Summary

Intra-iliaca Injection för effektiv och selektiv Modellering av Mikroskopisk skelettmetastaser

Published: September 26, 2016
doi:

Summary

This manuscript provides the detailed procedure of intra-iliac artery (IIA) injection, a technique to deliver cancer cells specifically to hind limb tissues including bones to establish experimental bone metastases. Although initially established with breast tumor models, this protocol can be easily extended to other cancer types.

Abstract

Intra-iliac artery (IIA) injection is an efficient approach to introduce metastatic lesions of various cancer cells in animals. Compared to the widely used intra-cardiac and intra-tibial injections, IIA injection brings several advantages. First, it can deliver a large quantity of cancer cells specifically to hind limb bones, thereby providing spatiotemporally synchronized early-stage colonization events and allowing robust quantification and swift detection of disseminated tumor cells. Second, it injects cancer cells into the circulation without damaging the local tissues, thereby avoiding inflammatory and wound-healing processes that confound the bone colonization process. Third, IIA injection causes very little metastatic growth in non-bone organs, thereby preventing animals from succumbing to other vital metastases, and allowing continuous monitoring of indolent bone lesions. These advantages are especially useful for the inspection of progression from single cancer cells to multi-cell micrometastases, which has largely been elusive in the past. When combined with cutting-edge approaches of biological imaging and bone histology, IIA injection can be applied to various research purposes related to bone metastases.

Introduction

Metastaser står för mer än 90% av dödsfall orsakade av solida tumörer. Ben är den vanligaste organet påverkas av metastaser av olika cancertyper, i synnerhet bröst- och prostatacancer. När diagnosen på kliniken, benmetastaser vanligtvis har redan skrivit ett långt framskridet skede med antingen osteolytiska eller osteoblastiska förändringar i ben, ofta tillsammans med neurologiska symtom.

Tidigare studier främst fokuserat på uppenbara osteolytiska benmetastaser 1-3, men vi för närvarande har begränsad förståelse för mikrometastaser i ben innan starten av osteolytiska processen. Detta beror åtminstone delvis på grund av brist på lämpliga experimentella modeller och metoder. Genetiskt modifierade musmodeller av bröstcancer metastaserar ofta lungorna, men mycket mindre effektivt ben 4. På samma sätt ortotopiskt transplanterade tumörer sällan utvecklar spontana benmetastaser, med några ben tropiska 4T1 bröst carcinomen sub-kloner och MSP uttryckt pymt transgen musmodell som undantag 5-7. Intra-skenbens borrning kan leverera cancerceller till benet 8-10, men det medför också skador och inflammation lokala vävnader. För närvarande Intrakardiella injektion av bröstcancercellinjer har varit den viktigaste metod för att undersöka ben kolonisering 11-13. Emellertid, efter cancerceller införs i vänster kammare endast en begränsad del kommer slutligen nå ben och benmärg, vilket gör det svårt att spåra mikroskopiska metastaser i en kvantifierbar mode.

I denna studie har vi etablera en teknik, nämligen intra-höftartär (IIA) injektion 14, för att selektivt leverera cancerceller in i bakbensvävnad, vilket berikar cancerceller i ben och benmärg utan att orsaka skada på lokala vävnader. På grund av benet specificitet, detta tillvägagångssätt gör också tillräckligt med tid för indolenta cancerceller för att så småningom kolonisera innan enDJUR vika för primära tumörer eller metastaser i andra vitala organ. I kombination med en mängd andra tekniker, såsom mareld avbildning, immunofluorescensfärgning och benhistomorfometri, är potentiellt användbara för ett brett spektrum av forskningsändamål i samband med skelettmetastaser IIA injektion, särskilt för att spåra utvecklingen från enstaka cancerceller till multi-cell mikrometastaser. I synnerhet, visade vi att IIA injektion gör att vi kan visualisera samspelet mellan cancerceller och olika typer av omgivande celler i benet mikromiljö.

Protocol

Alla djur arbete gjordes i enlighet med riktlinjerna för djurskötsel i Baylor College of Medicine. 1. Cellberedning Obs: Olika cancercellinjer kan användas för IIA injektion beroende på forskningsändamål. Vi har använt bröstcancercellinjer MCF7, 4T1, 4T07, MDA-MB-361, MDA-MB-231, MDA-MB-436 och prostatacancer-cellinjen C4-2 i vår forskning. Vi använder vanligtvis både GFP- och eldflugeluciferas-märkta cancerceller för vår studie och visar vissa uppgi…

Representative Results

Figur 1 illustrerar den anatomiska läge och förhållandet av gemensamma höftartären (röd) och ven (blå). Figur 2 visar relativ position höftkärlen och nerverna under dissektion mikroskopi. Såsom visas i figur 2A, de kärl och nerver är precis under den peritoneala väggen och kan avslöjas efter hudsnittet görs och peritoneum trycks bort. Den gemensamma höft venen …

Discussion

Även om endast höftartären är målet för injektionen för cancerceller, rekommenderar vi separationen av både höft ven och artär från omgivande vävnader, och att lyfta dem tillsammans som ett paket. Detta beror på venen och artären utför kontakt med varandra, och den venösa kärlväggen är tunn och är lätt att bryta. Därför, för en lyckad injektion, det sparar tid och ansträngning att hålla upp de två kärlen tillsammans, även cancerceller injiceras enbart till artären. En 4-0 silkessutur använ…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Research in Zhang lab was supported by X. H.-F. Z.’s NCI CA151293, CA183878, Breast Cancer Research Foundation, U.S. Department of Defense DAMD W81XWH-13-1-0195, a Pilot Award of CA149196-04, McNair Medical Institute and by H.W.’s U.S. Department of Defense DAMD W81XWH-13-1-0296.

Materials

Materials
DMEM HyClone SH30022.01
FBS Gibco 16000
Pen/Strep Amphatericin B Lonza Biowhittaker 17-745E
PBS Lonza Biowhittaker 17-516F
Trypsin/EDTA solution HyClone SH30042.01
45uM cell strainer VWR International Laboratory 195-2545
MediGel CPF with carprofen  Controlled item from veterinary care in BCM For pain management
Buprenorphine  Controlled item from veterinary care in BCM For pain management
Estradiol pellet Innovative Research of America SE-121
Ketamine and xylazine Controlled item from veterinary care in BCM
Vet ointment Controlled item from veterinary care in BCM Avoid eye dryness
Shaver Oster 78005-050 For furred mice
Isopropyl ethanol ACROS 67-63-0
Betadine surgical scrub Controlled item from veterinary care in BCM
#10 scalpel blades Ted Pella, Inc 549-3CS-10 Multiple
No. 3 handle Ted Pella, Inc 541-31 Need to be autoclaved
Sterile surgical drape Sai Infusion Technology PSS-SD1
Straight forceps  Roboz Surgical Instrument RS-5132 Need to be autoclaved
Straight fine forceps Fine Science Tools 11253-20 Need to be autoclaved
Edged fine forceps Fine Science Tools 11253-25 Need to be autoclaved
4-0 Vicryl silk suture Johnson & Johnson Health Care J214H
31G insuline syringes BD 328418 Multiple
Q-tips cotton swabs (Sterile) VWR International Laboratory 89031-272
Skin glue Henry Schein Animal Health 31477 For surgery site skin closure
Ear Tag Applicator Fine Science Tools 24220-00
Ear tags Fine Science Tools 24220-50
D-luciferin Gold Biotechnology LUCK Avoid light and put on ice
28G insulin syringes BD 329410 For intra-orbital injection
Paraformadehyde Alfa Aesar 30525-89-4 For tissue fixation
EDTA OmniPur 4050 For bone tissue decalficication
Name Company Catalog Number Comments
Equipment
Dissection microscope Leica Leica S6E stereo
IVIS Lumina II imaging system Advanced Molecular Vision
Name Company Catalog Number Comments
Antibodies
Anti-GFP antibodies (JL-8) Clontech 632381
Anti-ALP antibodies Abcam ab108337
Anti-Osterix antibodies Abcam ab22552

References

  1. Kang, Y., et al. A multigenic program mediating breast cancer metastasis to bone. Cancer cell. 3 (6), 537-549 (2003).
  2. Lu, X., et al. VCAM-1 promotes osteolytic expansion of indolent bone micrometastasis of breast cancer by engaging alpha4beta1-positive osteoclast progenitors. Cancer cell. 20 (6), 701-714 (2011).
  3. Ell, B., Kang, Y. SnapShot: Bone Metastasis. Cell. 151 (3), 690-690 (2012).
  4. Kretschmann, K. L., Welm, A. L. Mouse models of breast cancer metastasis to bone. Cancer Metastasis Rev. 31 (3-4), 579-583 (2012).
  5. Lelekakis, M., et al. A novel orthotopic model of breast cancer metastasis to bone. Clin Exp Metastasis. 17 (2), 163-170 (1999).
  6. Rose, A. A., et al. Osteoactivin promotes breast cancer metastasis to bone. Mol Cancer Res. 5 (10), 1001-1014 (2007).
  7. Welm, A. L., et al. The macrophage-stimulating protein pathway promotes metastasis in a mouse model for breast cancer and predicts poor prognosis in humans. Proc Natl Acad Sci U S A. 104 (18), 7570-7575 (2007).
  8. Li, X., et al. Loss of TGF-beta Responsiveness in Prostate Stromal Cells Alters Chemokine Levels and Facilitates the Development of Mixed Osteoblastic/Osteolytic Bone Lessions. Mol. Cancer. Res. 10 (4), 494-503 (2012).
  9. Gregory, L. S., Choi, W., Burke, L., Clements, J. A. Breast Cancer Cells Induce Osteolytic Bone Lesions In vivo through a Reduction in Osteoblast Activity in Mice. PLoS ON. 8 (9), e68103 (2013).
  10. Waning, D. L., et al. Excess TGF-β mediates muscle weakness associated with bone metastases in mice. Nat Med. 21 (11), 1262-1271 (2015).
  11. Simmons, J. K., et al. Animal Models of Bone Metastasis. Vet Pathol. 52 (5), 827-841 (2015).
  12. Werbeck, J. L., et al. Tumor microenvironment regulates metastasis and metastasis genes of mouse MMTV-PymT mammary cancer cells in vivo. Vet Pathol. 51 (4), 868-881 (2014).
  13. Xiang, J., et al. CXCR4 Protein Epitope Mimetic Antagonist, POL5551, Disrupts Metastasis and Enhances Chemotherapy Effect in Triple Negative Breast Cancer. Mol Cancer Ther. 14 (11), 2473-2485 (2015).
  14. Wang, H., et al. The osteogenic niche promotes early-stage bone colonization of disseminated breast cancer cells. Cancer Cell. 27 (2), 193-210 (2015).
  15. Hoffmann, J., et al. Characterization of new estrogen receptor destabilizing compounds: effects on estrogen-sensitive and tamoxifen-resistant breast cancer. J Natl Cancer Inst. 96 (3), 210-218 (2004).
  16. Tannehill-Gregg, S. H., Levine, A. L., Nadella, M. V., Iguchi, H., Rosol, T. J. The effect of zoledronic acid and osteoprotegerin on growth of human lung cancer in the tibias of nude mice. Clin Exp Metastasis. 23 (1), 19-31 (2006).
  17. Slyfield, C. R., Tkachenko, E. V., Wilson, D. L., Hernandez, C. J. Three-Dimensional Dynamic Bone Histomorphometry. J Bone Miner Res. 27 (2), 486-495 (2012).
  18. Koba, W., Jelicks, L. A., Fine, E. J. MicroPET/SPECT/CT imaging of small animal models of disease. Am J Pathol. 182 (2), 319-324 (2013).
  19. Simmons, J. K., et al. Canine prostate cancer cell line (Probasco) produces osteoblastic metastases in vivo. Prostate. 74 (13), 1251-1265 (2014).
  20. Amend, S. R., et al. Thrombospondin-1 regulates bone homeostasis through effects on bone matrix integrity and nitric oxide signaling in osteoclasts. J Bone Miner Res. 30 (1), 106-115 (2015).
check_url/kr/53982?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Yu, C., Wang, H., Muscarella, A., Goldstein, A., Zeng, H., Bae, Y., Lee, B. H. I., Zhang, X. H. Intra-iliac Artery Injection for Efficient and Selective Modeling of Microscopic Bone Metastasis. J. Vis. Exp. (115), e53982, doi:10.3791/53982 (2016).

View Video