Summary

Co-cultura de Vida Microbiome com Intestinal Microengineered Humano Villi num Gut-on-a-Chip Microfluidic Dispositivo

Published: August 30, 2016
doi:

Summary

Descreve-se um protocolo in vitro de co-cultura intestino microbiota e vilosidades intestinais por um período prolongado utilizando um sistema microphysiological intestino humano-on-a-chip.

Abstract

Aqui, descrevemos um protocolo para realizar co-cultura de longo prazo de multi-espécies microbioma intestinal humana com vilosidades intestinais microengineered em um dispositivo microphysiological gut-on-a-chip humano. Nós recapitular a interface tecido intestinal lúmen capilar num dispositivo de microfluidos, onde as deformações mecânicas e fisiológicas fluxo de cisalhamento de fluidos são constantemente aplicada para imitar o peristaltismo. No microcanal lúmen, epiteliais intestinais células Caco-2 humanos são cultivados de modo a formar um epitélio das vilosidades 'livre de germes' e regenerar pequenas vilosidades intestinais. células microbianas cultivadas são pré-inoculado para o lado do lúmen para estabelecer um ecossistema hospedeira-micróbio. Depois de células microbianas aderir à superfície apical das vilosidades, fluxo de fluido e deformações mecânicas são retomadas a produzir um micro-ambiente de estado estacionário na qual meio de cultura fresco é continuamente fornecido e bactérias não ligadas (bem como resíduos bacterianas) são continuamente removidos. Após prolongado co-cultura fdias ROM para semanas, múltiplos microcolônias são encontrados para ser localizado de forma aleatória entre as vilosidades, e tanto as células epiteliais microbiana e permanecer viável e funcional durante pelo menos uma semana de cultura. Nosso protocolo de co-cultura pode ser adaptado para proporcionar uma plataforma versátil para outros ecossistemas hospedeiras-microbiota que pode ser encontrado em vários órgãos humanos, o que pode facilitar o estudo in vitro do papel da microbiota humana na orquestração de saúde e na doença.

Introduction

O intestino humano abriga uma matriz surpreendentemente diversificado de espécies microbianas (<1.000 espécies) e um número enorme de células microbianas (10 vezes mais do que as células hospedeiras humanas) e genes (100 vezes mais do que o genoma humano) 1. Estes microbiomas humanos desempenham um papel fundamental no metabolismo de nutrientes e xenobióticos, regulação das respostas imunitárias, e a manutenção da homeostase intestinal 2. Não é de surpreender, tendo em conta estas diversas funções, o microbioma intestinal comensal extensivamente modula saúde e da doença 3. Assim, a compreensão do papel das interações microbioma intestinal e host-micróbio são de grande importância para promover gastrointestinal saúde (GI) e explorar novas terapêuticas para distúrbios intestinais 4. No entanto, já existente em modelos de intestino in vitro (por exemplo, culturas estáticas) restringir a co-cultura de hospedeiro-microbiota a um curto período de tempo (<1 dia) porque as células microbianas e cobrir comprometer barreira intestinal5 funções. Modelos animais de substituição (por exemplo, 6 ou geneticamente modificada livre de germes ratos 7) também não são comumente usados ​​para estudar host-gut microbiome crosstalk porque a colonização e manutenção estável do microbioma intestinal humana são difíceis.

Para superar estes desafios, que recentemente desenvolveu um ser humano biomimético "Gut-on-a-Chip" sistema microphysiological (Figura 1A, à esquerda) para emular as interações microbioma host-intestinais que ocorrem no intestino humano vivo 5,8. O microdispositivo intestino-on-a-chip contém dois canais de microfluidos paralelas separadas por um flexível, poroso, matriz extracelular (ECM) -Revestido membrana revestida por epiteliais intestinais humanas Caco-2 As células, imitando o lúmen intestinal interface para o tecido-capilares (Figura 1A , à direita) 9. deformações rítmicos cíclicos orientada por vácuo induzir deformações mecânicas fisiológicas que imitam mudanças normalmente Induced pelos movimentos peristálticos (Figura 1A, direita). Curiosamente, quando as células Caco-2 são cultivadas no intestino-on-a-chip para mais de 100 h, eles formam espontaneamente tridimensional (3D) vilosidades intestinais com junções apertadas, fronteiras escova apicais, células proliferativas limitados a criptas basais, a produção de muco, aumento da atividade de metabolização de drogas (por exemplo, o citocromo P450 3A4, CYP3A4), e reforçada glucose recaptação 8. Neste microambiente 'livre de germes ", que era possível a co-cultura de Lactobacillus rhamnosus GG probiótico ou a formação de uma mistura terapêutica bacteriana probiótico com células epiteliais do hospedeiro por até duas semanas 5,10.

Neste estudo, descrevemos o protocolo detalhado para executar-hospedeiro intestino co-cultura microbioma no dispositivo de intestino-on-a-chip por um período prolongado. Além disso, discutimos questões críticas e desafios potenciais a serem considerados para uma ampla aplicação deste host-microbioma co-cultura protocolo.

Protocol

1. A microfabricação de um dispositivo Gut-on-a-chip Nota: A a-chip intestino-em-um dispositivo de microfluidos feita por polímero de silicone transparente, permeável ao gás (polidimetilsiloxano, PDMS), contendo dois microcanais paralelas (1 mm de comprimento x largura de 150 um de altura x 1 cm), separadas por uma flexível porosa (10 um de diâmetro de poro, 25 um de poro no espaçamento de poro) PDMS membrana de 5,9. Fabricar o gut-on-a-chip (Figura 1A, esqu…

Representative Results

Para emular o ecossistema hospedeira-microbiota intestinal humano in vitro, que é necessário desenvolver um protocolo experimental para reconstituir a co-cultura estável a longo prazo das bactérias intestinais e as células epiteliais intestinais humanas sob condições fisiológicas, tais como peristalse mecânica semelhante e fluxo de fluido. Aqui, nós utilizamos um microdispositivo biomimético gut-on-a-chip (Figura 1A) para co-cult…

Discussion

Compreender as interacções hospedeiro-microbioma é fundamental para o avanço da medicina; No entanto, os modelos de cultura de células tradicional realizados numa placa de plástico ou de uma placa de estática não suportam a co-cultura estável de células intestinais humanas com micróbios intestinais viver durante mais de 1-2 dias na maior parte porque as células microbianas cobrir as células de mamíferos in vitro. A população microbiana overgrowing rapidamente consome oxigénio e nutrientes, prod…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

We thank Sri Kosuri (Wyss Institute at Harvard University) for providing the GFP-labeled E. coli strain. This work was supported by the Defense Advanced Research Projects Agency under Cooperative Agreement Number W911NF-12-2-0036, Food and Drug Administration under contract #HHSF223201310079C, and the Wyss Institute for Biologically Inspired Engineering at Harvard University. The views and conclusions contained in this document are those of the authors and should not be interpreted as representing the official policies, either expressed or implied, of the Army Research Office, Army Research Laboratory, Food and Drug Administration, or the U.S. Government. The U.S. Government is authorized to reproduce and distribute reprints for Government purposes notwithstanding any copyright notation hereon.

Materials

Dulbecco's Modified Eagle Medium (DMEM) containing 25 mM glucose and 25 mM HEPES Gibco 10564-011 Warm it up at 37°C in a water bath.
Difco Lactobacilli MRS broth BD 288120 Run autoclave at 121°C for 15 min.
Poly(dimethylsiloxane) Dow Corning 3097358-1004 15:1 (w/w), PDMS : cureing agent
Caco-2BBE human colorectal carcinoma line Harvard Digestive Disease Center Human colorectal adenocarcinoma 
Heat-inactivated FBS Gibco 10082-147 20% (v/v) in DMEM
Trypsin/EDTA solution (0.05%) Gibco 25300-054 Warm it up at 37℃ in a water bath.
Penicillin-streptomycin-glutamine Gibco 10378-016 1/100 dilution in DMEM
4′,6-Diamidino-2-phenylindole dihydrochloride Molecular Probes D1306 Nuclei staining
Phalloidin-CF647 conjugate (25 units/mL) Biotium 00041 F-actin staining
Flexcell FX-5000 tension system Flexcell International Corporation FX5K Peristalsis-like stretcing motion (10% cell strain, 0.15 Hz frequency)
Inverted epifluorescence microscope Zeiss Axio Observer Z1 Imaging, DIC
Scanning confocal microscope Leica DMI6000 Imaging, Fluorescence
UVO Cleaner Jelight Company Inc 342 Surface activation of the gut-chip
Type I collagen  Gibco A10483-01 Extracellular matrix component for cell culture into the chip
Matrigel BD 354234 Extracellular matrix component for cell culture into the chip
1 mL disposable syringe BD 309628 Cell and media injection stuff
25G5/8 needle BD 329651 Cell and media injection stuff
Syringe pump Braintree Scientific Inc. BS-8000 Injection equipment into the chip
VSL#3 Sigma-Tau Pharmaceuticals 7-45749-01782-6 A formulation of 8 different commensal gut microbes
Reinforced Clostridial Medium BD 218081 Anaerobic bacteria culture medium
GasPak EZ Anaerobe Container System with Indicator BD 260001 Anaerobic gas generating sachet 
4% paraformaldehyde Electron Microscopy Science 157-4-100 Fixing the cells for staining
Triton X-100 Sigma-Aldrich T8787 Permeabilizing the cells
Bovine serum albumin Sigma-Aldrich A7030 Blocking agent for staining of the cells
Corona treater Electro-Technic Products BD-20AC Plasma generator for fabrication of the chip
Steriflip  Millipore SE1M003M00 Degasing the complete culture medium
Disposable hemocytometer iNCYTO DHC-N01 For manual cell counting

References

  1. Turnbaugh, P. J., et al. An obesity-associated gut microbiome with increased capacity for energy harvest. Nature. 444, 1027-1031 (2006).
  2. Tremaroli, V., Backhed, F. Functional interactions between the gut microbiota and host metabolism. Nature. 489, 242-249 (2012).
  3. Sekirov, I., Russell, S. L., Antunes, L. C. M., Brett Finlay, B. Gut Microbiota in Health and Disease. Physiol. Rev. 90, 859-904 (2010).
  4. Turnbaugh, P. J., et al. The human microbiome project. Nature. 449, 804-810 (2007).
  5. Kim, H. J., Huh, D., Hamilton, G., Ingber, D. E. Human gut-on-a-chip inhabited by microbial flora that experiences intestinal peristalsis-like motions and flow. Lab Chip. 12, 2165-2174 (2012).
  6. Round, J. L., Mazmanian, S. K. The gut microbiota shapes intestinal immune responses during health and disease. Nat Rev Immunol. 9, 313-323 (2009).
  7. Garrett, W. S., et al. Communicable ulcerative colitis induced by T-bet deficiency in the innate immune system. Cell. 131, 33-45 (2007).
  8. Kim, H. J., Ingber, D. E. Gut-on-a-Chip microenvironment induces human intestinal cells to undergo villus differentiation. Integr Biol. 5, 1130-1140 (2013).
  9. Huh, D., Kim, H. J., et al. Microfabrication of human organs-on-chips. Nat Protoc. 8, 2135-2157 (2013).
  10. Kim, H. J., Li, H., Collin, J. J., Ingber, D. E. Contributions of microbiome and mechanical deformation to intestinal bacterial overgrowth and inflammation in a human gut-on-a-chip. Proc. Natl. Acad. Sci. 113, E7-E15 (2016).
  11. Miller, W. G., Lindow, S. E. An improved GFP cloning cassette designed for prokaryotic transcriptional fusions. Gene. 191, 149-153 (1997).
  12. Odijk, M., et al. Measuring direct current trans-epithelial electrical resistance in organ-on-a-chip microsystems. Lab Chip. 15, 745-752 (2015).
  13. Lentle, R. G., Janssen, P. W. Physical characteristics of digesta and their influence on flow and mixing in the mammalian intestine: a review. J Comp Physiol B. 178, 673-690 (2008).
  14. Granato, D., et al. Cell surface-associated lipoteichoic acid acts as an adhesion factor for attachment of Lactobacillus johnsonii La1 to human enterocyte-like Caco-2 cells. Appl Environ Microbiol. 65, 1071-1077 (1999).
  15. Dewhirst, F. E., et al. The human oral microbiome. J Bacteriol. 192, 5002-5017 (2010).
  16. Grice, E. A., Segre, J. A. The skin microbiome. Nat Rev Microbiol. 9, 244-253 (2011).
  17. Hay, P. E., et al. Abnormal bacterial colonisation of the genital tract and subsequent preterm delivery and late miscarriage. Br Med J. 308, 295-298 (1994).

Play Video

Cite This Article
Kim, H. J., Lee, J., Choi, J., Bahinski, A., Ingber, D. E. Co-culture of Living Microbiome with Microengineered Human Intestinal Villi in a Gut-on-a-Chip Microfluidic Device. J. Vis. Exp. (114), e54344, doi:10.3791/54344 (2016).

View Video