Summary

जीन या ड्रग थेरेपी में उपयोग के लिए लक्ष्य निर्धारण एचआईवी -1 उत्पादन प्रभावकारिता और आरएनए की विषाक्तता का मूल्यांकन

Published: September 05, 2016
doi:

Summary

Methods to evaluate the efficacy and toxicity of RNA molecules targeting post-integration steps of the HIV-1 replication cycle are described. These methods are useful for screening new molecules and optimizing the format of existing ones.

Abstract

Small RNA therapies targeting post-integration steps in the HIV-1 replication cycle are among the top candidates for gene therapy and have the potential to be used as drug therapies for HIV-1 infection. Post-integration inhibitors include ribozymes, short hairpin (sh) RNAs, small interfering (si) RNAs, U1 interference (U1i) RNAs and RNA aptamers. Many of these have been identified using transient co-transfection assays with an HIV-1 expression plasmid and some have advanced to clinical trials. In addition to measures of efficacy, small RNAs have been evaluated for their potential to affect the expression of human RNAs, alter cell growth and/or differentiation, and elicit innate immune responses. In the protocols described here, a set of transient transfection assays designed to evaluate the efficacy and toxicity of RNA molecules targeting post-integration steps in the HIV-1 replication cycle are described. We have used these assays to identify new ribozymes and optimize the format of shRNAs and siRNAs targeting HIV-1 RNA. The methods provide a quick set of assays that are useful for screening new anti-HIV-1 RNAs and could be adapted to screen other post-integration inhibitors of HIV-1 replication.

Introduction

वर्तमान एचआईवी -1 उपचार की एक सीमा है कि वे लंबे समय से रोग प्रगति को रोकने के लिए प्रशासित किया जाना चाहिए। एचआईवी -1 प्रतिरोधी टी लिम्फोसाइट, या hematopoietic स्टेम कोशिकाओं के प्रत्यारोपण, संभावित ड्रग थेरेपी 1,2 के अभाव में एचआईवी -1 प्रतिकृति की लंबी अवधि के नियंत्रण प्रदान करने के लिए है और यह भी एक प्रभावी दृष्टिकोण एक एचआईवी -1 इलाज प्राप्त करने के लिए हो सकता है 3। एक तरह से एचआईवी -1 प्रतिकृति के लिए प्रतिरोधी कोशिकाओं को प्रस्तुत करने के लिए एक ऑटोलॉगस प्रत्यारोपण 4 के दौरान एक या एक से अधिक जीन एक संक्रमित व्यक्ति की कोशिकाओं में विरोधी एचआईवी -1 आरएनए या पेप्टाइड्स के लिए कोडिंग डालने के लिए है। कई उम्मीदवार विरोधी एचआईवी -1 जीन किसी भी एक जीन को एचआईवी -1 प्रतिरोध के विकास को रोकने के लिए दो या तीन 5 6 के संयोजन में कुछ में प्रवेश क्लिनिकल परीक्षण के साथ डिजाइन किया गया है।

एंटी एचआईवी -1 आरएनए उनके कम संभावित प्रतिरक्षा प्रतिक्रिया प्रकाश में लाना करने के कारण और क्योंकि वे संयोजन जीन थेरेपी के लिए शीर्ष उम्मीदवारों के बीच में हैंबहुत ही कम जीन दृश्यों से लिखित हैं। कुछ विरोधी एचआईवी -1 आरएनए वायरल प्रविष्टि और एकीकरण को लक्षित करने के लिए डिजाइन किया गया है। हालांकि, ज्यादातर विरोधी एचआईवी -1 आरएनए वायरल जीवन चक्र में बाद के एकीकरण कदम (चित्रा 1) लक्ष्य। पोस्ट-एकीकरण अवरोधकों ऐसे ribozymes 7, 8 और shRNAs U1i RNAs 9 के रूप में एचआईवी -1 नियामक प्रोटीन गूंथना या रेव 1, और antisense आधारित RNAs को लक्षित, एचआईवी -1 शाही सेना में अलग अलग साइटों को लक्षित, प्रलोभन RNAs शामिल हैं। तरीके कि विरोधी एचआईवी -1 आरएनए की प्रभावकारिता तुलना करने के लिए इस्तेमाल किया गया है जीन उम्मीदवार RNAs के लिए कोडिंग और क्षणिक उम्मीदवार RNAs व्यक्त plasmids के साथ ट्रांसफ़ेक्ट कोशिकाओं में वायरल उत्पादन और एक एचआईवी -1 प्लाज्मिड अभिव्यक्ति को मापने के साथ transduced कोशिकाओं में वायरल प्रतिकृति की निगरानी में शामिल 10 -13। हम पहले से स्क्रीन करने के लिए एचआईवी -1 नई ribozyme लक्ष्य साइटों 13-15 के लिए शाही सेना एक एचआईवी -1 उत्पादन परख का इस्तेमाल किया है। इन विधियों के बाद से एक शाही सेना के प्रारूप अनुकूलन करने के लिए परिष्कृत किया गया हैहस्तक्षेप अणु एक shRNA के रूप में प्लास्मिड डीएनए से व्यक्त या एक सिंथेटिक siRNA 16 के रूप में दिया जाता है। परख मानव भ्रूण गुर्दे (HEK) 293T कोशिकाओं से परिपक्व वायरस के उत्पादन के उपाय, और अवरोधकों कि एचआईवी -1 प्रतिकृति चक्र में बाद के एकीकरण कदम लक्ष्य (चित्रा 1) के प्रभाव की तुलना करने के लिए इस्तेमाल किया जा सकता है। अवरोधकों कि पूर्व एकीकरण कदम लक्ष्य के लिए, इस तरह के एक TZM बीएल सेल संक्रामकता परख 17 के रूप में वैकल्पिक assays एंटीवायरल प्रभावकारिता का मूल्यांकन करने की जरूरत है।

क्लिनिक में विरोधी एचआईवी -1 आरएनए के वितरण के लिए प्रमुख सुरक्षा चिंताओं मानव आरएनए या प्रोटीन, और सहज प्रतिरक्षा सेंसर की सक्रियता पर संभावित बंद लक्ष्य प्रभाव शामिल हैं। विरोधी एचआईवी -1 siRNAs की विषाक्तता का मूल्यांकन करने के लिए, हम अलग अलग सेल लाइनों 16 में एक सेल व्यवहार्यता परख का इस्तेमाल किया है। हम भी डबल असहाय शाही सेना प्रतिरक्षा सेंसर की सक्रियता को मापा, आरएनए सक्रिय प्रोटीन काइनेज आर (PKR) और रिसेप्टर 3 (TLR3) की तरह टोल, साथ ही पूर्वइंटरफेरॉन की अभिव्यक्ति जीन, ADAR1 P150 को प्रेरित किया। ये assays पुष्टि करने के लिए कि विरोधी एचआईवी -1 आरएनए की प्रभावकारिता सेल व्यवहार्यता या प्रतिरक्षा सेंसर सक्रियण पर अप्रत्यक्ष प्रभाव के कारण नहीं है इस्तेमाल किया जा सकता है। उन्होंने यह भी आगे विकास से संभावित विषाक्तता के साथ उम्मीदवार RNAs को छोड़कर में उपयोगी होते हैं।

निम्नलिखित प्रोटोकॉल में, प्रक्रियाओं नई चिकित्सकीय RNAs की पहचान करने और अनुकूलन मौजूदा वालों के प्रारूप में वर्णित किया जाता है। तरीकों एचआईवी -1 प्रतिकृति की स्क्रीनिंग आरएनए आधारित पोस्ट-एकीकरण अवरोधकों के लिए उपयोगी होते हैं और इस तरह के वायरल शाही सेना 18 या CRISPR की रेव मध्यस्थता निर्यात को निशाना छोटे अणुओं के रूप में अन्य के बाद एकीकरण निरोधक, स्क्रीन के लिए अनुकूलित किया जा सकता है / डिजाइन किए कैस सिस्टम एकीकृत लक्षित करने एचआईवी -1 डीएनए 19।

Protocol

1. कोशिकाओं और transfections Dulbecco संशोधित ईगल मध्यम (DMEM) में संस्कृति HEK 293T कोशिकाओं 10% भ्रूण गोजातीय सीरम (FBS) और 1% पेनिसिलिन / स्ट्रेप्टोमाइसिन के साथ पूरक। सेल संस्कृति के माध्यम में एक 2 x 10 5 कोशिकाओं / एमएल निल?…

Representative Results

प्रक्रियाओं का एक सामान्य योजनाबद्ध तीन टेस्ट RNAs और एक नियंत्रण चित्रा 2 बी में प्रदान की शाही सेना के लिए एक उदाहरण अभिकर्मक योजना के साथ चित्रा 2 में दिखाया गया है। वायरल उत्प?…

Discussion

एचआईवी -1 उत्पादन परख वर्णित HEK293T कोशिकाओं का उपयोग कर (चित्रा 2) का प्रदर्शन किया गया था और प्रभावी ribozyme 13 के लिए स्क्रीन करने के लिए एचआईवी -1 शाही सेना, shRNA 10,29, siRNA 30, और U1i आरएनए 11,31 लक्ष्य साइ…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

यहाँ प्रस्तुत काम के स्वास्थ्य अनुसंधान (CIHR) की कनाडा के संस्थानों द्वारा समर्थित किया गया (अनुदान DCB-120266, 133377 पीपीपी और एजी को HBF-348967)।

Materials

DMEM HyClone GE Healthcare SH30243.01
FBS HyClone GE Healthcare SH30396.03
Penicillin/Streptomycin Gibco Thermo Fisher 15140-122
Cell culture plates, 96 well, 24 well, 6 well. Corning 353075, 353047, 353043
Micro tubes Axygen Corning 311-08-051
Low molecular weight Poly I:C InvivoGen 3182-29-6
DharmaFECT-1 Dharmacon T-2001-01 transfection reagent for synthetic RNAs
TransIT-LT1 Mirus MIR 2300 transfection reagent for RNA expression plasmids
Nonidet P40 (NP-40) USB 19628
[32P]dTTP Perkin Elmer BLU505H
poly(A) RNA template  Sigma-Aldrich 10108626001
oligo(dT)12-18 DNA primer Thermo Fisher 18418-012
DEAE filtermat paper  Perkin Elmer 1450-522
Microplate scintillation counter Perkin Elmer 1450-024
MTT Sigma-Aldrich M-2128
DPBS HyClone GE Healthcare SH30028.02
Microplate spectrophotometer Bio-rad 1706930
Lysis buffer tablets Roche 4693159001, 4906837001 protease and phosphatase inhibitors
Microcentrifuge Eppendorf 5415R
Bradford reagent Bio-rad 500-0006
Gel running chamber Hoefer SE600
Semi-dry transfer cell Bio-rad 1703940
Protein ladder EZ-Run Thermo Fisher BP3603-500
Nitrocellulose membrane Bio-rad 162-0094
BSA Sigma-Aldrich A9647-1006
Antibody stripping solution Millipore 2504
ECL – Pierce Thermo Fisher  PI32106
ADAR1 antibody from Dr. B.L. Bass
phospho-T446-PKR antibody Abcam ab32036
phospho-S396-IRF3 antibody Cell Signaling 4947
PKR antibody from Dr. A. Hovanessian
IRF3 antibody Cell Signaling 11904
Actin antibody Millipore MAB1501
Peroxidase-labeled goat anti-rabbit KPL 474-1506
Peroxidase-labeled goat anti-mouse KPL 474-1806
Ponceau S  Sigma-Aldrich 6226-79-5

References

  1. Hoxie, J. A., June, C. H. Novel cell and gene therapies for HIV. Cold Spring Harb Perspect Med. 2, a007179 (2012).
  2. Bobbin, M. L., Burnett, J. C., Rossi, J. J. RNA interference approaches for treatment of HIV-1 infection. Genome Med. 7, 50 (2015).
  3. Allers, K., et al. Evidence for the cure of HIV infection by CCR5Delta32/Delta32 stem cell transplantation. Blood. 117, 2791-2799 (2011).
  4. DiGiusto, D. L., et al. Development of hematopoietic stem cell based gene therapy for HIV-1 infection: considerations for proof of concept studies and translation to standard medical practice. Viruses. 5, 2898-2919 (2013).
  5. Burke, B. P., et al. Engineering Cellular Resistance to HIV-1 Infection In Vivo Using a Dual Therapeutic Lentiviral Vector. Mol Ther Nucleic Acids. 4, e236 (2015).
  6. DiGiusto, D. L., et al. RNA-based gene therapy for HIV with lentiviral vector-modified CD34(+) cells in patients undergoing transplantation for AIDS-related lymphoma. Sci Transl Med. 2, 36ra43 (2010).
  7. Scarborough, R. J., Gatignol, A. HIV and Ribozymes. Adv Exp Med Biol. 848, 97-116 (2015).
  8. Eekels, J. J., Berkhout, B. Toward a durable treatment of HIV-1 infection using RNA interference. Prog Mol Biol Transl Sci. 102, 141-163 (2011).
  9. Blazquez, L., Fortes, P. U1 interference (U1i) for Antiviral Approaches. Adv Exp Med Biol. 848, 51-69 (2015).
  10. McIntyre, G. J., et al. 96 shRNAs designed for maximal coverage of HIV-1 variants. Retrovirology. 6, 55 (2009).
  11. Sajic, R., et al. Use of modified U1 snRNAs to inhibit HIV-1 replication. Nucleic Acids Res. 35, 247-255 (2007).
  12. Low, J. T., et al. SHAPE-directed discovery of potent shRNA inhibitors of HIV-1. Mol Ther. 20, 820-828 (2012).
  13. Scarborough, R. J., et al. A Conserved Target Site in HIV-1 Gag RNA is Accessible to Inhibition by Both an HDV Ribozyme and a Short Hairpin RNA. Mol Ther Nucleic Acids. 3, e178 (2014).
  14. Lainé, S., et al. In vitro and in vivo cleavage of HIV-1 RNA by new SOFA-HDV ribozymes and their potential to inhibit viral replication. RNA Biol. 8, 343-353 (2011).
  15. Scarborough, R. J., Lévesque, M. V., Perreault, J. P., Gatignol, A. Design and Evaluation of Clinically Relevant SOFA-HDV Ribozymes Targeting HIV RNA. Methods Mol Biol. 1103, 31-43 (2014).
  16. Scarborough, R. J., Adams, K. L., Daher, A., Gatignol, A. Effective Inhibition of HIV-1 Production by Short Hairpin RNAs and Small Interfering RNAs Targeting a Highly Conserved Site in HIV-1 Gag RNA Is Optimized by Evaluating Alternative Length Formats. Antimicrob Agents Chemother. 59, 5297-5305 (2015).
  17. Sarzotti-Kelsoe, M., et al. Optimization and validation of the TZM-bl assay for standardized assessments of neutralizing antibodies against HIV-1. J Immunol Methods. 409, 131-146 (2014).
  18. Campos, N., et al. Long lasting control of viral rebound with a new drug ABX464 targeting Rev – mediated viral RNA biogenesis. Retrovirology. 12, 1-15 (2015).
  19. Zhu, W., et al. The CRISPR/Cas9 system inactivates latent HIV-1 proviral DNA. Retrovirology. 12, 22 (2015).
  20. Bounou, S., Leclerc, J. E., Tremblay, M. J. Presence of host ICAM-1 in laboratory and clinical strains of human immunodeficiency virus type 1 increases virus infectivity and CD4(+)-T-cell depletion in human lymphoid tissue, a major site of replication in vivo. J Virol. 76, 1004-1014 (2002).
  21. Shan, L., et al. A novel PCR assay for quantification of HIV-1 RNA. J Virol. 87, 6521-6525 (2013).
  22. Clerzius, G., et al. The PKR activator, PACT, becomes a PKR inhibitor during HIV-1 replication. Retrovirology. 10, 96 (2013).
  23. Bradford, M. M. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Anal Biochem. 72, 248-254 (1976).
  24. Stoscheck, C. M. Quantitation of protein. Methods Enzymol. 182, 50-68 (1990).
  25. Battisti, P. L., et al. Additive activity between the trans-activation response RNA-binding protein, TRBP2, and cyclin T1 on HIV type 1 expression and viral production in murine cells. AIDS Res Hum Retroviruses. 19, 767-778 (2003).
  26. Bannwarth, S., et al. Cell-specific regulation of TRBP1 promoter by NF-Y transcription factor in lymphocytes and astrocytes. J Mol Biol. 355, 898-910 (2006).
  27. Clerzius, G., et al. ADAR1 interacts with PKR during human immunodeficiency virus infection of lymphocytes and contributes to viral replication. J Virol. 83, 10119-10128 (2009).
  28. Burugu, S., Daher, A., Meurs, E. F., Gatignol, A. HIV-1 translation and its regulation by cellular factors PKR and PACT. Virus Res. 193, 65-77 (2014).
  29. ter Brake, O., Konstantinova, P., Ceylan, M., Berkhout, B. Silencing of HIV-1 with RNA interference: a multiple shRNA approach. Mol Ther. 14, 883-892 (2006).
  30. Naito, Y., et al. Optimal design and validation of antiviral siRNA for targeting HIV-1. Retrovirology. 4, 80 (2007).
  31. Mandal, D., Feng, Z., Stoltzfus, C. M. Excessive RNA splicing and inhibition of HIV-1 replication induced by modified U1 small nuclear RNAs. J Virol. 84, 12790-12800 (2010).
  32. Chang, Z., et al. Enhanced expression and HIV-1 inhibition of chimeric tRNA(Lys3)-ribozymes under dual U6 snRNA and tRNA promoters. Mol Ther. 6, 481-489 (2002).
  33. Chang, L. J., Liu, X., He, J. Lentiviral siRNAs targeting multiple highly conserved RNA sequences of human immunodeficiency virus type 1. Gene Ther. 12, 1133-1144 (2005).
  34. Daniels, S. M., et al. HIV-1 RRE RNA acts as an RNA silencing suppressor by competing with TRBP-bound siRNAs. RNA Biol. 12, 123-135 (2015).
  35. Castanotto, D., et al. Combinatorial delivery of small interfering RNAs reduces RNAi efficacy by selective incorporation into RISC. Nucleic Acids Res. 35, 5154-5164 (2007).
  36. Vickers, T. A., Sabripour, M., Crooke, S. T. U1 adaptors result in reduction of multiple pre-mRNA species principally by sequestering U1snRNP. Nucleic Acids Res. 39, e71 (2011).
  37. Tai, C. J., Li, C. L., Tai, C. J., Wang, C. K., Lin, L. T. Early Viral Entry Assays for the Identification and Evaluation of Antiviral Compounds. J Vis Exp. , (2015).
  38. Riss, T. L., et al., Sittampalam, G. S., et al. . Assay Guidance Manual. , (2004).
  39. Reynolds, A., et al. Induction of the interferon response by siRNA is cell type- and duplex length-dependent. Rna. 12, 988-993 (2006).
  40. Whitehead, K. A., Dahlman, J. E., Langer, R. S., Anderson, D. G. Silencing or stimulation? siRNA delivery and the immune system. Annu Rev Chem Biomol Eng. 2, 77-96 (2011).
check_url/kr/54486?article_type=t

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Scarborough, R. J., Adams, K. L., Del Corpo, O., Daher, A., Gatignol, A. Evaluation of the Efficacy And Toxicity of RNAs Targeting HIV-1 Production for Use in Gene or Drug Therapy. J. Vis. Exp. (115), e54486, doi:10.3791/54486 (2016).

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