Membrane Biol. 27 (7), 299-311 (2010).
  34. Mitchem, J. B., et al. Targeting tumor-infiltrating macrophages decreases tumor-initiating cells, relieves immunosuppression, and improves chemotherapeutic responses. Cancer Res. 73 (3), 1128-1141 (2013).
  35. Mantovani, A., Allavena, P. The interaction of anticancer therapies with tumor-associated macrophages. J. Exp. Med. 212 (4), 435-445 (2015).
  36. Panni, R. Z., Linehan, D. C., DeNardo, D. G. Targeting tumor-infiltrating macrophages to combat cancer. Immunotherapy. 5 (10), 1075-1087 (2013).
  37. Oh, E., et al. Cellular uptake and fate of PEGylated gold nanoparticles is dependent on both cell-penetration peptides and particle size. ACS Nano. 5 (8), 6434-6448 (2011).
  38. Yuan, H., Fales, A. M., Vo-Dinh, T. TAT peptide-functionalized gold nanostars: Enhanced intracellular delivery and efficient NIR photothermal therapy using ultralow irradiance. J. Am. Chem. Soc. 134 (28), 11358-11361 (2012).
  39. Ladest, S., Fales, A. M., Domard, A. Multi-membrane hydrogels. Nature. 452, 76-79 (2008).
  40. Matteini, P., et al. Photothermally activated hybrid films for quantitative confined release of chemical species. Angew. Chem. Int. Ed. (English). 52, 5956-5960 (2013).
  41. Khor, E., Lim, L. Y. Implantable applications of chitin and chitosan. Biomaterials. 24 (13), 2339-2349 (2003).
  42. Kennedy, L. C., et al. T cells enhance gold nanoparticle delivery to tumors in vivo. Nanoscale Res. Lett. 6 (1), 283 (2011).
  43. Pissuwan, D., Valenzuela, S. M., Killingsworth, M. C., Xu, X., Cortie, M. B. Targeted destruction of murine macrophage cells with bioconjugated gold nanorods. J. Nanopart. Res. 9 (6), 1109-1124 (2007).
  44. Jokerst, J. V., Thangaraj, M., Kempen, P. J., Sinclair, R., Gambhir, S. S. Photoacoustic imaging of mesenchymal stem cells in living mice via silica-coated gold nanorods. ACS Nano. 6 (7), 5920-5930 (2012).
  45. Ding, H., et al. Gold nanorods coated with multilayer polyelectrolyte as contrast agents for multimodal imaging. J. Phys. Chem. C. 111 (34), 12552-12557 (2007).
  46. Esposito, G., et al. et al. In vivo laser assisted microvascular repair and end-to-end anastomosis by means of indocyanine green-infused chitosan patches: A pilot study. Lasers Surg. Med. 45 (5), 318-325 (2013).
check_url/kr/53328?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Cavigli, L., Tatini, F., Borri, C., Ratto, F., Centi, S., Cini, A., Lelli, B., Matteini, P., Pini, R. Preparation and Photoacoustic Analysis of Cellular Vehicles Containing Gold Nanorods. J. Vis. Exp. (111), e53328, doi:10.3791/53328 (2016).

View Video