Summary

En murin model af gruppe B<em> Streptococcus</em> Vaginal Colonization

Published: November 16, 2016
doi:

Summary

Formålet med denne protokol er at efterligne menneskelige gruppe B Streptococcus (GBS) vaginal kolonisering i en musemodel. Denne fremgangsmåde kan anvendes til at undersøge værtsimmunresponser og bakterielle faktorer, der bidrager til GBS vaginal vedholdenhed, samt at teste terapeutiske strategier.

Abstract

Streptococcus agalactiae (gruppe B-Streptococcus, GBS), er en gram-positiv, asymptomatisk kolonisator af fordøjelsessystemet og vagina på 10 – 30% af voksne. I immunsvækkede individer, herunder nyfødte, gravide kvinder og ældre mennesker, kan GBS skifte til en invasiv patogen forårsager sepsis, gigt, lungebetændelse og meningitis. Fordi GBS er en førende bakterielt patogen af ​​nyfødte, er aktuel profylakse består af sene drægtighed screening for GBS vaginal kolonisering og efterfølgende peripartum antibiotisk behandling af GBS-positive mødre. Heavy GBS vaginal byrde er en risikofaktor for både neonatal sygdom og kolonisering. Desværre, lidt er kendt om værten og bakterielle faktorer, der fremmer eller tillader GBS vaginal kolonisering. Denne protokol beskriver en teknik til indførelse vedvarende GBS vaginal kolonisering anvendelse af en enkelt β-østradiol forbehandling og daglig prøvetagning til bestemmelse bakteriel load. It yderligere detaljer metoder til at administrere yderligere behandlinger eller reagenser af interesse og for at indsamle vaginal skyllevæske og reproduktive tarmkanalen væv. Denne musemodel vil fremme forståelsen af ​​GBS-vært interaktion inden for den vaginale miljø, hvilket vil føre til potentielle terapeutiske mål at kontrollere maternal vaginal kolonisering under graviditeten og for at forhindre transmission til sårbare nyfødte. Det vil også være af interesse at øge vores forståelse af generelle bakterielle-vært interaktioner i den kvindelige vagina.

Introduction

Streptococcus agalactiae, gruppe B-Streptococcus (GBS), er en indkapslet, gram-positiv bakterie, som ofte isoleret fra tarmen og urogenitale kanal af raske voksne. I 1970'erne, GBS opstået som den førende agent for smitsomme neonatal dødelighed, med over 7.000 tilfælde af neonatal sygdom årligt 1. Tidlig debut GBS sygdom (EOD) forekommer i de første timer eller dage af livet, opstår som lungebetændelse eller åndedrætsbesvær, og ofte udvikler sig til sepsis, mens sent debuterende sygdom (LOD) ensues efter flere måneder og præsenterer med bakteriæmi, som ofte forskud til meningitis 2. Som af 2002, Centers for Disease Control og Forebyggelse anbefaler universel screening for GBS vaginal kolonisering i slutningen drægtighed og intrapartum antibiotisk profylakse (IAP) til GBS-positive mødre 1. På trods af den reduktion af tidlig debut sygdom til ca. 1.000 sager i USA årligt på grund af IAP,GBS er fortsat den hyppigste årsag til tidlig debut neonatal sepsis, og sent debuterende forekomst forbliver upåvirket 1. Hvad enten i livmoderen, under fødslen, eller endda i sent forekommende tilfælde, neonatal eksponering for GBS kræver overlevelse, tværgående gennem en række værtsmiljøer og barrierer, immun unddragelse, og, i tilfælde af meningitis, passage af stærkt reguleret blod- hjernebarrieren 2. Opstrøms for disse virulente interaktioner inden den nyfødte er den indledende kolonisering af moderens vagina. Maternal GBS vaginal kolonisering varierer fra 8-18% i de udviklede lande og udviklingslande, med en anslået gennemsnit på 12,7% 3,4. GBS koloniseringen af vagina under graviditeten kan være konstant, intermitterende, eller forbigående mellem de enkelte kvinder 5. Interessant, er en maternal alder> 36 år i forbindelse med vedvarende kolonisering 6. Talrige biologiske og socio-økonomiske risikofaktorer for GBS vaginal koloniseringer blevet identificeret. Biologiske faktorer indbefatter gastrointestinale GBS kolonisering og fravær af Lactobacillus i tarmen. Imidlertid har ethnicity, fedme, hygiejne, og seksuel aktivitet også været forbundet med GBS vaginal vognen 7.

Selvom berygtet for at forårsage neonatale infektioner, GBS forårsager også en række maternelle infektioner både peripartum og postpartum. GBS transport forøges i kvinder med vaginitis 8 og, i nogle tilfælde kan endda være sygdommen enhed 9. Derudover kan GBS opstigning af den reproduktive tarmkanalen under graviditet resultere i intra-fostervand infektion eller chorioamnionitis 10. Øvrigt i op til 3,5% af graviditeter, GBS formidler på urinblæren at forårsage en urinvejsinfektion eller asymptomatisk bakteriuri 11. GBS bacteriuri under graviditet er forbundet med en øget risiko for intrapartum feber, chorioamnionitis, for tidlig fødsel, og premature hindebristning 12. Tilsammen er tilstedeværelsen af ​​GBS i vagina knyttet til infektioner af multiple værtsvæv, og evnen til at eliminere GBS fra denne niche er bydende nødvendigt for både maternal og neonatal sundhed.

Indtil for nylig var størstedelen af arbejdet undersøger GBS interaktioner med cervicovaginal tarmkanalen begrænset til in vitro celle modeller 13-15. Disse in vitro-forsøg har vist, bakterielle faktorer, der er vigtige for overholdelse, herunder overfladeproteiner sådan en pili og serin-rige gentagelser 17,18, samt to-komponent reguleringsordninger 15,19 og den globale transkriptionel respons vaginale epitel til GBS 19. Men for at kunne belyse host-mikrobe interaktioner i vagina, et solidt dyremodel er nødvendig. Tidlig arbejde viste, at GBS kan genvindes fra vagina af podede mus 20,21 og rotter <sup> 22 i både gravide og ikke-gravide betingelser. I 2005 blev kortvarig GBS vaginal kolonisering modelleret i mus for at undersøge effekten af en fag lytisk enzym til behandling af vaginal GBS over en 24 timers periode 23. Flere år senere blev en langsigtet GBS vaginal kolonisering musemodel udviklet til at studere vært og bakterielle faktorer, der styrer GBS vedholdenhed. Denne model har identificeret adskillige GBS faktorer, der bidrager til kolonisering, herunder overflade vedhæng 17,18 og GBS to-komponent systemer 19,24. Denne model har bidraget til at identificere værten reaktionsmekanismer 19,25 og blev brugt til at teste flere terapeutiske strategier, herunder immunmodulerende peptider 26 og probiotika 27. Denne protokol giver den nødvendige vejledning til at pode GBS i musen vagina og efterfølgende spore kolonisering og indsamle prøver til yderligere analyser.

Protocol

Alt dyr arbejde blev godkendt af Kontoret for Lab Animal Care på San Diego State University og udføres under anerkendte veterinære standarder. Hunmus, 8 år – 16 uger blev anvendt til udvikling af denne fremgangsmåde. 1. Fremstilling og intraperitoneal injektion af β-estradiol Mål ud β-østradiol (0,5 mg / mus) på afveje papir, mens iført egnede personlige værnemidler (PPE). ADVARSEL: β-estradiol kan optages gennem huden og slimhindeoverflader. Overfør β-estradi…

Representative Results

Under udviklingen af ​​denne model blev flere observationer gjort med hensyn faktorer, der påvirker varigheden af ​​GBS vaginal kolonisering. At bestemme, hvordan østrale stadium inokulering virkninger GBS bakteriel persistens blev mus iscenesat på dagen for inokulering via vaginal skyllevæske. Figur 1 illustrerer de fire faser af muse østrale cyklus, som bestemt ved våd-mount vaginal udskylningsvæske, en veletableret metode 29. Mus blev inddelt…

Discussion

For at fremme fremføringen af ​​forståelsen af ​​GBS interaktioner med både værten og andre mikrober i forbindelse med værten, er en dyremodel påkrævet. Dette arbejde beskriver de tekniske aspekter af indførelse af GBS vaginal kolonisering hos mus. Denne protokol opnår> 90% kolonisering af mus uden anvendelse af anæstetika til inokulering bakterier eller at indsamle prøver podning, immun-suppressants at muliggøre kolonisering, vaginal forvask, eller tilsætningsstoffer til at fortykke inokulum. De…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

We would like to thank the vivarium manager and staff at San Diego State University for support with animal husbandry. During this work, K.A.P. was supported by an ARCS scholarship and a fellowship from the Inamori Foundation. K.S.D. is supported by an R01 grant, NS051247, from the National Institutes of Health.

Materials

Sesame oil  Sigma Aldrich S3547-250ML
β-Estradiol  Sigma Aldrich E8875-1G CAUTION: Wear appropriate PPE. β-estradiol can be absorbed through the skin and mucosal surfaces. 
200 μL gel loading pipette tips  USA Scientific 1252-0610
Urethro-genital, sterile, calcium alginate swabs Puritan 25-801 A 50
CHROMagar StrepB DRG International SB282
Todd Hewitt Broth Hardy Diagnostics 7161C
18 G, 1.5 inch needles BD 305199
26 G, 0.5 inch needles BD 305111
10 mL syringes BD 309604
1 mL syringes BD 309659
0.45 μm PVDF syringe filters Whatman 6900-2504
Dulbecco's Phosphate-Buffered Salt Solution 1X Corning 21-031-CV

References

  1. Verani, J. R., McGee, L., Schrag, S. J. Prevention of perinatal group B streptococcal disease–revised guidelines from CDC. MMWR. Recomm. Rep. 59 (RR-10), 1-36 (2010).
  2. Maisey, H. C., Doran, K. S., Nizet, V. Recent advances in understanding the molecular basis of group B Streptococcus virulence. Expert Rev. Mol. Med. 10, e27 (2008).
  3. Regan, J. A., Klebanoff, M. A., Nugent, R. P. The epidemiology of group B streptococcal colonization in pregnancy. Vaginal Infections and Prematurity Study Group. Obstet. Gynecol. 77 (4), 604-610 (1991).
  4. Stoll, B. J., Schuchat, A. Maternal carriage of group B streptococci in developing countries. Pediatr. Infect. Dis. J. 17 (6), 499-503 (1998).
  5. Brzychczy-Wloch, M., et al. Dynamics of colonization with group B streptococci in relation to normal flora in women during subsequent trimesters of pregnancy. New Microbiol. 37 (3), 307-319 (2014).
  6. Manning, S. D., Lewis, M. A., Springman, A. C., Lehotzky, E., Whittam, T. S., Davies, H. D. Genotypic diversity and serotype distribution of group B streptococcus isolated from women before and after delivery. Clin. Infect. Dis. 46 (12), 1829-1837 (2008).
  7. Le Doare, K., Heath, P. T. An overview of global GBS epidemiology. Vaccine. 31 (Suppl 4), D7-D12 (2013).
  8. Jensen, N. E., Andersen, B. L. The prevalence of group B streptococci in human urogenital secretions. Scand. J. Infect. Dis. 11 (3), 199-202 (1979).
  9. Honig, E., Mouton, J. W., van der Meijden, W. I. Can group B streptococci cause symptomatic vaginitis?. Infect. Dis. Obstet. Gynecol. 7 (4), 206-209 (1999).
  10. Muller, A. E., Oostvogel, P. M., Steegers, E. A., Dorr, P. J. Morbidity related to maternal group B streptococcal infections. Acta Obstet. Gynecol. Scand. 85 (9), 1027-1037 (2006).
  11. Ulett, K. B., et al. Diversity of group B streptococcus serotypes causing urinary tract infection in adults. J. Clin. Microbiol. 47 (7), 2055-2060 (2009).
  12. Kessous, R., et al. Bacteruria with group-B streptococcus: is it a risk factor for adverse pregnancy outcomes?. J. Matern. Fetal. Neonatal. Med. 25 (10), 1983-1986 (2012).
  13. Jelìnková, J., Grabovskaya, K. B., Rýc, M., Bulgakova, T. N., Totolian, A. A. Adherence of vaginal and pharyngeal strains of group B streptococci to human vaginal and pharyngeal epithelial cells. Zentralbl. Bakteriol. Mikrobiol. Hyg. A. 262 (4), 492-499 (1986).
  14. Zarate, G., Nader-Macias, M. E. Influence of probiotic vaginal lactobacilli on in vitro adhesion of urogenital pathogens to vaginal epithelial cells. Lett. Appl. Microbiol. 43 (2), 174-180 (2006).
  15. Johri, A. K., et al. Transcriptional and proteomic profiles of group B Streptococcus type V reveal potential adherence proteins associated with high-level invasion. Infect. Immun. 75 (3), 1473-1483 (2007).
  16. Park, S. E., Jiang, S., Wessels, M. R. CsrRS and environmental pH regulate group B streptococcus adherence to human epithelial cells and extracellular matrix. Infect. Immun. 80 (11), 3975-3984 (2012).
  17. Sheen, T. R., Jimenez, A., Wang, N. Y., Banerjee, A., van Sorge, N. M., Doran, K. S. Serine-rich repeat proteins and pili promote Streptococcus agalactiae colonization of the vaginal tract. J. Bacteriol. 193 (24), 6834-6842 (2011).
  18. Wang, N. Y., et al. Group B streptococcal serine-rich repeat proteins promote interaction with fibrinogen and vaginal colonization. J. Infect. Dis. 210 (6), 982-991 (2014).
  19. Patras, K. A., et al. Group B Streptococcus CovR regulation modulates host immune signalling pathways to promote vaginal colonization. Cell. Microbiol. 15 (7), 1154-1167 (2013).
  20. Furtado, D. Experimental group B streptococcal infections in mice: hematogenous virulence and mucosal colonization. Infect. Immun. 13 (5), 1315-1320 (1976).
  21. Cox, F. Prevention of group B streptococcal colonization with topically applied lipoteichoic acid in a maternal-newborn mouse model. Pediatr. Res. 16 (10), 816-819 (1982).
  22. Ancona, R. J., Ferrieri, P. Experimental vaginal colonization and mother-infant transmission of group B streptococci in rats. Infect. Immun. 26 (2), 599-603 (1979).
  23. Cheng, Q., Nelson, D., Zhu, S., Fischetti, V. A. Removal of group B streptococci colonizing the vagina and oropharynx of mice with a bacteriophage lytic enzyme. Antimicrob. Agents Chemother. 49 (1), 111-117 (2005).
  24. Faralla, C., et al. Analysis of two-component systems in group B Streptococcus shows that RgfAC and the novel FspSR modulate virulence and bacterial fitness. mBio. 5 (3), e00870-e00814 (2014).
  25. Patras, K. A., Rösler, B., Thoman, M. L., Doran, K. S. Characterization of host immunity during persistent vaginal colonization by. Group B Streptococcus. Mucosal Immunol. 8 (6), 1339-1348 (2015).
  26. Cavaco, C. K., et al. A novel C5a-derived immunobiotic peptide reduces Streptococcus agalactiae colonization through targeted bacterial killing. Antimicrob. Agents Chemother. 57 (11), 5492-5499 (2013).
  27. Patras, K. A., Wescombe, P. A., Rösler, B., Hale, J. D., Tagg, J. R., Doran, K. S. Streptococcus salivarius K12 limits group B Streptococcus vaginal colonization. Infect. Immun. 83 (9), 3438-3444 (2015).
  28. Shimizu, S. Routes of administration. The Laboratory Mouse. Chapter. 32, 534-535 (2004).
  29. Caligioni, C. S. Assessing reproductive status/stages in mice. Curr. Protoc. Neurosci. 48, A.4I.1-A.4I.8 (2009).
  30. Furr, P. M., Hetherington, C. M., Taylor-Robinson, D. The susceptibility of germ-free, oestradiol-treated, mice to Mycoplasma hominis. J. Med. Microbiol. 30 (3), 233-236 (1989).
  31. Mosci, P., et al. Mouse strain-dependent differences in estrogen sensitivity during vaginal candidiasis. Mycopathologia. 175 (1-2), 1-11 (2013).
  32. Poisson, D. M., Chandemerle, M., Guinard, J., Evrard, M. L., Naydenova, D., Mesnard, L. Evaluation of CHROMagar StrepB: a new chromogenic agar medium for aerobic detection of Group B Streptococci in perinatal samples. J. Microbiol. Methods. 82 (3), 238-242 (2010).
  33. Carey, A. J., et al. Infection and cellular defense dynamics in a novel 17beta-estradiol murine model of chronic human group B streptococcus genital tract colonization reveal a role for hemolysin in persistence and neutrophil accumulation. J. Immunol. 192 (4), 1718-1731 (2014).
  34. Randis, T. M., et al. Group B Streptococcus beta-hemolysin/cytolysin breaches maternal-fetal barriers to cause preterm birth and intrauterine fetal demise in vivo. J. Infect. Dis. 210 (2), 265-273 (2014).
  35. Gendrin, C., et al. Mast cell degranulation by a hemolytic lipid toxin decreases GBS colonization and infection. Sci Adv. 1 (6), e1400225 (2015).
  36. Santillan, D. A., Rai, K. K., Santillan, M. K., Krishnamachari, Y., Salem, A. K., Hunter, S. K. Efficacy of polymeric encapsulated C5a peptidase-based group B streptococcus vaccines in a murine model. Am. J. Obstet. Gynecol. 205 (3), e1-e8 (2011).
  37. De Gregorio, P. R., Juárez Tomás, M. S., Nader-Macìas, M. E. Immunomodulation of Lactobacillus reuteri CRL1324 on Group B Streptococcus Vaginal Colonization in a Murine Experimental Model. Am. J. Reprod. Immunol. 75 (1), 23-35 (2016).
  38. Whidbey, C., et al. A streptococcal lipid toxin induces membrane permeabilization and pyroptosis leading to fetal injury. EMBO Mol. Med. 7 (4), 488-505 (2015).
  39. Santillan, D. A., Andracki, M. E., Hunter, S. K. Protective immunization in mice against group B streptococci using encapsulated C5a peptidase. Am. J. Obstet. Gynecol. 198 (1), e1-e6 (2008).
  40. Cheng, Q., Fischetti, V. A. Mutagenesis of a bacteriophage lytic enzyme PlyGBS significantly increases its antibacterial activity against group B streptococci. Appl. Microbiol. Biotechnol. 74 (6), 1284-1291 (2007).
  41. De Gregorio, P. R., Juárez Tomás, M. S., Leccese Terraf, M. C., Nader-Macìas, M. E. In vitro and in vivo effects of beneficial vaginal lactobacilli on pathogens responsible for urogenital tract infections. J. Med. Microbiol. 63 (Pt 5), 685-696 (2014).
  42. De Gregorio, P. R., Juárez Tomás, M. S., Leccese Terraf, M. C., Nader-Macìas, M. E. Preventive effect of Lactobacillus reuteri CRL1324 on Group B Streptococcus vaginal colonization in an experimental mouse model. J. Appl. Microbiol. 118 (4), 1034-1047 (2015).
  43. Carey, A. J., et al. Interleukin-17A Contributes to the Control of Streptococcus pyogenes Colonization and Inflammation of the Female Genital Tract. Sci. Rep. 31 (6), 26836 (2016).
  44. Hickey, D. K., Patel, M. V., Fahey, J. V., Wira, C. R. Innate and adaptive immunity at mucosal surfaces of the female reproductive tract: stratification and integration of immune protection against the transmission of sexually transmitted infections. J. Reprod. Immunol. 88 (2), 185-194 (2011).
  45. Boskey, E. R., Telsch, K. M., Whaley, K. J., Moench, T. R., Cone, R. A. Acid production by vaginal flora in vitro is consistent with the rate and extent of vaginal acidification. Infect. Immun. 67 (10), 5170-5175 (1999).
  46. Meysick, K. C., Garber, G. E. Interactions between Trichomonas vaginalis and vaginal flora in a mouse model. J. Parasitol. 78 (1), 157-160 (1992).
check_url/kr/54708?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Patras, K. A., Doran, K. S. A Murine Model of Group B Streptococcus Vaginal Colonization. J. Vis. Exp. (117), e54708, doi:10.3791/54708 (2016).

View Video