Summary

Определение дзета-потенциала через наночастицу транслокации через скоростей перестраиваемого нанопор: Использование ДНК-модифицированных частиц, как в примере

Published: October 26, 2016
doi:

Summary

Здесь мы используем полиуретановые перестраиваемого нанопор интегрированный в резистивном метод импульсного зондирования для характеристики наночастиц химию поверхности с помощью измерения скоростей транслокации частиц, которые могут быть использованы для определения дзета-потенциала отдельных наночастиц.

Abstract

Нанопор технологии, известные под общим названием резистивные датчики импульсов (RPS), используются для обнаружения, количественного определения и характеристики белков, молекул и наночастиц. Настраиваемый резистивный импульса зондирования (TRPS) является относительно недавним адаптации к ПСТ, который включает в себя перестраиваемый поры, который может быть изменен в режиме реального времени. Здесь мы используем TRPS для контроля времени транслокации наночастиц ДНК-модифицированного , как они проходят перестраиваемый пор мембраны в зависимости от концентрации и структуры ДНК (то есть, одноцепочечную к двухцепочечной ДНК).

TRPS основана на двух электродов Ag / AgCl, разделенных эластомерного порами мембраны, устанавливающей стабильный ионный ток при приложенного электрического поля. В отличие от различных оптических технологий на основе определения свойств частиц, TRPS могут характеризовать отдельные частицы среди выборочной совокупности, что позволяет мультимодальные образцы для анализа с легкостью. Здесь мы покажем, дзета-потенциал измеренияс помощью транслокации частиц скоростей известных стандартов и применить их к образцу аналитов раз транслокация, таким образом, в результате чего измерения дзета-потенциала этих аналитов.

А также приобретение средних значений дзета-потенциал, образцы все измеряют с помощью частиц по-частицы перспективу, проявляющего больше информации о данном образце посредством распределения выборки населения, например. Из таких, этот метод демонстрирует потенциал внутри приложений зондирования для медицинских и экологических областях.

Introduction

Функционализированные наночастицы становятся все более популярными в качестве биосенсоров в медицинских и экологических областях. Способность изменять химию поверхности наночастицу, в ДНК, например, оказывается полезным для целевых систем доставки лекарственных средств 1 и мониторинга ДНК-белковых взаимодействий 2-4. Все более и более общее свойство наночастиц быть использованы в биопроб и в доставке терапевтических средств является Суперпарамагнетизм 5. Суперпарамагнитных частиц (SppS) являются чрезвычайно полезными для выявления и устранения конкретных аналитов из сложных смесей и может сделать это с помощью простого использования одного магнита. После удаления, анализируемые переплете частицы могут быть охарактеризованы и проанализированы соответствует своему назначению.

Предыдущие методы, используемые для обнаружения и определения характеристик наночастиц включают в себя оптические методы, такие как динамического рассеяния света (DLS), иначе известный как фотонной корреляционной спектроскопии. Несмотря на то, приветГ.Х. техника пропускная способность , СДО ограничивается будучи метод на основе усреднения и при анализе мультимодальные образцов без добавления специализированного программного обеспечения, более крупные частицы будут производить гораздо более доминирующего сигнала, в результате чего некоторые из более мелких частиц , совершенно незаметно 6,7. Частица за частицей методы определения характеристик, следовательно, гораздо более благоприятными для анализа наночастиц и функционализованных систем наночастиц.

технологии, основанные RPS основаны вокруг приложения электрического поля к образцу и мониторинга транспортного механизма частиц через синтетического или биологического нанопоры. Относительно недавно обнаружения наночастиц и характеристика методика , основанная на RPS перестраивалось резистивный импульса зондирования (TRPS) 8-16. TRPS представляет собой систему из двух электродов, разделенных эластомерного перестраиваемые пор мембраны. Метод перестраиваемый пор позволяет аналитов диапазона формы 17 и размера , чтобы измерить с помощью их трансмеханизмы портов через поры. Перестраиваемые поры использовались ранее для выявления мелких частиц (70-95 нм в диаметре) , производящее сопоставимые результаты с другими методами , например, трансмиссионной электронной спектроскопии (ПЭМ) 10. При приложении электрического поля, наблюдается ионный ток и, как частицы / молекулы проходят через поры, они временно блокировать поры, что вызывает уменьшение тока, который может быть определен как '' блокада события ». Каждое событие блокада является представителем одной частицы таким образом , что каждая частица в образце можно охарактеризовать по отдельности на основании величины блокаде, А Уравнение 1 , А полная ширина полувысоте, FWHM, а также другие свойства блокады. Анализируя отдельные частицы, поскольку они проходят через нанопоры выгодно для мультимодальных образцов, как TRPS может успешно и эффективно различать диапазон частиц размером АмонGST одного образца. Настраиваемый чувствительный резистивный импульс завершается размер 10, дзета – потенциал 12,18 и концентрации 15 измерений одновременно в один проход , и поэтому все еще может дифференцировать образцы аналогичных, если не тот же размер , их поверхностным зарядом 19; преимущество по сравнению с альтернативными методами проклейки.

Дзета – потенциал определяется как электростатический потенциал в плоскости сдвига 20, и вычисляется из скоростей частиц , когда они проходят поры 19. Дзета-потенциал измерения отдельных частиц, таким образом, дает понимание механизмов транслокации и поведения систем наночастиц в растворе, ценную информацию для будущего анализа наночастиц конструкций для целого ряда применений. Частица за частицей анализ такой природы позволяет также распространение и распределение дзета-потенциала ценностей среди населения выборки, чтобы изучить, что позволяет получить дополнительную информацию OКинетика реакции N (Однонитевый с двухцепочечной ДНК, например) и стабиль- частиц в растворе, который необходимо достичь.

Здесь мы описываем технику, которая обнаруживает и характеризует как немодифицированные и ДНК-модифицированных поверхностей SPP. Протокол, описанный в настоящем документе, относится к ряду неорганических и биологических наночастиц, но мы продемонстрировать процедуру с использованием ДНК-модифицированных поверхностей из-за их широкого круга применений. Методика позволяет пользователю различать мишени одноцепочечных и двухцепочечной ДНК на поверхности наночастиц, основанный на скорости транслокации частицы через систему пор и таким образом их дзета-потенциалы.

Protocol

1. Создание фосфатно-солевом буферном с Tween-20 (PBST), буфер Растворите PBS таблетку (0,01 М фосфатный буфер, 0,0027 М хлорид калия, 0,137 М хлорида натрия, рН 7,4) в 200 мл деионизированной воды (18,2 МОм). Добавляют 100 мкл (0,05 (об / об)%) Tween-20 до 200 мл буферного раствора в качестве поверхностно-активно…

Representative Results

Рисунок 1. Схематическое изображение процессов магнитной очистки и измерения TRPS. А) Пример магнитной очистки образца , начиная с образцом , содержащим избыток, несвязанный ДНК захвата зонда. B) TRPS из?…

Discussion

Расчет для дзета – потенциал был использован метод , основанный калибровки связано с работой по Arjmandi и др. 21. Продолжительность транслокацию частиц при их прохода по нанопор измеряется в зависимости от приложенного напряжения, используя среднее электрическое поле и части…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Авторы благодарят Izon Science Ltd за их поддержку. Работа выполнена при финансовой поддержке Европейской комиссии по научным исследованиям (PCIG11-GA-2012-321836 Nano4Bio).

Materials

Phosphate buffered Saline (PBS) Sigma Aldrich, UK P4417 1 tablet dissolved in 200 mL deionised water to make buffer solution. 
Tween-20 Sigma Aldrich, UK P1379 0.05% (v/v) in PBS buffer as a surfactant
Carboxyl polystyrene nanoparticles Bangs Laboratories, US CPC200 Nominal diamter of 220 nm, raw concentration of 1E12 particles/mL, specific surface charge of 86 µeq/g (equivalent to a surface charge density of 3.2E19 C/nm^2. 
Streptavidin coated nanoparticles Ademtech, France 3121 Batch had binding capacity of 4352 pmol/mg (188 nM theoretical DNA binding capacity) at a raw concentration of 1.1E11 particles/mL. 
Biotinylated oligonucleotides Sigma Aldrich, UK VC00001 Supplier spec: Reverse Phase 1 purification (0.05 Scale); Biotin modification at 3' end; Lyophilised powders reconstituted to 100 µM using deionised water, and diluted as required. Sequences: CP 5'ATGGTTAAACCTCAC
TACGCGTGGC[Btn]3'
Standard olignonucleotides Sigma Aldrich, UK VC00001 Supplier spec: Reverse Phase 1 purification (0.05 Scale); Lyophilised powders reconstituted to 100 µM using deionised water, and diluted as required. Sequences of DNA targets: Fully complementary – 5'GCCACGCGTAGTGAGGTTTAACCAT3', Middle binding – 5'GTAGTGAGGT3', End binding – 5'GTTTAACCAT3', Partially complementary overhanging – 5'GTGAGGTTTAACCAT
TTTTTTTTTTTTTTT3'.
Izon qNano Izon Science, NZ Inherent pressure on system of 47 Pa,
Izon Variable Pressure Module (VPM) Izon Science, NZ Each 'cm' of pressure is equivalent to approximately 1000 Pa. 
Polyurethane nanopore membranes Izon Science, NZ NP150 Analyte size range 60-480 nm, pore diameter of calculated to be 799 nm at a 45 mm stretch. 
Magrack 6 GE Healthcare, UK 28-9489-64
Sonic Bath Fisher Scientific, UK 10692353 80 Watts
Vortexer IKA, Germany 0003365000
Rotary Wheel  Labnet International, US H5500-230 V

References

  1. Alexander, C. M., Maye, M. M., Dabrowiak, J. C. DNA-capped nanoparticles designed for doxorubicin drug delivery. Chem Commun. 47 (12), 3418-3420 (2011).
  2. Billinge, E. R., Platt, M. Aptamer based dispersion assay using tunable resistive pulse sensing (TRPS). Anal Methods. 7 (20), 8534-8538 (2015).
  3. Bulyk, M. L. Protein Binding Microarrays for the Characterization of Protein-DNA Interactions. Adv Biochem Eng Biotechnol. 104, 65-85 (2007).
  4. Platt, M., Rowe, W., Knowles, J., Day, P. J., Kell, D. B. Analysis of aptamer sequence activity relationships. Integr Biol. 1 (1), 116-122 (2009).
  5. Ruiz-Hernández, E., Baeza, A., Vallet-Regí, M. Smart Drug Delivery through DNA/Magnetic Nanoparticle Gates. ACS Nano. 5 (2), 1259-1266 (2011).
  6. Murdock, R. C., Braydich-stolle, L., Schrand, A. M., Schlager, J. J., Hussain, S. M. Characterization of Nanomaterial Dispersion in Solution Prior to In Vitro Exposure Using Dynamic Light Scattering Technique. Toxicol Sci. 101 (2), 239-253 (2008).
  7. Hupfield, S., Holsaeter, A. M., Skar, M., Frantzen, C. B., Brandl, M. Liposome size analysis by dynamic/static light scattering upon size exclusion-/field flow fractionation. J Nanosci Nanotechnol. 6 (7), 3025-3031 (2006).
  8. Roberts, G. S., et al. Tunable pores for measuring concentrations of synthetic and biological nanoparticle dispersions. Biosens Bioelectron. 31 (1), 17-25 (2012).
  9. Roberts, G. S., Kozak, D., Anderson, W., Broom, M. F., Vogel, R., Trau, M. Tunable nano/micropores for particle detection and discrimination: scanning ion occlusion spectroscopy. Small. 6 (23), 2653-2658 (2010).
  10. Vogel, R., et al. Quantitative sizing of nano/microparticles with a tunable elastomeric pore sensor. Anal Chem. 83 (9), 3499-3506 (2011).
  11. Booth, M. A., Vogel, R., Curran, J. M., Harbison, S., Travas-Sejdic, J. Detection of target-probe oligonucleotide hybridization using synthetic nanopore resistive pulse sensing. Biosens Bioelectron. 45, 136-140 (2013).
  12. Kozak, D., Anderson, W., Vogel, R., Chen, S. Simultaneous size and ζ-potential measurements of individual nanoparticles in dispersion using size-tunable pore sensors. ACS Nano. 6 (8), 6990-6997 (2012).
  13. Kozak, D., Anderson, W., Vogel, R., Trau, M. Advances in Resistive Pulse Sensors: Devices bridging the void between molecular and microscopic detection. Nano Today. 6 (5), 531-545 (2011).
  14. Weatherall, E., Willmott, G. R. Applications of tunable resistive pulse sensing. Analyst. 140, 3318-3334 (2015).
  15. Willmott, G. R., et al. Use of tunable nanopore blockade rates to investigate colloidal dispersions. J Phys Condens Matter. 22 (45), 454116 (2010).
  16. Blundell, E. L. C. J., Mayne, L. J., Billinge, E. R., Platt, M. Emergence of tunable resistive pulse sensing as a biosensor. Anal Methods. 7, 7055-7066 (2015).
  17. Platt, M., Willmott, G. R., Lee, G. U. Resistive Pulse Sensing of Analyte-Induced Multicomponent Rod Aggregation Using Tunable Pores. Small. 8 (15), 2436-2444 (2012).
  18. Vogel, R., Anderson, W., Eldridge, J., Glossop, B., Willmott, G. A variable pressure method for characterizing nanoparticle surface charge using pore sensors. Anal Chem. 84 (7), 3125-3131 (2012).
  19. Blundell, E. L. C. J., Vogel, R., Platt, M. Particle-by-Particle Charge Analysis of DNA-Modified Nanoparticles Using Tunable Resistive Pulse Sensing. Langmuir. 32 (4), (2016).
  20. Hunter, R. J. . Zeta Potential in Colloid Science: Principles and Applications. , (1981).
  21. Arjmandi, N., Van Roy, W., Lagae, L., Borghs, G. Measuring the electric charge and zeta potential of nanometer-sized objects using pyramidal-shaped nanopores. Anal Chem. 84 (20), 8490-8496 (2012).
  22. Bacri, L., et al. Dynamics of colloids in single solid-state nanopores. J Phys Chem B. 115 (12), 2890-2898 (2011).
  23. Cabello-Aguilar, S., et al. Dynamics of polymer nanoparticles through a single artificial nanopore with a high-aspect-ratio. Soft Matter. 10 (42), 8413-8419 (2014).
  24. Billinge, E. R., Muzard, J., Platt, M. Tunable resistive pulse sensing as a tool to monitor analyte induced particle aggregation. Nanomater Nanosci. 1 (1), 11 (2013).
  25. Li, J., Fan, C., Pei, H., Shi, J., Huang, Q. Smart Drug Delivery Nanocarriers with Self-Assembled DNA Nanostructures. Adv Mater. 25 (32), 4386-4396 (2013).
  26. Billinge, E. R., Broom, M., Platt, M. Monitoring aptamer-protein interactions using tunable resistive pulse sensing. Anal Chem. 86 (2), 1030-1037 (2014).
  27. Gold, L., et al. Aptamer-Based Multiplexed Proteomic Technology for Biomarker Discovery. PLoS One. 5 (12), e15004 (2010).
  28. Park, S. -. J., Taton, T. A., Mirkin, C. A. Array-Based Electrical Detection of DNA with Nanoparticle Probes. Science. 295 (5559), 1503-1506 (2002).
check_url/kr/54577?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Blundell, E. L. C. J., Vogel, R., Platt, M. Determination of Zeta Potential via Nanoparticle Translocation Velocities through a Tunable Nanopore: Using DNA-modified Particles as an Example. J. Vis. Exp. (116), e54577, doi:10.3791/54577 (2016).

View Video