Summary

Quantificação de Vascular Cerebral Arquitetura usando dois fótons Microscopia em um modelo de mouse Neuroinflammation induzida por HIV

Published: January 12, 2016
doi:

Summary

This paper describes a method by which the vascular architecture in the brain can be quantified using in vivo and ex vivo two-photon microscopy.

Abstract

Human Immunodeficiency Virus 1 (HIV-1) infection frequently results in HIV-1 Associated Neurocognitive Disorders (HAND), and is characterized by a chronic neuroinflammatory state within the central nervous system (CNS), thought to be driven principally by virally-mediated activation of microglia and brain resident macrophages. HIV-1 infection is also accompanied by changes in cerebrovascular blood flow (CBF), raising the possibility that HIV-associated chronic neuroinflammation may lead to changes in CBF and/or in cerebral vascular architecture. To address this question, we have used a mouse model for HIV-induced neuroinflammation, and we have tested whether long-term exposure to this inflammatory environment may damage brain vasculature and result in rarefaction of capillary networks. In this paper we describe a method to quantify changes in cortical capillary density in a mouse model of neuroinflammatory disease (HIV-1 Tat transgenic mice). This generalizable approach employs in vivo two-photon imaging of cortical capillaries through a thin-skull cortical window, as well as ex vivo two-photon imaging of cortical capillaries in mouse brain sections. These procedures produce images and z-stack files of capillary networks, respectively, which can be then subjected to quantitative analysis in order to assess changes in cerebral vascular architecture.

Introduction

Vírus da Imunodeficiência Humana tipo 1 (VIH-1) invade o cérebro durante a fase aguda da infecção pelo vírus, e produtivamente infecta ambas as microglia e macrófagos residentes cérebro, que conduz à sua activação – e a libertação de ambos os mediadores inflamatórios derivados do hospedeiro e solúvel HIV-1 virotoxins como Tat e gp120 (revisto em 1,2). Como consequência, um estado neuroinflamatória crônica torna-se estabelecido no CNS, que é pensado para contribuir para a patogênese do HIV-1 Distúrbios Associated neurocognitivos (a mão) 3-5.

Superexpressão crónica do HIV-1 Tat ou interleucina (IL) -17 no SNC de ratinhos foi mostrado para resultar em 6,7 rarefacção microvascular. Isto levanta a possibilidade de que neuroinflama�o crónica pode contribuir para a patogénese da mão através de efeitos sobre a vasculatura cerebral. A fim de analisar melhor esta questão, temos desenvolvido métodos para quantificar struc vasculares cerebraisturas.

Este artigo descreve um método para a quantificação do número de nodos capilares, segmentos capilares, comprimento do segmento, o comprimento total do segmento dizer, o diâmetro médio do capilar, e o volume total do capilar utilizando imagiologia in vivo de redes capilares através de uma janela cortical crânio fina (modificado a partir do descrito anteriormente protocolos de 8,9), assim como ex vivo de imagens de secções do cérebro, utilizando microscopia de dois fotões. Esta abordagem combinada fornece para uma quantificação global de parâmetros vasculares cerebrais, desde fina-crânio janela cortical in vivo permite a preservação do meio ambiente cerebral, enquanto ex vivo de imagens de redes capilares em fatias de cérebro permite a reconstrução completa, tridimensional – redes capilares que pode, então, ser quantificada utilizando software disponível comercialmente.

Protocol

A Universidade do Comitê Universidade de Rochester em Recursos Animais aprovado todos os procedimentos realizados neste trabalho. Preparação 1. Pré-cirúrgica (e ratos) Prepare a área cirúrgica com todos os equipamentos necessários. Esterilizar todos os instrumentos utilizados durante o procedimento de antemão usando 70% de etanol. Opcionalmente, use um esterilizador de bolas de gude ou autoclave para esterilizar os instrumentos. Posicione o mouse em uma câmara …

Representative Results

A janela cortical crânio-fino permite in vivo de dois fotões imagiologia de capilares corticais (Figura 1). Uma área adequada para a imagem mostra numerosos capilares, distintos (Figura 1A). No mesmo campo de visão, não há nenhuma parede arterial autofluorescência celular, e podem existir outros sinais fluorescentes, tais como o colagénio, a fluorescência induzida por geração segunda harmónica 11 (Figura 1B).</stro…

Discussion

O método aqui descrito pode ser aplicado para analisar as estruturas microvasculares cerebrais em uma ampla gama de modelos / configurações experimentais. Para o sucesso deste método, três passos críticos deve ser dominado. Em primeiro lugar, a janela crânio-fina não deve danificar o crânio ou cérebro subjacente. É fácil de perfurar o crânio durante o desbaste, ou causar perda vascular induzida pelo calor. Isto pode interferir com a formação de imagens conforme o corante fluorescente vai infiltrar-se no p…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

We thank Maria Jepson, Dr. Paivi Jordan, and Dr. Linda Callahan at the University of Rochester Multiphoton Core for technical advice throughout the completion of this protocol. We also thank Dr. Changyong Feng for expert statistical advice, and Dr. Maiken Nedergaard at the University of Rochester Medical Center for the headplate design used in this paper. This work was supported in part by grants T32GM007356 and R01DA026325 from the National Institutes of Health (NIH); and by the University of Rochester Center for AIDS Research grant P30AI078498 (NIH).

Materials

Leica Microscope Leica Inc. MZ8
High Intensity Illuminator Dolan-Jenner 180
Heating Pad Stryker  TP3E
T/PUMP Gaymar Industries, Inc. TP-500
TEC-4 Isoflurane Vaporizer Datex Ohmeda 447
Artificial Tear Gel Butler AHS 7312
Povidone-Iodine solution  Aplicare 52380-1855-9
Extra Fine Bonn Scissors Fine Science Tools 14084-08
Dumot #5 Forceps Fine Science Tools 11295-10
Dumont #5/45 Forceps Fine Science Tools 11251-35
Ferric Chloride Solution Ricca Chemical Company 3120-16
Loctite 454 Prism Instant Adhesive Gel Henkel 45404
Dental Cement Stoelting 51459
Microtoruqe II Handpiece Kit Pearson Dental R14-0002
005 Burr for Micro Drill Fine Science Tools 19007-05
Norland Blade (Dental Microblade) Salvin Dental 6900
Urethane Sigma-Aldrich U2500 Group 2B Carcinogen
Braided Suture Ethicon 735G
Vannas Spring Scissors Fine Science Tools 15000-03
 Arterial Catheter SAI Infusion Technologies MAC-01 The end of the catheter was manually stretched out in order to decrease its diameter. 
Blood Pressure Moniter World Precision Intruments SYS-BP1
Blood Pressure Transducer and Cable World Precision Intruments BLPR2
RAPIDLab Blood Gas Analyzer  Siemens  248
40 μl Capillary Tube VWR 15401-413
Texas Red-dextran (70,000 MW, 10 mg/kg dissolved in saline) Invitrogen D-1830
Adult Mouse Brain Slicer Matrix Zivic Instruments BSMAS001-1
Olympus Fluoview 1000 AOM-MPM Multiphoton Microscope Olypmus FV-1000 MPE
MaiTai HP DeepSee Ti:Sa laser Spectra-Physics
ImageJ Software National Institutes of Health (NIH) Available at http://rsb.info.nih.gov/ij/download.html
Amira Software Visage Imaging 

References

  1. Kraft-Terry, S. D., Buch, S. J., Fox, H. S., Gendelman, H. E. A coat of many colors: neuroimmune crosstalk in human immunodeficiency virus infection. Neuron. 64 (1), 133-145 (2009).
  2. Ghafouri, M., Amini, S., Khalili, K., Sawaya, B. E. HIV-1 associated dementia: symptoms and causes. Retrovirology. 3, 28 (2006).
  3. Antinori, A., et al. Updated research nosology for HIV-associated neurocognitive disorders. Neurology. 69 (18), 1789-1799 (2007).
  4. Clifford, D. B., Ances, B. M. HIV-associated neurocognitive disorder. The Lancet. Infectious diseases. 13 (11), 976-986 (2013).
  5. Lindl, K. A., Marks, D. R., Kolson, D. L., Jordan-Sciutto, K. L. HIV-associated neurocognitive disorder: pathogenesis and therapeutic opportunities. Journal of neuroimmune pharmacology : the official journal of the Society on NeuroImmune Pharmacology. 5 (3), 294-309 (2010).
  6. Zimmermann, J., et al. CNS-targeted production of IL-17A induces glial activation, microvascular pathology and enhances the neuroinflammatory response to systemic endotoxemia. PloS one. 8 (2), e57307 (2013).
  7. Silva, J. N., et al. Chronic central nervous system expression of HIV-1 Tat leads to accelerated rarefaction of neocortical capillaries and loss of red blood cell velocity heterogeneity. Microcirculation. 21 (7), 664-676 (2014).
  8. Marker, D. F., Tremblay, M. E., Lu, S. M., Majewska, A. K., Gelbard, H. A. A thin-skull window technique for chronic two-photon in vivo imaging of murine microglia in models of neuroinflammation. Journal of visualized experiments : JoVE. (43), (2010).
  9. Kleinfeld, D., Mitra, P. P., Helmchen, F., Denk, W. Fluctuations and stimulus-induced changes in blood flow observed in individual capillaries in layers 2 through 4 of rat neocortex. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 95 (26), 15741-15746 (1998).
  10. Bruce-Keller, A. J., et al. Morphine causes rapid increases in glial activation and neuronal injury in the striatum of inducible HIV-1 Tat transgenic mice. Glia. 56 (13), 1414-1427 (2008).
  11. Zoumi, A., Yeh, A., Tromberg, B. J. Imaging cells and extracellular matrix in vivo by using second-harmonic generation and two-photon excited fluorescence. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 99 (17), 11014-11019 (2002).
  12. Silva, J., et al. Transient hypercapnia reveals an underlying cerebrovascular pathology in a murine model for HIV-1 associated neuroinflammation: role of NO-cGMP signaling and normalization by inhibition of cyclic nucleotide phosphodiesterase-5. Journal of neuroinflammation. 9, 253 (2012).
  13. Farber, N. E., et al. Region-specific and agent-specific dilation of intracerebral microvessels by volatile anesthetics in rat brain slices. Anesthesiology. 87 (5), 1191-1198 (1997).

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Cite This Article
Nishimura, C., Polesskaya, O., Dewhurst, S., Silva, J. N. Quantification of Cerebral Vascular Architecture using Two-photon Microscopy in a Mouse Model of HIV-induced Neuroinflammation. J. Vis. Exp. (107), e53582, doi:10.3791/53582 (2016).

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