We describe a method to knock down gene expression in a growing population of E. coli cells using sequence-targeted sRNA expression cassettes delivered by an M13 phagemid vector.
-RNA gemedieerde knockdowns worden wijd gebruikt om genexpressie. Deze veelzijdige familie van technieken maakt gebruik van korte RNA (sRNA) die kan worden gesynthetiseerd met willekeurige volgorde en ontworpen om elk gen gericht voor silencing vullen. Omdat sRNA constructen kunnen direct op veel celtypen worden ingebracht of met een verscheidenheid aan vectoren kan genexpressie worden onderdrukt in levende cellen zonder moeizame genetische modificatie. De meest voorkomende RNA knockdown technologie, RNA interferentie (RNAi), maakt gebruik van de endogene RNA-geïnduceerd silencing complex (RISC) te bemiddelen herkenningssequentie en klieving van de doelwit mRNA. Toepassingen van deze techniek, beperkt tot RISC-expressie organismen, vooral eukaryoten. Recentelijk heeft een nieuwe generatie RNA biotechnologen alternatieve mechanismen ontwikkeld voor het reguleren van genexpressie door middel van RNA, enzovoort mogelijk gemaakt RNA-gemedieerde gen knockdowns in bacteriën. Hier beschrijven we een methode voor de silencing-gen expresSion in E. coli die functioneel lijkt RNAi. In dit systeem een synthetisch faagmide is ontworpen om sRNA die kan ontworpen om elk doelwit sequentie tot expressie. Het expressieconstruct wordt geleverd aan een populatie van E. coli-cellen met niet-lytische faag M13, waarna het kan stabiel repliceren als een plasmide. Antisense herkenning en onderdrukking van het doelwit mRNA wordt gemedieerd door de HFQ eiwit endogeen E. coli. Dit protocol omvat werkwijzen voor het ontwerpen van de antisense sRNA, constructie van de faagmide vector, verpakken van de fagemide in M13 bacteriofaag bereiden van een levende celpopulatie geïnfecteerd, en het uitvoeren van de infectie zelf. De fluorescerende eiwit mKate2 en het antibioticum resistentiegen chlooramfenicol acetyltransferase (CAT) zijn gericht om representatieve gegevens te genereren en knockdown effectiviteit kwantificeren.
-RNA-gemedieerde gen knockdowns verlopen in twee fasen. Eerst wordt een RNA-molecuul geïntroduceerd in een cellijn of organisme studie. Ten tweede, endogene RNA-bindende eiwitten te vergemakkelijken RNA-doelwit herkenning en productie van de silencing effect. Alle RNA knockdown technologieën maken van de aanpasbare aard van synthetische sRNAs, die gemakkelijk kan worden geproduceerd om een specifiek doelwit van belang overeenkomen. De moleculaire details van RNA silencing opname en sterk verschillen modelsysteem beperken waar en hoe knockdowns RNA kan worden toegepast.
In nematoden, dubbelstrengs RNA (dsRNA) moleculen kunnen rechtstreeks in de media of het voeden van de wormen met een bevolking van dsRNA tot expressie brengende E. geïntroduceerd coli-cellen 1,2. In Drosophila, kan worden bereikt door RNAi microinjecting embryo's met dsRNA 3, of cellijnen uitgevoerd door eenvoudig toevoegen van dsRNA aan het kweekmedium 4. In zoogdiercellijnen,synthetische kleine interfererende RNA's (siRNA's) kunnen aan levende cellen worden geleverd door elektroporatie 1,2,5, verpakt in liposomen 3,6, of tot expressie van DNA-plasmidevectoren 4,7. Zodra de RNA species het cytosol bereikt, de RNAi pathway voert het RISC complex dsRNA verwerken antisense herkenning van het doel te vergemakkelijken en katalyseren translationele repressie mRNA degradatie of heterochromatinevorming, afhankelijk van de gastheersoort.
Vanwege deze eisen, kunnen de klassieke RNAi alleen uitgevoerd worden in organismen die efficiënt nemen exogene RNA en express RISC of een RISC-achtige activiteit. Met name, dit is exclusief het model bacterie E. coli, waarin de RNAi pathway mist. Echter, de recente ontwikkelingen in de synthetische biologie bieden de tools om zowel de levering probleem en het monddood probleem op te lossen.
In dit protocol wordt sRNA constructen tot expressie gebracht in E. coli door een DNA-vector die aan liVing cellen met behulp van de M13 faagmide / helper systeem. Een fagemide is elk plasmide met een faag f1 afgeleide replicatieplaats. Een helper plasmide, in casu M13KO, draagt de machinerie nodig virale deeltjes produceren, maar is zelf niet bevoegd is voor replicatie en verpakken. Wanneer een faagmide en helper plasmide zijn co-getransformeerd, is het faagmide alleen gerepliceerd naar de f1 oorsprong, verpakt en uitgescheiden. De vectorized faagmide is dan bevoegd om live E. infecteren coli via de F-pilus.
In dit systeem wordt het silencing effect door aangepaste sRNA cassettes combineren van een steiger sequentie met een doelwit bindende sequentie. Het doel bindende sequentie 24 basenparen antisense mRNA een doel, typisch bij de ribosoom bindingsplaats (RBS). Het schavot sequentie, ontwikkeld door Na en collega 8, bevat een HFQ-bindende motief onttrokken MICC, een kleine regulerende RNA endogeen E. coli. De HFQ eiwit stimuleert RNA-RNA binding en mRNA degradatie, waar een rol systeem vergelijkbaar met RISC in RNAi. Figuur 1 toont een volledig schema voor faag-gemedieerde sRNA knockdowns, waaronder de sRNA cassette structuur, faagmide vectorisering en silencing mechanisme.
Als een werkwijze om genexpressie in E. moduleren coli, sRNA silencing is eenvoudig, snel en veelzijdig. De beoogde E. coli wordt niet belast buiten uitdragen van het fagemide en de uiting van de sRNA. Dit kan relevant zijn in het kader van de synthetische biologie of fundamenteel onderzoek waar de uitdrukking van grotere heterologe constructies cellulaire middelen 9 kunnen stam zijn. Faagmiden nieuwe targets kunnen worden met een enkele PCR en geoogst één dag na faagmide transformatie. Tenslotte kan vrijwel elk mRNA gericht. De sRNA regeling cassette (op een standaard plasmide) bleek te werken aan verschillende doelen in het metabolisme typische repressie niveaus> 90% 8.
<p class = "jove_content"> Dit protocol reproduceert en breidt op eerdere werk met behulp van faagmide-geboren sRNA cassettes 10. Eerst wordt een verpakt faagmide introduceerde een batch kweek van E. coli-cellen en gebruikt om expressie van het fluorescerende eiwit mKate2 zwijgen. Latere fluorescentieveranderingen bewaakt in real time. Ten tweede, slopen het CAT-gen wordt getoond aan fenotypische chlooramfenicol weerstand op agarplaten te verminderen. In beide gevallen, het faagmide zelf draagt een GFP merker, waardoor infectie te meten, onafhankelijk van de knockdown efficiëntie.De onderhavige werkwijze bereikt 80% reductie in mKate fluorescentie niveaus in vergelijking met niet-gerichte controles. Dit is in lijn met andere RNA knockdown methoden, waar de volledige silencing niet wordt nageleefd en 50-90% rendement is typisch 16,17. Op de fenotypische niveau-CAT gerichte knockdowns waren in staat om aanzienlijk verzwakken chlooramfenicol resistentie en te elimineren onder bepaalde omstandigheden.
De knock-down fenotype was detecteerbaar op populatieniveau na slechts een paar uur na infectie (Figuur 3B). Hieruit blijkt een belangrijk kenmerk van faag afgiftesysteem: hoge knockdown frequentie kan direct in batch kweek worden verkregen zonder voorafgaande genetische modificatie. In tegenstelling tot conventionele genetische modificaties met behulp van plasmide transformatie of genomische integratie, is faag infectie niet vereist dat een populatie opnieuw uitgegroeid van een enkele geïsoleerde kolonie. Hierdoor kan de effecten van faag infectie zijn explored in populaties met complexe ruimtelijke dynamiek 11, met reeds bestaande ruimtelijke structuren zoals biofilms 18, of bij genetisch gemengde natuurlijke populaties 19.
Een kritische stap in deze werkwijze is de productie van verpakte faagmide met hoge titer. De metabole last in verband met faagdeeltje productie kan leiden tot hoge prijzen van mutatie of plasmide verlies in de faagmide productie stam. Aanbevolen wordt het faagmide productiestam direct vanuit één gecotransformeerd kolonie gekweekt worden en niet gekoeld, bevroren of sub-gekweekt voorafgaand aan oogsten faag. Een lage efficiëntie van co-transformatie kan ook worden waargenomen bij de invoering van de faagmide en helper plasmide E. coli tegelijkertijd. In dit geval kunnen hogere rendementen verkregen door het transformeren van het helper plasmide, daarna bereiding van competente cellen met het helper plasmide voor daaropvolgende transformatie met de faagmide.
Phagemid infectie of sRNA expressie legt ook een detecteerbaar metabole belasting van de doelcellen en soms een aantal fenotypische verstoring. Zo werd een vermindering mKate2 fluorescentie zelfs waargenomen wanneer cellen werden geïnfecteerd met een fagemide gericht CAT (Figuur 3). Infectie met M13 wordt niet gedacht aan systemische stressreacties in E. triggeren coli 20, maar kan transcriptie indirect patronen veranderen. Als alternatief, kan de GFP of ampicillineresistentie merkers opgenomen in de faagmide strijden om cellulaire middelen, reducerende mKate2 expressie en 9 groei. Tenslotte kan de sRNA cassette zich globaal veranderen genexpressieprofielen door titratie van de HFQ eiwit of via off-target mRNA silencing. Naast zit treden vaak op in vivo RNAi gericht 21-23, maar ze moeten nog systematisch onderzocht worden voor dit systeem.
Een beperking van deze werkwijze is dat de infectie efficiëntie minder dan 100%, waardoor een aantal niet-geïnfecteerde bacteriën blijven in de populatie. De resultaten van dit werk en eerder werk 10 suggereren dat niet-geïnfecteerde cellen vertegenwoordigt 1-10% van de uiteindelijke populatie, en zijn verantwoordelijk voor het grootste deel van de nonsilenced fenotypes waargenomen. Een scala van mogelijkheden om M13-weerstand bekend, de meest voorkomende zijn mutatiepatronen verlies van pilus expressie 24. In het licht van deze beperkingen, moeten controles worden gebruikt om hoge tarieven infectie en knockdown efficiëntie te bevestigen.
Een andere potentiële beperking voor sommige toepassingen is de occasionele overdracht van verontreinigende helperfaag. Hoewel M13K07 een gemuteerd verpakkingssignaal bevat, kan worden verpakt in faag capside bij lage frequentie en naar geïnfecteerde populaties, wat resulteert in cellen die competent voor faagproductie en de verdere uitbreiding van faag na de eerste infectie evenement 25. Wijzigingen aan de helperfaag het doeltreffend geblekenvermindering van niet-specifieke verpakking, hoewel soms ten koste van verminderde faagproductie 26.
Engineered bacteriofaag zijn een onmisbaar instrument voor E. geworden coli synthetische biologie, waardoor snelle levering van nieuwe genen voor een groeiende bevolking. Recent werk heeft intercellulaire communicatie circuits 11 geproduceerd of uitgedrukt transcriptiefactoren tot resistentie tegen antibiotica onderdrukken trajecten 27. Het protocol hier gepresenteerde draagt bij aan een groeiende verzameling tools die de controle van bacteriële fysiologie door middel van geprogrammeerde RNA's mogelijk te maken. CRISPR Cas-nucleasen, wanneer gemuteerd nuclease activiteit te elimineren, is aangetoond dat transcriptie onderdrukken bij-RNA geleide gen targets 17,28. In tegenstelling sRNA silencing werkt op het translationele niveau en heeft geen exogeen eiwit expressie vereisen. Next-generation biotechnologie kan transcriptionele en translationele controle te verenigen met faag gemedieerde levering aan complexe fenotype programmerentypes in real time.
The authors have nothing to disclose.
De financiering voor dit werk werd geleverd door de Fondation Bettencourt Schueller ter ondersteuning van de Parijse Bettencourt iGEM team. Wij danken de INSERM U1001 onderzoekseenheid en Chantal Lotton voor technische bijstand en advies. Faagmide Litmus28i_J23115-B0032-GFP werd verstrekt door Monica Ortiz en Drew Endy van Stanford.
Plasmid Miniprep Kit | Qiagen | 27104 | |
DpnI Enzyme | NEB | R0176S | |
Phusion High Fidelity Polymerase | NEB | M0530S | |
Taq 2x Master Mix | NEB | M0270L | |
M13KO7 Helper Phage | NEB | N0315S | |
DH5α Competent Cells | Life Technologies | 18265-017 | |
TOP10F' Cells | Life Technologies | C3030-03 | |
LB Broth | Sigma | L3022-250G | |
Ampicillin | Sigma | A9393-5G | |
Kanamycin | Sigma | 60615-5G | |
Chloramphenicol | Sigma | C0378-5G | |
Tetracycline | Sigma | 87128-25G |