Summary

Upprättande och Photoacoustic Analys av Cellular fordon som innehåller guld nanostavar

Published: May 02, 2016
doi:

Summary

We show the preparation and address the feasibility of cellular vehicles containing gold nanorods for the photoacoustic imaging of cancer.

Abstract

Guld nanostavar är attraktiva för en rad biomedicinska tillämpningar, såsom fototermiska ablation och fotoakustiska avbildning av cancer, tack vare deras intensiva optisk absorbans i det nära infraröda fönster, låg cytotoxicitet och potential till hem till tumörer. Men deras leverans till tumörer fortfarande ett problem. Ett innovativt tillvägagångssätt består av utnyttjande av tropism av tumörassocierade makrofager som kan laddas med guldnanostavar in vitro. Här beskriver vi framställningen och fotoakustiska inspektion av cellulära fordon innehållande guldnanostavar. PEGylerade guldnanostavar är modifierade med kvartära ammoniumföreningar, i syfte att uppnå en katjonisk profil. Vid kontakt med murina makrofager i vanliga petriskålar är dessa partiklar befunnits genomgå massiv upptag i endocytiska vesiklar. Då dessa celler är inbäddade i biopolymera hydrogeler, som används för att kontrollera att stabiliteten av fotoakustiska omvandlingenav partiklarna kvarhålls i deras införlivande i cellulära fordon. Vi är övertygade om att dessa resultat kan ge ny inspiration för utveckling av nya strategier för att leverera plasmoniska partiklar till tumörer.

Introduction

Under det senaste årtiondet har olika plasmoniska partiklar såsom guld nanostavar, nanoshells och nanocages, fått stor uppmärksamhet för tillämpningar inom biomedicinsk optik 1, 2, 3, 4. I strid med standardguldnanosfärer, dessa nyare partiklar resonans i det nära infraröda (NIR) fönster som ger djupaste optiska penetrering genom kroppen och högsta optiska kontrast över endogena komponenter 1. Denna funktion har väckt intresse för innovativa tillämpningar, såsom fotoakustisk (PA) avbildning och fototermiska ablation av cancer. Men flera frågor hålla den kliniska penetrationen av dessa partiklar. Till exempel, tenderar deras optiska aktivering för att inducera deras överhettning och att ändra sina funktionella former till mer sfäriska profiler, som driver en photoinstability 5, 6, 7, 8 </sup>, 9. En annan fråga som dominerar den vetenskapliga debatten är deras systemleverans till tumörer. Framför allt guld nanostavar kombinera storlekar som är idealiska för att genomsyra tumörer som visar ökad permeabilitet och retention och enkel konjugering med specifika prober av maligna markörer. Därför är deras förberedelse för en direkt injektion i blodströmmen uppfattas som ett genomförbart system 10, 11, 12, 13. Men denna väg är fortfarande problematiskt med de flesta av partiklarna blir fångas upp av det mononukleära fagocyt-systemet 10, 11, 12. Dessutom är ett annat bekymmer den optiska och biokemisk stabilitet av partiklarna efter cirkulation genom kroppen 14. När partiklarna förlorar sin kolloidal stabilitet och aggregat, kan deras plasmoniska funktioner och värmeöverföringsdynamik lider av plasmoniska koppling 15, </supp> 16, 17 och tvär överhettning 18.

På senare tid har begreppet att utnyttja tropism av tumörassocierade makrofager dykt upp som ett smart alternativ 19, 20, 21. Dessa celler hålla en medfödd förmåga att upptäcka och genomsyra tumörer med hög specificitet. Därför kan ett perspektiv vara att isolera dessa celler från en patient, ladda dem med guldnanostavar in vitro och sedan injicera dem tillbaka in i patienten, med avsikt att använda dem som cellulära fordon som ansvarar för leveransen. En annan fördel skulle vara att få mer kontroll över de optiska och biokemiska stabiliteten av partiklarna, eftersom deras biologiska gränssnitt skulle byggas in vitro. Ändå prestanda dessa cellulära fordon som optiska kontrastmedel behöver en kritisk analys.

I detta arbete, beskriver vi framställningen och kritiska frågor om cellular fordon innehållande guld nanostavar för PA avbildning av cancer. PEGylerade guld nanostavar är modifierade med kvartära ammoniumföreningar 22, i syfte att uppnå en katjonisk profil som förväntas främja deras interaktioner med plasmamembran 23, 24. Dessa partiklar genomgår effektiv och ospecifik upptagning från de flesta cellulära slag, förhoppningsvis utan att störa mycket med sina biologiska funktioner. Murina makrofager är laddade med upp till så många som 200, 000 katjoniska guld nanostavar per cell, som blir begränsade inom snäva endocytiska vesiklar. Denna konfiguration skulle uppstå oro, på grund av hotet om plasmoniska koppling och tvär överhettning i dessa vesiklar. Därför makrofagerna inbäddade i biopolymera hydrogeler som efterliknar biologiska vävnader, för att kontrollera att de flesta av stabiliteten hos PA omvandling av partiklarna bibehålls i överföringen från tillväxtmediet till endocytiska vesiklar. effectivkriterier e mätning utarbetas för att mäta stabiliteten i PA konvertering under förhållanden av omedelbart intresse för PA avbildning. En omformning tröskel sätts på mycket starten av optisk instabilitet efter ett tåg av 50 laserpulser med den typiska repetitionsfrekvens på 10 Hz.

Vi är övertygade om att dessa resultat kan ge impulser till utveckling av nya strategier för att leverera plasmoniska partiklar till tumörer.

Protocol

Notera: Alla koncentrationer av guldnanostavar är uttryckta i termer av nominella Au molariteter. För jämförelse med andra verk, notera att en M Au motsvarar ungefär 20 pm guldnanostavar, i vårt fall. 1. Framställning av katjonisk Gold nanostavar Obs: Metoden börjar med syntesen av cetrimonium bromid (CTAB) -capped guldnanostavar från autokatalytisk reduktion av HAuCl 4 med askorbinsyra, enligt protokollet som införts genom et al Nikoo…

Representative Results

Här, är det är möjligt att cellulära fordon som innehåller guldnanostavar för PA avbildning av cancer som visas tillsammans med typiska resultat av protokollet. TEM bilder i Figur 1 visar den vanliga utseendet av partiklarna efter steg 1 och deras cellulära fordon efter steg 2. Beredningen av partiklarna och cellerna för TEM avbildning beskrivs på annat håll 17. Katjoniska guld nanostavar…

Discussion

Begreppet att rikta tumörassocierade makrofager framstår som ett starkt koncept för kampen mot cancer 34, 35, 36. Här, i stället för deras förstörelse, är dessa celler rekryteras som cellulära fordon för att få guldnanostavar i en tumör, genom utnyttjandet av deras tropism. Detta perspektiv kräver en genomtänkt design av partiklarna, deras integration i cellerna och deras karakterisering. Vi har funnit att fotostabilitet av murina makrofager laddade m…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta arbete har delvis stöd av Regione Toscana och Europeiska gemenskapen inom ramen för Eranet + Projekt LUS bubbla och BI-TRE.

Materials

Hexadecyltrimethylammonium bromide Sigma-Aldrich H6269 To synthesize gold nanorods
Gold(III) chloride trihydrate Sigma-Aldrich 520918 To synthesize gold nanorods
Silver nitrate Sigma-Aldrich S6506 To synthesize gold nanorods
L-ascorbic acid Sigma-Aldrich A5960 To synthesize gold nanorods
Sodium borohydride Sigma-Aldrich To synthesize gold nanoseeds
MeO-PEG-SH Iris Biotech PEG1171 To PEGylate gold nanorods. Molecular weight about 5,000 Da
Acetic acid Sigma-Aldrich 320099 To PEGylate gold nanorods and solubilize chitosan
Sodium acetate Sigma-Aldrich S8750 To PEGylate gold nanorods
(11-Mercaptoundecyl)-N,N,N-trimethylammonium bromide Sigma-Aldrich 733305 To modify gold nanorods with quaternary ammonium compounds
Dimethyl sulfoxide Sigma-Aldrich 276855 To solubilize (11-mercaptoundecyl)-N,N,N-trimethylammonium bromide
  Polysorbate 20 Sigma-Aldrich P2287 To centrifuge PEGylated gold nanorods
PBS Lonza BE17-516F To suspend gold nanorods before incubation with cells and to treat pellets of cells
J774a.1 ATCC TIB-67 Monocyte/macrophage murine cell line
DMEM Lonza BE12-707F Cell culture medium
FBS Lonza DE14-801F To be added to cell culture medium
L-glutamine Lonza BE17-605E To be added to cell culture medium
Penicillin/streptomycin Lonza DE17-602E To be added to cell culture medium
Petri dish NEST 705001 Cell culture dish
Cell scraper EuroClone ES7018 To detach cells
Formaldehyde Fluka 47630 To fix cells
Chitosan, low molecular weight  Sigma-Aldrich 448869 75-85% deacetylated. Molecular weight about 120,000 Da
Sodium hydroxyde Sigma-Aldrich 306576 To insolubilize chitosan and generate the hydrogel
Polystyrene cell culture plates NEST 702011 Used as molds to fabricate chitosan hydrogels
Optical parametric oscillator pumped by the third harmonic of a Q-switched Nd:YAG laser Continuum, Santa Clara, USA  Surelite OPO plus Source of optical excitation for photoacoustic tests
Pyroelectric detector  Gentec, Quebec, Canada QE8SP To monitor optical fluence for photoacoustic tests
Pre amplified needle hydrophone Precision Acoustic, Dorset, UK Model with 1 mm sensor diameter and 1-20 MHz frequency range To measure photoacoustic signals

References

  1. Ratto, F., Matteini, P., Centi, S., Rossi, F., Pini, R. Gold nanorods as new nanochromophores for photothermal therapies. J. Biophotonics. (1-2), 4-41 (2011).
  2. Dreaden, E. C., Alkilany, A. M., Huang, X., Murphy, C. J., El-Sayed, M. A. The golden age: gold nanoparticles for biomedicine. Chem. Soc. Rev. 41, 2740-2779 (2012).
  3. Hahn, M. A., Singh, A. K., Sharma, P., Brown, S. C., Moudgil, B. M. Nanoparticles as Contrast Agents for in-Vivo Bioimaging: Current Status and Future Perspectives. Anal. Bioanal. Chem. 399 (1), 3-27 (2011).
  4. Dreaden, E. C., Austin, L. A., Mackey, M. A., El-Sayed, M. A. Size matters: gold nanoparticles in targeted cancer drug delivery. Ther. Deliv. 3 (4), 457-478 (2012).
  5. Manohar, S., Ungureanu, C., Van Leeuwen, T. G. Gold nanorods as molecular contrast agents in photoacoustic imaging: The promises and the caveats. Contrast Media Mol. Imaging. 6 (5), 389-400 (2011).
  6. Cavigli, L., et al. Size Affects the Stability of the Photoacoustic Conversion of Gold Nanorods. J. Phys. Chem. C. 118 (29), 16140-16146 (2014).
  7. Chen, L. -. C., et al. Enhanced photoacoustic stability of gold nanorods by silica matrix confinement. J. Biomed. Opt. 15 (1), 016010 (2010).
  8. Ratto, F., et al. CW laser-induced photothermal conversion and shape transformation of gold nanodogbones in hydrated chitosan films. J. Nanopart. Res. 13, 4337-4348 (2011).
  9. Mercatelli, R., et al. Quantitative readout of optically encoded gold nanorods using an ordinary dark-field microscope. Nanoscale. 5 (20), 9645-9650 (2013).
  10. Von Maltzahn, G., et al. Computationally guided photothermal tumor therapy using long-circulating gold nanorod antennas. Cancer Res. 69 (9), 3892-3900 (2009).
  11. Jokerst, J. V., Cole, A. J., Van De Sompel, D., Gambhir, S. S. Gold nanorods for ovarian cancer detection with photoacoustic imaging and resection guidance via Raman imaging in living mice. ACS Nano. 6 (11), 10366-10377 (2012).
  12. Huang, X., et al. A reexamination of active and passive tumor targeting by using rod-shaped gold nanocrystals and covalently conjugated peptide ligands. ACS Nano. 4 (10), 5887-5896 (2010).
  13. Alkilany, A. M., Thompson, L. B., Boulos, S. P., Sisco, P. N., Murphy, C. J. Gold nanorods: Their potential for photothermal therapeutics and drug delivery, tempered by the complexity of their biological interactions. Adv. Drug Deliv. Rev. 64, 190-199 (2012).
  14. Centi, S., et al. In vitro assessment of antibody-conjugated gold nanorods for systemic injections. J. Nanobiotechnology. 12, 55 (2014).
  15. Jain, P. K., Eustis, S., El-Sayed, M. A. Plasmon coupling in nanorod assemblies: Optical absorption, discrete dipole approximation simulation, and exciton-coupling model. J. Phys. Chem. B. 110 (37), 18243-18253 (2006).
  16. Funston, A. M., Novo, C., Davis, T. J., Mulvaney, P. Plasmon coupling of gold nanorods at short distances and in different geometries. Nano Lett. 9 (4), 1651-1658 (2009).
  17. Mazzoni, M., Ratto, F., Fortunato, C., Centi, S., Tatini, F., Pini, R. Partial Decoupling in Aggregates of Silanized Gold Nanorods. J. Phys. Chem. C. 118 (34), 20018-20025 (2014).
  18. Lapotko, D. O., Lukianova, E., Oraevsky, A. A. Selective laser nano-thermolysis of human leukemia cells with microbubbles generated around clusters of gold nanoparticles. Lasers Surg. Med. 38 (6), 631-642 (2006).
  19. Choi, M. R., et al. A cellular trojan horse for delivery of therapeutic nanoparticles into tumors. Nano Letters. 7 (12), 3759-3765 (2007).
  20. Dreaden, E. C., Mwakwari, S. C., La Austin, ., Kieffer, M. J., Oyelere, A. K., El-Sayed, M. A. Small molecule-gold nanorod conjugates selectively target and induce macrophage cytotoxicity towards breast cancer cells. Small. 8 (18), 2819-2822 (2012).
  21. Yang, T. D., et al. Real-time phase-contrast imaging of photothermal treatment of head and neck squamous cell carcinoma: an in vitro study of macrophages as a vector for the delivery of gold nanoshells. J. Biomed. Opt. 17 (12), 128003 (2012).
  22. Vigderman, L., Manna, P., Zubarev, E. R. Quantitative Replacement of Cetyl Trimethylammonium Bromide by Cationic Thiol Ligands on the Surface of Gold Nanorods and Their Extremely Large Uptake by Cancer Cells. Angew. Chem. Int. Ed. (English). 51 (3), 636-641 (2012).
  23. Richard, J. P., et al. Cell-penetrating peptides: A reevaluation of the mechanism of cellular uptake. J. Biol. Chem. 278 (1), 585-590 (2003).
  24. Delehanty, J. B., Boeneman, K., Bradburne, C. E., Robertson, K., Bongard, J. E., Medintz, I. L. Peptides for specific intracellular delivery and targeting of nanoparticles: implications for developing nanoparticle-mediated drug delivery. Ther. Deliv. 1, 411-433 (2010).
  25. Nikoobakht, B., El-Sayed, M. A. Preparation and growth mechanism of gold nanorods (NRs) using seed-mediated growth method. Chem. Mater. 15 (10), 1957-1962 (2003).
  26. Ratto, F., Matteini, P., Rossi, F., Pini, R. Size and shape control in the overgrowth of gold nanorods. J. Nanopart. Res. 12 (6), 2029-2036 (2009).
  27. Niidome, T., et al. PEG-modified gold nanorods with a stealth character for in vivo applications. J. Control. Release. 114 (3), 343-347 (2006).
  28. Tatini, F., et al. Size dependent biological profiles of PEGylated gold nanorods. J. Mater. Chem. B. 2, 6072-6080 (2014).
  29. Matteini, P., Ratto, F., Rossi, F., Centi, S., Dei, L., Pini, R. Chitosan films doped with gold nanorods as laser-activatable hybrid bioadhesives. Adv. Mater. 22 (38), 4313-4316 (2010).
  30. Matteini, P., Ratto, F., Rossi, F., de Angelis, M., Cavigli, L., Pini, R. Hybrid nanocomposite films for laser-activated tissue bonding. J. Biophotonics. 5 (11-12), 868-877 (2012).
  31. Matteini, P., Tatini, F., Cavigli, L., Ottaviano, S., Ghini, G., Pini, R. Graphene as a photothermal switch for controlled drug release. Nanoscale. 6, 7947-7953 (2014).
  32. Ratto, F., Witort, E., et al. Plasmonic Particles that Hit Hypoxic Cells. Adv. Funct. Mater. 25 (2), 316-323 (2015).
  33. Chithrani, D. B. Intracellular uptake, transport, and processing of gold nanostructures. Molec. Membrane Biol. 27 (7), 299-311 (2010).
  34. Mitchem, J. B., et al. Targeting tumor-infiltrating macrophages decreases tumor-initiating cells, relieves immunosuppression, and improves chemotherapeutic responses. Cancer Res. 73 (3), 1128-1141 (2013).
  35. Mantovani, A., Allavena, P. The interaction of anticancer therapies with tumor-associated macrophages. J. Exp. Med. 212 (4), 435-445 (2015).
  36. Panni, R. Z., Linehan, D. C., DeNardo, D. G. Targeting tumor-infiltrating macrophages to combat cancer. Immunotherapy. 5 (10), 1075-1087 (2013).
  37. Oh, E., et al. Cellular uptake and fate of PEGylated gold nanoparticles is dependent on both cell-penetration peptides and particle size. ACS Nano. 5 (8), 6434-6448 (2011).
  38. Yuan, H., Fales, A. M., Vo-Dinh, T. TAT peptide-functionalized gold nanostars: Enhanced intracellular delivery and efficient NIR photothermal therapy using ultralow irradiance. J. Am. Chem. Soc. 134 (28), 11358-11361 (2012).
  39. Ladest, S., Fales, A. M., Domard, A. Multi-membrane hydrogels. Nature. 452, 76-79 (2008).
  40. Matteini, P., et al. Photothermally activated hybrid films for quantitative confined release of chemical species. Angew. Chem. Int. Ed. (English). 52, 5956-5960 (2013).
  41. Khor, E., Lim, L. Y. Implantable applications of chitin and chitosan. Biomaterials. 24 (13), 2339-2349 (2003).
  42. Kennedy, L. C., et al. T cells enhance gold nanoparticle delivery to tumors in vivo. Nanoscale Res. Lett. 6 (1), 283 (2011).
  43. Pissuwan, D., Valenzuela, S. M., Killingsworth, M. C., Xu, X., Cortie, M. B. Targeted destruction of murine macrophage cells with bioconjugated gold nanorods. J. Nanopart. Res. 9 (6), 1109-1124 (2007).
  44. Jokerst, J. V., Thangaraj, M., Kempen, P. J., Sinclair, R., Gambhir, S. S. Photoacoustic imaging of mesenchymal stem cells in living mice via silica-coated gold nanorods. ACS Nano. 6 (7), 5920-5930 (2012).
  45. Ding, H., et al. Gold nanorods coated with multilayer polyelectrolyte as contrast agents for multimodal imaging. J. Phys. Chem. C. 111 (34), 12552-12557 (2007).
  46. Esposito, G., et al. et al. In vivo laser assisted microvascular repair and end-to-end anastomosis by means of indocyanine green-infused chitosan patches: A pilot study. Lasers Surg. Med. 45 (5), 318-325 (2013).
check_url/kr/53328?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Cavigli, L., Tatini, F., Borri, C., Ratto, F., Centi, S., Cini, A., Lelli, B., Matteini, P., Pini, R. Preparation and Photoacoustic Analysis of Cellular Vehicles Containing Gold Nanorods. J. Vis. Exp. (111), e53328, doi:10.3791/53328 (2016).

View Video