Summary

마우스의기도 신속 삽관 용 개선 된 방법

Published: February 22, 2016
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Summary

이 문서에서는 삽관을 통해 마우스 기관에 직접 블레오 마이신 관리를위한 신속하고 간단한 방법을 제공합니다. 이러한 방법의 주요 장점은 마스터 높은 재현성 쉽고, 특수 장비 나 긴 회복 시간을 요구하지 않는다는 점이다.

Abstract

Despite some anatomical and physiological differences, mouse models continue to be an essential tool for studying human lung disease. Bleomycin toxicity is a commonly used model to study both acute lung injury and fibrosis, and multiple methods have been developed for administering bleomycin (and other toxic agents) into the lungs. However, many of these approaches, such as transtracheal instillation, have inherent drawbacks, including the need for strong anesthetics and survival surgery. This paper reports a quick, reproducible method of intratracheal intubation that involves mild inhaled anesthesia, visualization of the trachea, and the use of a surrogate spirometer to confirm exposure. As a proof of concept, 8-12 week old C57BL/6 mice were administered either 2.0 U/kg of bleomycin or an equivalent volume of PBS, and both damage and fibrotic endpoints were measured post-exposure. This procedure allows researchers to treat a large cohort of mice in a relatively short period with little expense and minimal post-procedure care.

Introduction

일부 해부학 적 생리 학적 차이에도 불구하고, 1 뮤린 모델 사육 관점에서 인간 생물학 및 질환 발병. 2 모델링 헤아릴 수, 마우스, 취급하기 쉬운 낮은 사육 시간 가속 수명을 가지며, 상대적으로 저렴 계속 집입니다. 다양한 유전자 변형 전략 (예., 조건부 녹아웃 리포터 마우스 계통 추적 방법 등)뿐만 아니라, 가능한 시약의 다양한 (예., 항체, 재조합 단백질 억제제의 개발과 함께, 등), 마우스는 인간의 질병 및 항상성 과정을 밝히기 위해서 필수적인 모델 척추 생물되었다. (3)

마우스는 인간의 4 ALI는 외상, 부상 또는 패혈증으로 인해 발생할 수 있습니다. 급성 폐 손상 (ALI) 및 폐 섬유증을 포함한 폐 조건을 공부에 특히 유용되었습니다 상피을 특징으로하고내피 누출 (예., 부종), 염증 및 초기 섬유화. 많은 환자에서 ALI 종종 인한 호흡 부전으로 사망 섬유증 결과의 중증 급성 호흡 곤란 증후군 (ARDS)으로 진행한다. 5,6- 폐 섬유증은 세포 외 기질의 과잉 증착 특징 진보적 인 심각한 병리학 , 특히. 나는 장애인 폐 기능을 선도, 콜라겐 블레오 마이신 (BLM)의 7,8 관리를 입력 한 실험 동물에 ALI 및 섬유화를 유도하기 위해 가장 널리 사용되는 최고의 특성화 된 모델입니다. (9) 설치류에 폐 섬유증을 BLM 유발하지만 않습니다 완전히 인간의 섬유 성 표현형은,이 모델 (10) 마우스 연구는 발병과 질병의 진행에 영향을 미치는 여러 중요한 요인의 발견을 주도 요점을 되풀이하지. (11)

BLM 유도 섬유화 뒤에 정확한 메커니즘 (들)를 알 수 있지만, 개시 부상전도기도 및 폐포, 특히 제 1 형 pneumocytes 라이닝 상피 세포의 접촉에 의존하는 DNA 가닥 나누기에서 발생하는 것으로 생각된다. (12) BLM과 폐 상피 세포 사이의 직접 접촉에 대한 필요성은 강력한 전달 경로의 중요성을 강조 그리고 이러한 우려는 재조합 단백질, 항체, siRNA를, 바이러스, 박테리아, 미립자 등을 포함한 말초기도를 대상으로 치료의 넓은 범위에 밀접한 있습니다. 인두 흡인 (OPA)는 이러한 목적 13 널리 사용되었지만, OPA의 주요 단점은 전달 제의 일부가되어 투여 용량으로 부정확 선도 위장관으로 삼킬 수 있다는 것이다. 널리 사용되는 또 다른 방법은 직접 호흡기에 제의 기관지 점적 및 노출 강한 마취 기관 절개술을 포함 transtracheal 점안이다. (14) 그러나, 그러한 수도절차 인해 invasivity에 바람직하지 않을 수 있지만, 또한, 시간 소모적 인 훈련 공정한 비트가 필요하며으로 제제의 직접 투여를 포함한다. 15,16 여러 프로토콜들이 개발되었다 호흡기 잠재적 손상을 일으키는 수술 개입 없이도기도가 16,17,18,19,20 그러나 이러한 방법은 확장 된 것을 포함 복구 시간 강력한 마취제로 인한 고가 장비의 사용 (예., 이경 / 후두경 시판 절차 보드, 광섬유 투여 량에 관한 와이어 등), 구강 조작 과량 불확실성.

이 논문은 연구자가 신속, 저렴하고 안정적​​으로 주변 조직에 잔류 손상의 제한으로 위험 쥐의 폐에 시약을 주입 할 수 있습니다 삽관을 통한 행정의 비교적 쉬운 방법을 설명합니다.

Protocol

미국과 삼목 시나이 의료 센터의 대학 기관 동물 관리 및 사용위원회 (IACUC)는 이러한 연구에 필요한 동물 작업을 승인했다. 1. 준비 무딘 엔드 집게와 억압자를 통해 오토 클레이브를 모두 소독. 생물 안전 캐비닛을 사용하여 동결 건조 분말 PBS에서 BLM의 작업 주식을 준비합니다. 혼합조차 보장 35 kHz에서 10 분 동안 초음파 처리 용액. 참고 : μL (30) 사이에 45의 총 부피는 ?…

Representative Results

삽관 마우스는 체중 감소와 고통에 대해 매일 모니터링, 2.5 % 2,2,2- tribromoethanol의 복강 내 주사를 통해 4, 10 또는 제 17 일 후에 희생되었다. 기관지 폐포 세척액 (BAL)는 PBS 세 세척에 수집 된 21 곳 바와 같이 , 오른쪽 폐는 10 % 포르말린에 고정 된 파라핀, 워싱턴 조직학 및 이미징 코어 (22)의 대학에 의해 메이슨의 트리 크롬 염색 하였다. <p cla…

Discussion

에어로졸 인해 제한 시약 가용성, 안전성, 또는 비용이 비현실적 경우에, 직접 기관 행정부는 폐에 외인성 에이전트의 전달을위한 우수한 방법이다 16 Transtracheal의 점안이 광범위하게이 작업을 수행하는 데 사용되었습니다.; 그러나, 모든 외과 적 개입, 그것은 또한 그것 절차 자체에 의한 합병증의 가능성을 수행하고, 반드시 제가 주입된다. (13) 이러한 이유로, 삽관…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

저자는 트리 크롬 염색 및 분석에 대한 도움말은 워싱턴 대학의 조직학의 브라이언 존슨과 이미징 코어 감사합니다. 이 작품은 NIH 보조금 HL098067 및 HL089455에 의해 지원되었다.

Materials

Bleomycin For Injection, 30 units/vial APP Pharmaceuticals, LLC 103720 For best results, BLM should be suspended in PBS, aliquoted, and stored as single use lyophilzed aliquots
Blunt End Forceps N/A N/A
Tongue Depressor (i.e. bent Valleylab Blade Electrode, 2.4")  Covidien E1551G Before use, create a 45 degree bend 1.5 cm  from the blade tip. A suitable depressor can also be created from any metal implement of similar dimensions. 
Exel Safelet Catheter 22G X 1" Exel International 26746
1 mL Slip-tip Disposable Tuberculin Syringe (200/sp, 1600/ca) BD 309659
0.2ml Pipettor and Filter Tips N/A N/A
Fiber-Lite Illuminator. Model 181-1: Model 180 mated with Standard Dual Gooseneck illuminator Dolan Jenner Industries, Inc. 181-1 Lower output LED illuminators are not recommended as they fail to suficiently illuminate the trachea.
Intubation Board N/A N/A See Diagram 1.
Colored Label Tape: 0.5 in. Wide Fisherbrand 15-901-15A
Oxygen  N/A N/A
Phosphate-Buffered Saline, 1X Corning 21-040-CV Product should be sterile
Non-Sterile Silk Black Braided Suture Spool, 91.4 m, Size 4-0 Harvard Apparatus 517698
Table Top Anesthesia Machine Isoflurane Highland Medical Equipment N/A http://www.highlandmedical.net/
Slide Top Induction Mouse Isoflurane Chamber MIP / Anesthesia Technologies AS-01-0530-SM
FORANE (isoflurane, USP) Liquid For Inhalation 100 mL  Baxter 1001936040
 Nanozoomer Digital Pathology system Hamamatsu
IgM ELISA Quantification Kit  Bethyl Laboratories E90-101

References

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Cite This Article
Vandivort, T. C., An, D., Parks, W. C. An Improved Method for Rapid Intubation of the Trachea in Mice. J. Vis. Exp. (108), e53771, doi:10.3791/53771 (2016).

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