Summary

Coculture Analyser för att studera makrofager och mikroglia Stimulering av Glioblastoma Invasion

Published: October 20, 2016
doi:

Summary

Understanding the malignant behavior of cancer requires creating accurate models of how tumor cells interact with components of the tumor microenvironment, such as macrophages. Here we describe two methods to study glioblastoma cell interaction with tumor associated macrophages and microglia where the effect on glioblastoma invasion is assessed.

Abstract

Glioblastoma multiforme (grad IV gliom) är en mycket aggressiv human cancer med en medianöverlevnad på ett år efter diagnos. Trots ökad förståelse för de molekylära händelser som ger upphov till glioblastom, fortfarande denna cancer mycket okänsliga för konventionell behandling. Kirurgisk resektion av hjärntumörer hög kvalitet är sällan fullständigt på grund av den mycket infiltrativ natur glioblastomceller. Terapeutiska metoder som dämpar glioblastom cellinvasion är därför ett attraktivt alternativ. Vårt laboratorium och andra har visat att tumörassocierade makrofager och mikroglia (hjärn residenta makrofager) starkt stimulera glioblastom invasion. Protokollet som beskrivs i detta dokument används för att modellera glioblastom-makrofag / mikroglia interaktion med hjälp av in vitro-kulturanalyser. Detta tillvägagångssätt kan i hög grad underlätta utvecklingen och / eller upptäckt av läkemedel som stör kommunikationen med makrofager som möjliggör detta maligna behavior. Vi har etablerat två robusta coculture invasionsanalyser där mikroglia / makrofager stimulerar gliom cellinvasion av 5-10-faldigt. Glioblastomceller märkta med en fluorescerande markör eller konstitutivt uttrycker ett fluorescerande protein är pläterade utan och med makrofager / mikroglia på matrisbelagda polykarbonat kammarinsatser eller inbäddade i en tredimensionell matris. Cellinvasion bedöms genom användning av fluorescerande mikroskopi för att bilden och räkna endast invasiva celler på undersidan av filtret. Med hjälp av dessa analyser, flera farmakologiska hämmare (JNJ-28.312.141, PLX3397, Gefitinib och Semapimod), har identifierats som blockerar makrofag / mikroglia stimulerade glioblastom invasion.

Introduction

Glioblastoma multiforme är en aggressiv human hjärncancer med en medianöverlevnad på ungefär 12 månader från tidpunkten för diagnos 1,2. Glioblastoma är en av de mest dödliga och kliniskt utmanande cancer som är refraktär mot befintliga cellgifter och kirurgisk resektion. Den diffusa karaktär glioblastom gör tumörceller att spridas över hela hjärnans normala göra avancerade tumör praktiskt taget omöjligt att kirurgiskt resect helt. Denna mycket invasiva aspekt är ett kännetecken inslag i glioblastom och andra avancerade astrocytom. Därför har fokus för mycket forskning varit på den molekylära mekanismen av glioblastom cellinvasion. Den glioblastom tumör mikro spelar viktiga roller i upprättandet malignitet 3-6. Tumörassocierade makrofager / mikroglia visade sig vara ansvarig för att främja glioblastom invasion 7,8. De flesta av dessa studier dock mätte effekten av makrofager / mikroglia med hjälp avanalyser som fysiskt skiljer dem från de glioblastomceller. Vårt laboratorium har som mål att generera förbättrade analyser som tillåter oss att studera hur glioblastom invasion är beroende av makrofager / mikroglia i samodlingar och göra det möjligt för oss att avbilda den fysiska interaktionen mellan dem under invasionen.

Klassiska analyser för att mäta cellinvasion inkluderar "standard" Boyden kammar kemotaxi och chemoinvasion format. Här de celler som skall studeras är pläterade i en plastkammare som innehåller ett polykarbonatfilter på undersidan som har porer med en viss storlek (i allmänhet mellan 0,4 och 8 ^ M i diameter). Processen för cellinvasion involverar en fysisk barriär, vanligtvis sammansatt av extracellulärt matrisprotein. I chemoinvasion analysen är den föredragna matrisen används Matrigel (hädanefter kallad "matris"), ett extracellulärt matrixprotein blandning utsöndras av Engelbreth-Holm-Swarm (EHS) mus-sarkomceller och består till stor del av collagen typ IV och laminin. Kamrarna placeras sedan i en vävnadsodlingsbrunn som innehåller cellodlingsmedier med eller utan tillväxtfaktorer som misstänks för att stimulera invasionen. Celler som har en högre invasiv kapacitet kommer att invadera genom den extracellulära matrisen belagda filtret vid en högre frekvens och vidhäfta till undersidan av filtret. Vi har ändrat denna analys för att bedöma betydelsen av mikroglia och tumörassocierade makrofager på glioblastom cellinvasion.

Vi har kunnat fastställa att använda samodling analyser som beskrivits i detta dokument som mikroglia kan stimulera invasionen av två glioblastom cellinjer med 5-10-faldigt 9,10. Detta återspeglar vad som observerats i djurmodeller av glioblastoma. Dessutom har vi utvecklat en tredimensionell invasion analys där samspelet mellan glioblastomceller och makrofager / mikroglia kan undersökas direkt. Omfattningen av glioblastom cellinvasion stimuleras av macrophaGES / mikroglia i 3D-analysen är jämförbar med vad som ses med hjälp av matrisen belagda kammar strategi. Liknande analyser har tidigare utvecklats för att studera bröstkarcinom interaktioner med makrofager under invasion 11-13. Båda metoder som beskrivs i detta dokument bör stöd i förmågan att dissekera den molekylära mekanismen (er) av makrofag / mikroglia-stimulerad invasion av glioblastomceller.

Protocol

1. Fluorescerande märkning av celler OBS: Label glioblastom-cellinjer och mikroglia med fluorescerande färgämnen 9. Alternativt generera cellinjer som konstitutivt uttrycker fluorescerande proteiner, såsom GFP / RFP som beskrivs i 14. Platt celler på en 6-brunnsplatta så att de kommer att vara 70 – 80% sammanflytande på dagen för färgning. För den murina glioblastomcellinje GL261 och human glioblastomcellinje U87, platta 1 x 10 6 och 1,5 x 10 6 cel…

Representative Results

Med användning av metoderna som beskrivs här, har vi visat att mikroglia och makrofager väsentligt kan stimulera glioblastom cellinvasion. Två olika invasionsanalyser är anställd och är avbildade i figur 1. I figur 2, var GL261 celler som konstitutivt uttrycker det fluorescerande proteinet mCherry pläterade på förbelagda kammare med och utan mikroglia under 48 timmar. GL261 celler var minimalinvasiv på egen hand men när de odlas med mikroglia…

Discussion

Den mycket invasiva karaktär av hög kvalitet astrocytom och glioblastom gör dessa hjärncancer mycket dödliga. Det är därför av största vikt att förstå de molekylära och cellulära mekanismer av glioblastoma invasion. Mycket har lärt sig om processen med glioblastom invasion redan 17. Använda analysformat som beskrivs i detta dokument, har vårt laboratorium visat i både mus och humana modeller som tumörassocierade makrofager kan stimulera gliom cellinvasion av 5-10-faldigt. Detta samodling mod…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

We would like to thank Dr. Konstantin Dobrenis for providing murine microglia for these studies.

Materials

Corning BioCoat Matrigel Invasion Chamber: With BD Matrigel Matrix Corning/Fisher Scientific Cat: 354481
Macrophage Serum Free Media (MSFM) (500 ml) Life Technologies 12065-074
CellTracker Red CMTPX Dye Life Technologies/Molecular Probes C34552
CellTracker Green CMFDA Dye Life Technologies/Molecular Probes C2925
GL261 cell line National Cancer Institute (NCI)
U87 cell line American Tissue Type Culture Collection HTB-14
THP-1 cell line American Tissue Type Culture Collection ATCC TIB-202
RPMI 1640 Medium (500 ml) Life Technologies/Gibco 11875-093
Formaldehyde solution Sigma Aldrich F1635
Corning Transwell polycarbonate membrane cell culture inserts (8 µM pore) 48 per pack. Corning CLS3422
Cultrex 3-D Culture Matrix Reduced Growth Factor Basement Membrane Extract, PathClear Trevigen 3445-005-01
Fetal Calf Serum (FBS) Life Technologies Cat: 10500064
Bovine Serum Albumin, Fraction V, Heat Shock Treated Fisherscientific BP1600-100
0.5M EDTA ThermoFisher Scientific 15575-020
phorbol 12-myristate 13-acetate (PMA) Sigma Aldrich P8139-1MG

References

  1. Buckner, J. C., et al. Central nervous system tumors. Mayo Clin Proc. 82 (10), 1271-1286 (2007).
  2. Furnari, F. B., et al. Malignant astrocytic glioma: genetics, biology, and paths to treatment. Genes. Dev. 21 (21), 2683-2710 (2007).
  3. Charles, N. A., Holland, E. C., Gilbertson, R., Glass, R., Kettenmann, H. The brain tumor microenvironment. Glia. 60 (3), 502-514 (2012).
  4. Li, W., Graeber, M. B. The molecular profile of microglia under the influence of glioma. Neuro. Oncol. 14 (8), 958-978 (2012).
  5. Watters, J. J., Schartner, J. M., Badie, B. Microglia function in brain tumors. J. Neurosci. Res. 81 (3), 447-455 (2005).
  6. Zhai, H., Heppner, F. L., Tsirka, S. E. Microglia/macrophages promote glioma progression. Glia. 59 (3), 472-485 (2011).
  7. Bettinger, I., Thanos, S., Paulus, W. Microglia promote glioma migration. Acta Neuropathol. 103 (4), 351-355 (2002).
  8. Wesolowska, A., et al. Microglia-derived TGF-beta as an important regulator of glioblastoma invasion: an inhibition of TGF-beta-dependent effects by shRNA against human TGF-beta type II receptor. Oncogene. 27 (7), 918-930 (2008).
  9. Coniglio, S. J., et al. Microglial stimulation of glioblastoma invasion involves epidermal growth factor receptor (EGFR) and colony stimulating factor 1 receptor (CSF-1R) signaling. Mol Med. 18, 519-527 (2012).
  10. Miller, I. S., et al. Semapimod sensitizes glioblastoma tumors to ionizing radiation by targeting microglia. PLoS One. 9 (5), (2014).
  11. Goswami, S., et al. Macrophages promote the invasion of breast carcinoma cells via a colony-stimulating factor-1/epidermal growth factor paracrine loop. Cancer Res. 65 (12), 5278-5283 (2005).
  12. House, R. P., et al. Two functional S100A4 monomers are necessary for regulating nonmuscle myosin-IIA and HCT116 cell invasion. 생화학. 50 (32), 6920-6932 (2011).
  13. Wang, W., et al. The activity status of cofilin is directly related to invasion, intravasation, and metastasis of mammary tumors. J Cell Biol. 173 (3), 395-404 (2006).
  14. Zagzag, D. 1., Miller, D. C., Chiriboga, L., Yee, H., Newcomb, E. W. Green fluorescent protein immunohistochemistry as a novel experimental tool for the detection of glioma cell invasion in vivo. Brain Pathol. 13 (1), 34-37 (2003).
  15. Tsuchiya, S., et al. Establishment and characterization of a human acute monocytic leukemia cell line (THP-1). Int. J. Cancer. 26 (2), 171-176 (1980).
  16. Dobrenis, K. Microglia in cell culture and in transplantation therapy for central nervous system disease. Methods. 16 (3), 320-344 (1998).
  17. Coniglio, S. J., Segall, J. E. Molecular mechanism of microglia stimulated glioblastoma invasion. Matrix Biol. 32 (7-8), 372-380 (2013).
  18. See, A. P., Parker, J. J., Waziri, A. The role of regulatory T cells and microglia in glioblastoma-associated immunosuppression. J Neurooncol. 123 (3), 405-412 (2015).
check_url/kr/53990?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Coniglio, S., Miller, I., Symons, M., Segall, J. E. Coculture Assays to Study Macrophage and Microglia Stimulation of Glioblastoma Invasion. J. Vis. Exp. (116), e53990, doi:10.3791/53990 (2016).

View Video