Summary

Kapiler Elektroforez Real Time Kitosan Films üzerine Peptit Aşılama Monitör

Published: October 26, 2016
doi:

Summary

Free solution capillary electrophoresis is a fast, cheap and robust analytical method that enables the quantitative monitoring of chemical reactions in real time. Its utility for rapid, convenient and precise analysis is demonstrated here through analysis of covalent peptide grafting onto chitosan films for improved cell adhesion.

Abstract

Özgür-çözelti kılcal elektroforezi (CE), bir elektrik alanının uygulanmasıyla çözeltisi analitlerin genellikle şarj bileşikleri ayırır. kromatografi gibi diğer analitik ayırma teknikleri ile karşılaştırıldığında, CE, sağlam, ucuz ve etkili bir şekilde (karmaşık, doğal matrisler ya da polimerik bir numune sayısı için) herhangi bir numune hazırlamasını gerektirir. CE hızlı ve ayrılan bileşikler için gözlenen sinyal çözeltisi içindeki miktarı ile doğru orantılı olarak, gerçek zamanlı olarak (örneğin, kimyasal reaksiyon kinetiği) karışımların evrimi takip etmek için kullanılabilir.

Burada, CE verimliliği sonraki biyomedikal uygulamalar için kitosan filmlerin üzerine peptidlerin kovalent aşılama izlemek için gösterilmiştir. Kitosan antimikrobiyel ve biyouyumlu özellikleri böyle hücresi büyüme yüzeylerde gibi biyomedikal uygulamalarda çekici bir malzeme yapmak. Kovalent peptid RGDS (arjinin aşılama – glisin -aspartik asit – serin) kitosan filmlerin yüzeyine hücre eki geliştirmeyi amaçlamaktadır. Tarihsel olarak, kromatografi ve amino asit analizi aşılanmış peptidin miktarı doğrudan ölçümünü sağlamak için kullanılmaktadır. Ancak, CE tarafından sağlanan örnek hazırlama hızlı ayrılması ve yokluğu peptid aşılama sürecinin eşit doğru ama gerçek zamanlı izlenmesini sağlar. CE ayrılması ve reaksiyon karışımının farklı bileşenlerinin ölçülmesi mümkün: (non-aşılı) peptid ve kimyasal ilave maddeleri içerebilir. Bu şekilde, CE kullanımı alt uygulamaları için geliştirilmiş filmler ile sonuçlanır.

kitosan filmler katı hal NMR (Nükleer Manyetik Rezonans) Spektroskopisi vasıtasıyla karakterize edildi. Bu teknik daha zaman alıcı ve gerçek zamanlı olarak uygulanabilir, ancak peptit direkt ölçümü verir ve bu nedenle CE tekniğini doğrular.

Introduction

Ücretsiz çözüm kılcal elektroforezi (CE) kendi yük-sürtünme oranı 1,2 dayalı çözümler bileşikleri ayıran bir tekniktir. Şarj-boyutlu oranı genellikle literatürde açıklanan, ancak bu sadeleştirme bu çalışmada polipeptitleri dahil olmak üzere, polielektrolitler için geçerli değildir, ve aynı zamanda küçük organik moleküller 3 için uygun değildir gördü. CE bir durağan fazı, bir arka plan elektrolit (genellikle bir tampon) yok diğer ayırma teknikleri farklıdır. Bu teknik, 5, fermantasyon Brews 6 sentetik polimerler 7, gıda numuneleri 8 ve sıkıcı numune hazırlık yapmadan pek çözünür peptidler 9 ve üzerine aşılama bitki lifleri gibi karmaşık matrisler 4 örneklerin geniş bir ürün yelpazesi analiz kabiliyeti güçlü olmasını sağlar saflaştırılması. Bu çözünme sorunları var kompleks polielektrolitler (ler için özellikle önemlidirUCH nedenle kitosan 10 ve gellan sakızı 11) olarak birleştirilmiş ya da çözelti içinde çökeltilmiş ana kadar başarıyla örnek, süzme olmadan, analiz edilmiştir. Dahası, kahvaltılık tahıllar şekerlerin analizi suda 8 çöktürülmüş kahvaltı gevreği örneklerinin parçacıkları ile örnekleri enjekte çıkıyor. Bu aynı zamanda da dallı polielektrolitler veya kopolimerler 12,13 analizi için de geçerlidir. Kapsamlı çalışmalar da, özellikle proteomik 14, doğal ya da sentetik peptidler, 15 ve protein ve peptid 16 mikroçip ayırmaların şiral ayrımı için proteinlerin analizi CE tekniklerinin geliştirilmesi tamamlanmıştır. Ayırma ve analiz kılcal gerçekleşecek bu yana, sadece küçük örnek hacimleri ve çözücüler kromatografi 5,6,17 dahil olmak üzere diğer ayırma tekniklerinden daha düşük çalışma maliyeti için CE sağlayan kullanılmaktadır. CE tarafından ayırma hızlı olduğundan, monito veriyorReaksiyon kinetiğinin halka. Bu iyileştirilmiş hücre yapışması için 18 kitosan filmleri üzerine peptidlerin aşılama durumunda gösterilmiştir.

Kitosan kitin N -deacetylation türetilmiş bir polisakkarittir. Nedeniyle çitosan en biyouyumluluk 21, 18,20 19 biyo yapışkanlar ve hücre büyümesi substratlar Chitosan filmler gibi çeşitli biyomedikal uygulamalar için kullanılabilir. Fibronektin, kolajenler ve laminin gibi özel hücre dışı matris proteinlerine Hücre bağlanması, doğrudan hücre 22 hayatta kalma ile bağlantılıdır. Özellikle, farklı hücre tipleri çoğu zaman hayatta kalma ve uygun işlev için, farklı hücre dışı matris proteinlerine eki gerektirir. Kitosan filmlerin Hücre eki fibronektin 23 aşılama yoluyla geliştirilmiş olduğu gösterilmiştir; Bununla birlikte, terkip, saflaştırma ve bu büyük proteinlerin aşılama ekonomik açıdan uygun değildir. Alternatif olarak, küçük peptidlerin bir serisi havE, büyük hücre dışı matris proteinlerinin özelliklerini taklit etmek mümkün olduğu gösterilmiştir. Örneğin, bu gibi fibronektin mimetikleri RGD peptitler (arjinin – glisin – aspartik asit) ve RGDS (arjinin – glisin – aspartik asit – serin) kolaylaştırmak ve hücre eki 24 geliştirmek için kullanılmıştır. Kitosan filmlerin üzerine RGDS kovalent aşılama vivo 18 fibronektin takmak için bilinen hücreler için gelişmiş hücre eki sonuçlandı. Daha büyük protein ikamesi aynı işlevselliği önemli bir maliyet düşüşü sağlamaktadır sahip küçük peptitler ile fibronektin seviyor.

Daha önce 18 yayınlanan Burada, kitosan için aşılama peptid yapıldı. Daha önce gösterildiği gibi, bu yaklaşım için RGDS karboksilik asit işlevselleştirilmesi bağlama maddeleri EDC-HCL (1-etil-3- (3-dimetilaminopropil) karbodiimid) ve NHS (N-hidroksisukinimid) kullanarak, basit ve etkili bir aşılama sağlar üzerine aşılanmışkitosan filmi. Bu aşılama yöntemi önemli avantajı, çitosan veya peptit herhangi bir değişiklik gerektirmez, ve gelecekteki hücre kültür uygulamaları 18,20 ile uyumluluğu arttırmak için, sulu bir ortam içinde yürütülmektedir. bağlama maddeleri ve peptit şarj edilebilir CE reaksiyon kinetiği analizi için uygun bir yöntemdir. Önemlisi, CE aracılığıyla reaksiyon kinetiği analizi aşılama reaksiyonu gerçek zamanlı izlenmesini sağlar ve böylece hem optimize ve aşılama derecesinin miktarını sağlar.

Rutin gerekli olmasa da, CE analizi sonuçları kovalent aşılama göstermek için katı hal NMR (Nükleer Manyetik Rezonans) Spektroskopisi 25,26 kullanılarak kitosan filmler üzerine aşılama peptidin doğrudan ölçülmesi ile off-line doğrulanabilir filmin 18 üzerine peptid. Bununla birlikte, katı hal NMR spektroskopisi ile karşılaştırıldığında, gerçek zamanlı analizi ile teminCE gerçek zamanlı olarak peptit tüketimi ve reaksiyonun kinetiği değerlendirmek, böylece yeteneğinin ölçümü sağlar.

Yukarıda belirtilen yöntem basit ve aşılama ölçüde dolaylı ölçümü ile kitosan filmlerin üzerine aşılama peptid gerçek zamanlı analiz sağlar. gösterilen yöntem, farklı kimyasal reaksiyonlar sürece reaktanlar ya da şarj edilebilir analiz edilecek ürünlerin gerçek zamanlı kantitatif değerlendirmesi uzatılabilir.

Protocol

Kitosan Filmlerin hazırlanması 1. ultra saf su ile, 100 ml tam buzlu asetik asit 2 g tartılır. % 2 a / a, asetik asit sulu çözeltisi, 100 ml ekleyin, kitosan tozu üzerinden 1.7 g tartılır. ya da alüminyum folyo ile ya da karanlıkta kaplı oda sıcaklığında karıştırma çubuğu ve manyetik bir karıştırma levhası ile 5 gün için karıştırın. 1 saat süre ile, 23 ° C'de 1.076 x g'de çitosan dispersiyon santrifüjleyin. bir şırınga ile süpernatant toplayı…

Representative Results

CE kitosan filmleri üzerine peptidler (ör RGDS) aşılanmasını takip için uygundur. Müsait bağlama maddeleri kitosan üzerine aşılanabilir (Şekil 1) peptidi aktive EDC-HCl ve NHS bulunmaktadır. CE reaksiyon ortamından farklı ilgi molekülleri ayırabilmektedir. elektroferogramdaki üzerinde doruklarına atamak için, saf RGDS, EDC-HCl ve NHS, çözünmüş enjekte ve ayrı ayrı ayrıldı. Pik belirlemesinden sonra, reaksiyon ortamı enjekte edilmi?…

Discussion

Burada açıklanan protokol sadeliği bu ideal yaygın uygulamaya uygun hale getirir. Ancak, özellikle dikkat aşağıdaki kilit adımların ödenecek gerekmektedir.

Uygun CE enstrüman hazırlama

Gün kılcal ve aletin geçerliliğini kontrol etmek için bilinmeyen numunelerin ayrılması hemen önce bilinen bir standart (aynı zamanda da ayrılmaların dizisinin sonu) ayırmak önemlidir. Bu standart, bir oligoacrylate 27 veya göç…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

MG, MO’C and PC thank the Molecular Medicine Research Group at WSU for Research Seed Funding, as well as Michele Mason (WSU), Richard Wuhrer (Advanced Materials Characterisation Facility, AMCF, WSU) and Hervé Cottet (Montpellier) for discussions.

Materials

Water Millipore All water used in the experiment has to be of Milli-Q quality
Chitosan powder (medium molecular weight) Sigma-Aldrich 448877 lot MKBH1108V was used. Significant batch-to-batch variations occur with natural products such as polysaccharides
Acetic acid – Unilab Ajax Finechem 2-2.5L GL laboratory reagent
Dimethylsulfoxide Sigma-Aldrich D4540 laboratory reagent, slightly hazardous to skin, hazardous if ingested
Sodium hydroxide  Sigma-Aldrich 221465  laboratory reagent, corrosive 
RGDS  Bachem H‐1155 peptide, bought from Auspep Pty Ltd
1-ethyl-3-(3-dimethylaminopropyl)carbodiimide  Sigma-Aldrich D80002 Irritant to skin 
N-hydroxysuccinimide  Sigma-Aldrich 130672 Irritant to skin
Sodium chloride  Ajax Finechem 466-500G laboratory reagent
Potassium chloride – Univar Ajax Finechem 384-500G analytical reagent, slight skin irritant
Disodium hydrogen phosphate – Unilab Ajax Finechem 1234-500G laboratory reagent, slight skin irritant
Potassium dihydrogen phosphate – Univar Ajax Finechem 4745-500G analytical reagent, slight skin irritant
Oligoacrylate standard custom made See reference for synthetic protocol: Castignolles, P.; Gaborieau, M.; Hilder, E. F.; Sprong, E.; Ferguson, C. J.; Gilbert, R. G. Macromol. Rapid Commun. 2006, 27, 42-46
Boric acid  BDH AnalR, Merck Pty Ltd 10058 Corrosive
Hydrochloric acid – Unilab Ajax Finechem A1367-2.5L laboratory reagent, corrosivie
Fused silica tubing Polymicro (Molex) TSP050375 Flexible fused silica capillary tubing with standard polyimide coating, 50 µm internal diameter, 363 µm outer diameter 
Agilent 7100 CE Agilent Technologies G7100CE Capillary electrophoresis instrument
Orbital shaker  IKA KS260
Electronic balance Mettler Toledo MS204S
Milli-Q Synthesis  Millipore ZMQS5VF01 Ultrapure water filtration system
Parafilm  Labtek PM966 Parrafin wax

References

  1. Muthukumar, M. Theory of electrophoretic mobility of a polyelectrolyte in semidilute solutions of neutral polymers. Electrophoresis. 17, 1167-1172 (1996).
  2. Barrat, J. L., Joanny, J. F. . in Advances in Chemical Physics, Vol Xciv Vol. 94 Advances in Chemical Physics. , 1-66 (1996).
  3. Fu, S. L., Lucy, C. A. Prediction of electrophoretic mobilities. 1. Monoamines. Anal. Chem. 70, 173-181 (1998).
  4. Harvey, D. . Modern Analytical Chemistry. , (2000).
  5. Oliver, J. D., Gaborieau, M., Hilder, E. F., Castignolles, P. Simple and robust determination of monosaccharides in plant fibers in complex mixtures by capillary electrophoresis and high performance liquid chromatography. J. Chromatogr. A. 1291, 179-186 (2013).
  6. Oliver, J. D., Sutton, A. T., Karu, N., Phillips, M., Markham, J., Peiris, P., Hilder, E. F., Castignolles, P. Simple and robust monitoring of ethanol fermentations by capillary electrophoresis. Biotechnology and Applied Biochemistry. 62, 329-342 (2015).
  7. Thevarajah, J. J., Sutton, A. T., Maniego, A. R., Whitty, E. G., Harrisson, S., Cottet, H., Castignolles, P., Gaborieau, M. Quantifying the Heterogeneity of Chemical Structures in Complex Charged Polymers through the Dispersity of Their Distributions of Electrophoretic Mobilities or of Compositions. Anal. Chem. 88, 1674-1681 (2016).
  8. Toutounji, M. R., Van Leeuwen, M. P., Oliver, J. D., Shrestha, A. K., Castignolles, P., Gaborieau, M. Quantification of sugars in breakfast cereals using capillary electrophoresis. Carbohydr. Res. 408, 134-141 (2015).
  9. Miramon, H., Cavelier, F., Martinez, J., Cottet, H. Highly Resolutive Separations of Hardly Soluble Synthetic Polypeptides by Capillary Electrophoresis. Anal. Chem. 82, 394-399 (2010).
  10. Mnatsakanyan, M., Thevarajah, J. J., Roi, R. S., Lauto, A., Gaborieau, M., Castignolles, P. Separation of chitosan by degree of acetylation using simple free solution capillary electrophoresis. Anal. Bioanal. Chem. 405, 6873-6877 (2013).
  11. Taylor, D. L., Ferris, C. J., Maniego, A. R., Castignolles, P., in het Panhuis, M., Gaborieau, M. Characterization of Gellan Gum by Capillary Electrophoresis. Australian Journal of Chemistry. 65, 1156-1164 (2012).
  12. Thevarajah, J. J., Gaborieau, M., Castignolles, P. Separation and characterization of synthetic polyelectrolytes and polysaccharides with capillary electrophoresis. Adv. Chem. 2014, 798503 (2014).
  13. Sutton, A. T., Read, E., Maniego, A. R., Thevarajah, J., Marty, J. -. D., Destarac, M., Gaborieau, M., Castignolles, P. Purity of double hydrophilic block copolymers revealed by capillary electrophoresis in the critical conditions. J. Chromatogr. A. 1372, 187-195 (2014).
  14. Righetti, P. G., Sebastiano, R., Citterio, A. Capillary electrophoresis and isoelectric focusing in peptide and protein analysis. Proteomics. 13, 325-340 (2013).
  15. Ali, I., Al-Othman, Z. A., Al-Warthan, A., Asnin, L., Chudinov, A. Advances in chiral separations of small peptides by capillary electrophoresis and chromatography. J. Sep. Sci. 37, 2447-2466 (2014).
  16. Kasicka, V. Recent developments in capillary and microchip electroseparations of peptides (2011-2013). Electrophoresis. 35, 69-95 (2014).
  17. Taylor, D. L., Thevarajah, J. J., Narayan, D. K., Murphy, P., Mangala, M. M., Lim, S., Wuhrer, R., Lefay, C., O’Connor, M. D., Gaborieau, M., Castignolles, P. Real-time monitoring of peptide grafting onto chitosan films using capillary electrophoresis. Anal. Bioanal. Chem. 407, 2543-2555 (2015).
  18. Rinaudo, M. Chitin and chitosan: Properties and applications. Prog. Polym. Sci. 31, 603-632 (2006).
  19. Li, Z., Leung, M., Hopper, R., Ellenbogen, R., Zhang, M. Feeder-free self-renewal of human embryonic stem cells in 3D porous natural polymer scaffolds. Biomaterials. 31, 404-412 (2010).
  20. Domard, A. A perspective on 30 years research on chitin and chitosan. Carbohydr. Polym. 84, 696-703 (2011).
  21. Shekaran, A., Garcia, A. J. Nanoscale engineering of extracellular matrix-mimetic bioadhesive surfaces and implants for tissue engineering. Biochim. Biophys. Acta Gen. Subj. 1810, 350-360 (2011).
  22. Custodio, C. A., Alves, C. M., Reis, R. L., Mano, J. F. Immobilization of fibronectin in chitosan substrates improves cell adhesion and proliferation. J. Tissue Eng. Regen. Med. 4, 316-323 (2010).
  23. Boateng, S. Y., Lateef, S. S., Mosley, W., Hartman, T. J., Hanley, L., Russell, B. RGD and YIGSR synthetic peptides facilitate cellular adhesion identical to that of laminin and fibronectin but alter the physiology of neonatal cardiac myocytes. Am. J. Physiol. Cell Physiol. 288, C30-C38 (2005).
  24. Lefay, C., Guillaneuf, Y., Moreira, G., Thevarajah, J. J., Castignolles, P., Ziarelli, F., Bloch, E., Major, M., Charles, L., Gaborieau, M., Bertin, D., Gigmes, D. Heterogeneous modification of chitosan via nitroxide-mediated polymerization. Polym. Chem. 4, 322-328 (2013).
  25. Gartner, C., Lopez, B. L., Sierra, L., Graf, R., Spiess, H. W., Gaborieau, M. Interplay between Structure and Dynamics in Chitosan Films Investigated with Solid-State NMR, Dynamic Mechanical Analysis, and X-ray Diffraction. Biomacromolecules. 12, 1380-1386 (2011).
  26. Castignolles, P., Gaborieau, M., Hilder, E. F., Sprong, E., Ferguson, C. J., Gilbert, R. G. High resolution separation of oligo(acrylic acid) by capillary zone electrophoresis. Macromol. Rapid Commun. 27, 42-46 (2006).
  27. Chamieh, J., Martin, M., Cottet, H. Quantitative Analysis in Capillary Electrophoresis: Transformation of Raw Electropherograms into Continuous Distributions. Anal. Chem. 87, 1050-1057 (2015).
  28. Maniego, A. R., Ang, D., Guillaneuf, Y., Lefay, C., Gigmes, D., Aldrich-Wright, J. R., Gaborieau, M., Castignolles, P. Separation of poly(acrylic acid) salts according to topology using capillary electrophoresis in the critical conditions. Anal. Bioanal. Chem. 405, 9009-9020 (2013).
  29. Chung, T. W., Lu, Y. F., Wang, S. S., Lin, Y. S., Chu, S. H. Growth of human endothelial cells on photochemically grafted Gly-Arg-Gly-Asp (GRGD) chitosans. Biomaterials. 23, 4803-4809 (2002).
check_url/kr/54549?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Thevarajah, J. J., O’Connor, M. D., Castignolles, P., Gaborieau, M. Capillary Electrophoresis to Monitor Peptide Grafting onto Chitosan Films in Real Time. J. Vis. Exp. (116), e54549, doi:10.3791/54549 (2016).

View Video