Summary

Isolatie van CD146<sup> +</sup> Resident Lung mesenchymale stromale cellen van Rat Longen

Published: June 17, 2016
doi:

Summary

Dit protocol beschrijft een isolatietechniek voor het verkrijgen van primaire long resident mesenchymale stromale cellen van ratten, door middel van enzymatische digestie, dichtheidsgradiënt scheiding plastic hechting en CD146 + magnetische bead selectie.

Abstract

Mesenchymale stromale cellen (MSC's) worden steeds meer erkend voor hun therapeutisch potentieel in een groot aantal ziekten, waaronder longziekten. Naast het gebruik van beenmerg en navelstreng MSC's voor exogene celtherapie, wordt er ook steeds meer belangstelling voor de reparatie en het regeneratieve potentieel van ingezeten weefsel MSC's. Bovendien hebben ze waarschijnlijk een rol bij normale orgaanontwikkeling en zijn toegewezen rol in ziekte, met name die met een fibrotische aard. De belangrijkste belemmering voor de studie van deze resident weefsel MSCs is het ontbreken van een duidelijke markering voor de isolatie en identificatie van deze cellen. De isolatie techniek die hier beschreven geldt meerdere kenmerken van de long resident MSC's (L-MSC). Bij het offer van de ratten, zijn longen verwijderd en gespoeld meerdere keren om bloed te verwijderen. Naar aanleiding van mechanische dissociatie door scalpel, worden de longen verteerd gedurende 2-3 uur met behulp van een mix van het type collagenase I, neutraal protease en het type DNase I. De obtained enkele celsuspensie wordt vervolgens gewassen en gelaagd over dichtheidsgradiënt medium (dichtheid 1,073 g / ml). Na centrifugatie worden cellen uit de interfase gewassen en uitgeplaat in kweek behandelde flessen. Cellen worden gekweekt gedurende 4-7 dagen in fysiologische 5% O2, 5% CO 2 condities. Om fibroblasten (CD146 -) afbreken en een bevolking van slechts L-MSC's (CD146 +), positieve selectie voor CD146 + cellen te waarborgen wordt uitgevoerd door middel van magnetische bead selectie. Samengevat, deze procedure levert betrouwbare een populatie van primaire L-MSC's voor verdere in vitro onderzoek en manipulatie. Vanwege de aard van het protocol, kan het gemakkelijk worden vertaald naar andere experimentele diermodellen.

Introduction

Mesenchymale stromale cellen (MSC's) worden steeds meer erkend voor hun therapeutisch potentieel in een groot aantal ziekten, waaronder longziekten. Naast het gebruik van beenmerg en navelstreng MSC's voor exogene celtherapie, wordt er ook steeds meer belangstelling voor de reparatie en het regeneratieve potentieel van ingezeten weefsel MSC's. Tijdens de ontwikkeling, waaronder de longen, het mesenchym is een belangrijke bron van ontwikkelings signalen en resident MSCs een waarschijnlijke kandidaat te zijn in het midden van dit. Bovendien is het bewijs in opkomst die inwoner MSC's worden verstoord bij volwassen ziekten, waaronder kanker 1,2 en fibrose 3. De belangrijkste belemmering voor de studie van deze resident weefsel MSCs is het ontbreken van een duidelijke markering voor de isolatie en identificatie van deze cellen 4. Stamcel antigeen-1 (Sca-1) werd geïdentificeerd bij muizen als een marker voor een verscheidenheid van weefsels stamcellen, en kan worden gebruikt voor de isolatie van L-MSC 5, maar heeft helaasgeen bekende orthologen uit andere soorten 6. Onderzoekers hebben een verschillende isolatiemethoden voor de isolatie van L-MSC's van ofwel longweefsel of vloeibare gerapporteerd. Deze variëren van fluorescentie-geactiveerde celsortering (FACS) gebaseerde methodes selecteren op CD31 / CD45 / CD90 + cellen 7, CD31 / CD45 / epitheliale cel adhesiemolecuul (EpCAM) – / Sca-1 + -cellen 8, multidrug resistentie transporter ATP bindende cassette G (ABCG2) positieve cellen 9 of Hoechst 33342 kleurstof efflux 10, kunststof hechting 11,12 en migratie uit gehakt weefsel 13.

De voordelen van de hierin voorgestelde werkwijze zijn meervoudig. Door middel van een zachte enzymatische digestie en dichtheidsgradiënt 14, verkrijgt men alle cellen van het dichtheidbereik dat MSC's omvatten maar exclusief epitheel- en endotheelcellen. De daaropvolgende plastic hechting maatregel wordt bereikt dat alleen de mesenchymal cellen hechten en verblijf in de cultuur, waardoor leukocyten. Belangrijker echter, de CD146 + selectiestap maakt de eliminatie van fibroblasten, aangezien deze cellen niet CD146 tot expressie. Expressie van de celadhesie molecuul CD146 is positief gecorreleerd met multipotentie, en is daarom een goede marker om onkruid uit fibroblasten van een mesenchymale celpopulatie 15-19. Dit is een voordeel boven het gebruik van CD90 als een selectiemerker, omdat het niet alleen uitgedrukt in MSC's maar ook in lipofibroblasts 5,20. In dit protocol hebben we nadrukkelijk gekozen voor een magnetisch bolletje selectie, omdat het zachter op de cellen, en de gehele procedure kan worden uitgevoerd in steriele omstandigheden. Een ander belangrijk voordeel van deze isolatiemethode in plaats van de uitgroei methode is dat het relatief snel, 6-10 dagen in tegenstelling tot een maand of meer voor de uitgroei methode. Drie tot vijf dagen na de oorspronkelijke isolatie de mesenchymale populatie is gereed voor CD146 + sele ction; Na nog drie tot vijf dagen de CD146 + cellen direct worden gebruikt voor experimenten of kan worden ingevroren voor later gebruik. De verminderde tijd cultuur verbetert de kwaliteit van de cellen als MSCs transdifferentiëren richting fibroblasten verlengde ex vivo kweken 19. Tenslotte vanwege de aard van het protocol, is het mogelijk om deze methode toe te passen op andere soorten door simpelweg geschikte antilichamen te kiezen of zelfs andere orgaansystemen door aanpassing van de keuze van verteringsenzymen en incubatietijd.

Een gedetailleerd protocol van deze isolatiewerkwijze wordt hieronder gegeven, en een schematisch overzicht van de isolatie en daaropvolgende selectie van de CD146 + subpopulatie wordt respectievelijk gegeven in Figuur 1A en 1B. Bovendien worden gegevens welke voor passage, invriezen en ontdooien van deze cellen.

ad / 53782 / 53782fig1.jpg "/>
Figuur 1. Schematisch overzicht van de isolatie van pulmonale mesenchymale cellen (A) en daaropvolgende CD146 + celselectie (B) min = minuten.; EDTA = Ethyleendeniaminetetraacetaat; 2 e Ab = secundair antilichaam; a-CD146 Ab = primaire anti-CD146 antilichaam; ve cellen = CD146 negatieve cellen; + ve cellen = CD146 positieve cellen. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Protocol

Alle procedures werden goedgekeurd door de Animal Care Committee van de Universiteit van Ottawa (dierethiek protocol OHRI-1696). Dierenzorg werd uitgevoerd volgens institutionele richtlijnen. 1. Isolatie van Lung mesenchymale stromacellen Bereid het enzym mix in een 50 ml tube: wegen 30 U neutraal protease, 2500 AL Collagenase I en 500 U DNAse I. Deze bedragen volstaan ​​voor de longen van een volwassen muis of rat pup. Bereid op dag van isolatie en bewaar bij 4 ° C tot gebru…

Representative Results

Twee van de meest betrouwbare fysische eigenschappen van MSCs, dichtheid en kunststof hechting, worden in het eerste deel van dit protocol om de mesenchymale celfractie van de long die L-MSC's bevat te verkrijgen. Hoewel de dichtheidsgradiënt interfase omvat monocyten en macrofagen naast long mesenchymale cellen, de plastic hechting gevolgd door 3-5 dagen kweken zorgt ervoor dat alleen de long mesenchymale cellen blijven. Inderdaad deze celpopulatie drukt de klassieke MSC oppervlak …

Discussion

De isolatie en de cultuur van primaire L-MSC's biedt een kans om hun functie en hun interactie met andere celpopulaties op cellulair niveau, en hun rol in de ontwikkeling van de longen, gezondheid en ziekte beter te begrijpen. Dit is vooral belangrijk omdat het ontbreken van één specifieke marker van deze cellen maakt het bijna onmogelijk om deze cellen te bestuderen in situ. Zoals bij alle primaire cel populaties, moet men in gedachten houden dat deze cellen meer kans om hun karakter te veranderen hoe la…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

JJPC is supported by a Canadian Institutes of Health Research (CIHR) postdoctoral fellowship. MAM receives a merit scholarship from the German National Academic Foundation – Studienstiftung des Deutschen Volkes and is supported by a grant from the EFCNI (European Foundation for the Care of the Newborn Infant). BT is supported by CIHR, the Canadian Lung Association, the Stem Cell Network and the Children’s Hospital of Eastern Ontario Research Institute.

Materials

Neutral Protease Worthington Biochemical Corporation LS02104 Prepare on day of isolation and store at 4°C until use
Collagenase I Worthington Biochemical Corporation LS004196 Prepare on day of isolation and store at 4°C until use
DNAse I Sigma-Aldrich D5025 Prepare on day of isolation and store at 4°C until use
Pentobarbital sodium (Euthanyl) Bimeda-MTC Animal Health Inc, Dublin, Ireland Use 0.2 mL for rat pups between 20-30g; larger animals may need more.
Dulbecco’s PBS + Sodium-pyruvate + Glucose Life Technologies 14287-072 Very crucial to use this type of D-PBS, as the calcium and magnesium that are present in this D-PBS facilitate facilitate the enzymatic digestion
Ficoll-Paque PREMIUM (1.073 g/cm3) GE Healthcare 17-5446-52 Density gradient media. To obtain a good interphase, it is crucial that the layering of the single cell suspension occurs at a >45o angle at very low speed, and that the subsequent centrifugation is done at 19oC.
αMEM Sigma-Aldrich M8042 Warm in 37oC water bath before use
200 mM L-Glutamine Life Technologies 25030-164
100x Antibiotic-Antimycotic Life Technologies 15240-062 Penicillin/Streptomycin/Fungizone
M-280 Dynabeads Life Technologies 11205D Magnetic beads
biotinylated polyclonal rabbit-anti-mouse IgG Dako, Agilent Technologies E0464 Biotinylated secondary antibody that matches with the anti-rat CD146 antibody described below
DynaMag5-magnet Life Technologies 12303D Magnet that is recommended for use with Dynabeads. NOTE: magnet should be chosen based on the manufacturer’s instructions of the magnet beads of choice.
TrypLE express  Life Technologies 12605-028 Gentle non-trypsin alternative, use 1 mL of TrypLE express/ 25cm2 surface area. After detachment, 10 mL L-MSC culture medium is sufficient to inactivate 3 mL TrypLE
anti-rat CD146 antibody Lifespan Biosciences Inc. C35841 12.5 μl per 0.5 x 106 cells
Pentaspan (pentastarch solution) Bristol-Myers Squibb Canada Can be obtained through local blood donation services or hematology departments. Alternatively, one could use the PSI 20% Pentastarch solution (Preservation Solutions, PST001) diluted 1:1 with 0.9% NaCl.
Mr.Frosty freezing container ThermoFisher Scientific 5100-0001 Improves viability when freezing L-MSCs overnight at -80oC

References

  1. Bhowmick, N. A., Neilson, E. G., Moses, H. L. Stromal fibroblasts in cancer initiation and progression. Nature. 432, 332-337 (2004).
  2. Wei, H. J., et al. FOXF1 mediates mesenchymal stem cell fusion-induced reprogramming of lung cancer cells. Oncotarget. 5, 9514-9529 (2014).
  3. Marriott, S., et al. ABCG2pos lung mesenchymal stem cells are a novel pericyte subpopulation that contributes to fibrotic remodeling. Am J Physiol Cell Physiol. 307, 684-698 (2014).
  4. Collins, J. J., Thebaud, B. Lung mesenchymal stromal cells in development and disease: to serve and protect. Antioxid Redox Signal. 21, 1849-1862 (2014).
  5. McQualter, J. L., et al. Endogenous fibroblastic progenitor cells in the adult mouse lung are highly enriched in the sca-1 positive cell fraction. Stem Cells. 27, 623-633 (2009).
  6. Holmes, C., Stanford, W. L. Concise review: stem cell antigen-1: expression, function, and enigma. Stem Cells. 25, 1339-1347 (2007).
  7. Gottschling, S., et al. Mesenchymal stem cells in non-small cell lung cancer–different from others? Insights from comparative molecular and functional analyses. Lung Cancer. 80, 19-29 (2013).
  8. Bertoncello, I., McQualter, J. Isolation and clonal assay of adult lung epithelial stem/progenitor cells. Current protocols in stem cell biology. , (2011).
  9. Jun, D., et al. The pathology of bleomycin-induced fibrosis is associated with loss of resident lung mesenchymal stem cells that regulate effector T-cell proliferation. Stem Cells. 29, 725-735 (2011).
  10. Majka, S. M., et al. Identification of novel resident pulmonary stem cells: form and function of the lung side population. Stem Cells. 23, 1073-1081 (2005).
  11. Hennrick, K. T., et al. Lung cells from neonates show a mesenchymal stem cell phenotype. Am J Respir Crit Care Med. 175, 1158-1164 (2007).
  12. Salama, M., et al. Endothelin-1 governs proliferation and migration of bronchoalveolar lavage-derived lung mesenchymal stem cells in bronchiolitis obliterans syndrome. Transplantation. 92, 155-162 (2011).
  13. Hoffman, A. M., et al. Lung-derived mesenchymal stromal cell post-transplantation survival, persistence, paracrine expression, and repair of elastase-injured lung. Stem Cells Dev. 20, 1779-1792 (2011).
  14. Grisendi, G., et al. GMP-manufactured density gradient media for optimized mesenchymal stromal/stem cell isolation and expansion. Cytotherapy. 12, 466-477 (2010).
  15. Bardin, N., et al. S-Endo 1, a pan-endothelial monoclonal antibody recognizing a novel human endothelial antigen. Tissue antigens. 48, 531-539 (1996).
  16. Covas, D. T., et al. Multipotent mesenchymal stromal cells obtained from diverse human tissues share functional properties and gene-expression profile with CD146+ perivascular cells and fibroblasts. Exp Hematol. 36, 642-654 (2008).
  17. Russell, K. C., et al. In vitro high-capacity assay to quantify the clonal heterogeneity in trilineage potential of mesenchymal stem cells reveals a complex hierarchy of lineage commitment. Stem Cells. 28, 788-798 (2010).
  18. Sorrentino, A., et al. Isolation and characterization of CD146+ multipotent mesenchymal stromal cells. Exp Hematol. 36, 1035-1046 (2008).
  19. Halfon, S., Abramov, N., Grinblat, B., Ginis, I. Markers distinguishing mesenchymal stem cells from fibroblasts are downregulated with passaging. Stem Cells Dev. 20, 53-66 (2011).
  20. McGowan, S. E., Torday, J. S. The pulmonary lipofibroblast (lipid interstitial cell) and its contributions to alveolar development. Annu Rev Physiol. 59, 43-62 (1997).
  21. Dulbecco, R., Vogt, M. Plaque formation and isolation of pure lines with poliomyelitis viruses. The Journal of experimental medicine. 99, 167-182 (1954).
  22. Hayakawa, J., et al. 5% dimethyl sulfoxide (DMSO) and pentastarch improves cryopreservation of cord blood cells over 10% DMSO. Transfusion. 50, 2158-2166 (2010).
  23. Sarugaser, R., Hanoun, L., Keating, A., Stanford, W. L., Davies, J. E. Human mesenchymal stem cells self-renew and differentiate according to a deterministic hierarchy. PLoS One. 4, 6498 (2009).
  24. Prockop, D. J. Repair of tissues by adult stem/progenitor cells (MSCs): controversies, myths, and changing paradigms. Molecular therapy : the journal of the American Society of Gene Therapy. 17, 939-946 (2009).
  25. Respiratory Physiology. UCL Available from: https://www.ucl.ac.uk/anesthesia/people/RespPhysiolLong.pdf (2015)
  26. Boron, W. F., Boulpaep, E. L. . Medical Physiology. 2nd edn. , (2009).
  27. Carreau, A., El Hafny-Rahbi, B., Matejuk, A., Grillon, C., Kieda, C. Why is the partial oxygen pressure of human tissues a crucial parameter? Small molecules and hypoxia. J Cell Mol Med. 15, 1239-1253 (2011).
  28. Heller, H., Brandt, S., Schuster, K. D. Determination of alveolar-capillary O2 partial pressure gradient by using 15NO. Nitric oxide : biology and chemistry / official journal of the Nitric Oxide Society. 12, 127-128 (2005).
  29. Mohyeldin, A., Garzon-Muvdi, T., Quinones-Hinojosa, A. Oxygen in stem cell biology: a critical component of the stem cell niche. Cell stem cell. 7, 150-161 (2010).
  30. Simon, M. C., Keith, B. The role of oxygen availability in embryonic development and stem cell function. Nature reviews. Molecular cell biology. 9, 285-296 (2008).
  31. Le, Q. T., et al. An evaluation of tumor oxygenation and gene expression in patients with early stage non-small cell lung cancers. Clin Cancer Res. 12, 1507-1514 (2006).
  32. Krampera, M., et al. Immunological characterization of multipotent mesenchymal stromal cells-The International Society for Cellular Therapy (ISCT) working proposal. Cytotherapy. , (2013).
  33. Corselli, M., et al. Identification of perivascular mesenchymal stromal/stem cells by flow cytometry. Cytometry. Part A : the journal of the International Society for Analytical Cytology. 83, 714-720 (2013).
  34. Russell, K. C., et al. Cell-Surface Expression of Neuron-Glial Antigen 2 (NG2)and Melanoma Cell Adhesion Molecule (CD146) in Heterogeneous Cultures of Marrow-Derived Mesenchymal Stem Cells. Tissue engineering. Part A. , (2013).
  35. Lv, F. J., Tuan, R. S., Cheung, K. M., Leung, V. Y. Concise review: the surface markers and identity of human mesenchymal stem cells. Stem Cells. 32, 1408-1419 (2014).
  36. Dagur, P. K., et al. Secretion of interleukin-17 by CD8+ T cells expressing CD146 (MCAM). Clinical immunology. 152, 36-47 (2014).
  37. Crisan, M., et al. A perivascular origin for mesenchymal stem cells in multiple human organs. Cell stem cell. 3, 301-313 (2008).
  38. da Silva Meirelles, L., et al. Cultured human adipose tissue pericytes and mesenchymal stromal cells display a very similar gene expression profile. Stem Cells Dev. , (2015).
  39. Caplan, A. I. All MSCs are pericytes. Cell stem cell. 3, 229-230 (2008).
  40. Barkauskas, C. E., et al. Type 2 alveolar cells are stem cells in adult lung. J Clin Invest. 123, 3025-3036 (2013).
  41. McGowan, S. E., McCoy, D. M. Regulation of fibroblast lipid storage and myofibroblast phenotypes during alveolar septation in mice. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 307, 618-631 (2014).
  42. Chen, L., Acciani, T., Le Cras, T., Lutzko, C., Perl, A. K. Dynamic regulation of platelet-derived growth factor receptor alpha expression in alveolar fibroblasts during realveolarization. Am J Respir Cell Mol Biol. 47, 517-527 (2012).
  43. Zhou, S., et al. The ABC transporter Bcrp1/ABCG2 is expressed in a wide variety of stem cells and is a molecular determinant of the side-population phenotype. Nat Med. 7, 1028-1034 (2001).
  44. Bonyadi, M., et al. Mesenchymal progenitor self-renewal deficiency leads to age-dependent osteoporosis in Sca-1/Ly-6A null mice. Proc Natl Acad Sci U S A. 100, 5840-5845 (2003).
  45. Ito, C. Y., Li, C. Y., Bernstein, A., Dick, J. E., Stanford, W. L. Hematopoietic stem cell and progenitor defects in Sca-1/Ly-6A-null mice. Blood. 101, 517-523 (2003).
  46. Chow, K., et al. Dysfunctional resident lung mesenchymal stem cells contribute to pulmonary microvascular remodeling. Pulmonary circulation. 3, 31-49 (2013).
check_url/kr/53782?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Collins, J. J., Möbius, M. A., Thébaud, B. Isolation of CD146+ Resident Lung Mesenchymal Stromal Cells from Rat Lungs. J. Vis. Exp. (112), e53782, doi:10.3791/53782 (2016).

View Video