Summary

낮은 밀도 차 해마 신경 세포 문화

Published: April 18, 2017
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Summary

이 문서에서는 아교 세포 단층을 통해 반전 커버 글라스에 성장 저밀도 차 해마 신경 세포를 배양 프로토콜을 설명합니다. 신경 세포 및 아교 층 파라핀 왁스 비드에 의해 분리된다. 이 방법에 의해 성장 된 뉴런 고해상도 광학 이미징 및 기능 분석에 적합하다.

Abstract

배양 개별 신경 세포의 구조와 생리을 프로빙하는 능력은 신경 생물학 연구에 매우 중요하고 개별적인 세포 또는 정의 된 네트워크의 유전 화학적 조작 유연성을 허용한다. 그대로 뇌 조직에 비해 조작의 이러한 편의성은 감소 된 문화 시스템에 간단하다. 이 차 신경 세포의 분리 및 성장을위한 많은 방법이 존재하지만, 각각 자신의 한계가있다. 이 프로토콜은 아교 세포의 단층 위에 부유 커버 글라스에 저밀도 및 고순도 쥐 배아 해마 신경 세포를 배양하는 방법을 설명한다. 이 '샌드위치 문화는'기본 아교 단일 층에서 영양 지원을 허용하면서 뉴런의 인구의 독점적 인 장기 성장을 할 수 있습니다. 신경 세포가 충분한 연령, 성숙도의 경우, 신경 세포의 커버 슬립은 아교 요리의 아웃을 뒤집어 및 이미징 또는 기능 분석에 사용할 수 있습니다. 뉴런 g이 방법으로 rown은 일반적으로 몇 주 동안 생존하고 광범위한 아버, 시냅스 연결 및 네트워크 속성을 개발한다.

Introduction

뇌는 신경 세포의 복잡한 네트워크로 구성되어있다. 네트워크 동작 및 뇌 기능 개별 뉴런의 기여는 자신의 분자 조성 및 생리 학적 특성의 동요를 선택적으로 변경하여 조사 할 수있다. 개별 뉴런의 유전 및 화학 조작은 후자의 세포 이질성과 복잡성에 의해 방해 그대로 뇌 조직에 비해 배양 신경 세포에서 틀림없이 더 쉽다. 배양 뉴런은 잘 정의 축삭 및 수상 아버 개발 서로 광범위한 시냅스 연결을 형성한다.

성인 동물 또는 신경계의 기타 영역에서 신경 세포 배양이 가능하지만, 배아 해마 배양 자주 정의 피라미드 세포 집단 및 상대적으로 낮은 밀도 신경교 (1, 2)로 인해 바람직하다. 배양에 저밀도로 성장 해마 뉴런이다 특히 AME세포 내 현지화, 단백질 인신 매매, 신경 극성 시냅스 개발 연구에 네이블. 배양 신경 세포는 광범위 시냅스 3, 4, 5, 6 분 방법을 연구에 사용되었다. 출생 후 생존하지 않는 글로벌 유전자 삭제와 마우스의 신경 세포 배양 준비는 특정 유전자 (7)의 세포와 시냅스 역할을 공부에 특히 유용되고있다.

뇌에서와 같이 배양 된 해마 신경 아교 세포의 영양 지원에 따라 달라집니다. 이것은 그들의 문화를 복잡하게하고,이 지원이 공급하는 여러 가지 방법의 개발을 주도하고있다. 하나의 일반적으로 사용되는 방법은 교세포 8, 취득한 HIPP로부터 오염물 교세포를 허용하는 단일 층에 직접 신경 도금 포함ocampal 조직 증식 및 신경 세포 (9) 아래에 단일 층을 형성한다. 이 방법은 약간의 성공을 발견 하였지만, 결과 신경 세포 배양의 불순물 촬상 실험 불리하다. 신경 세포 배양의 일반적으로 사용되는 또 다른 방법은 전체 층 폐해 급지 아웃두고 대신 정의 된 성장 배지 (10)의 형태의 영양 지원을 제공하는 것이다.

여기, 우리는 "샌드위치"또는 신경 문화 2, 11의 "은행"방법을 설명합니다. 이 방법은 파라핀 왁스 비드로 분리 아교 세포 단층 위에 부유 커버 글라스에 해마 뉴런 도금 포함한다. 이 기본 아교 단일 층에서 영양 지원을 허용하면서 아교 세포를 오염없이 뉴런의 동질적인 인구의 장기 문화를 용이하게합니다. 신경 세포가 충분한 연령, 성숙도의 경우,신경 세포의 커버 슬립은-뒤집어 밖으로 아교 요리 및 이미징 또는 기능 분석에 사용할 수 있습니다.

Protocol

모든 실험 및 실험 동물을 사용하여 프로토콜 대학 매니토바의 동물 윤리위원회의 승인 및 동물 관리에있는 캐나다 협의회의 지침을 준수 있었다. 악기, 완충제 및 솔루션 1. 제조 모든 절제 장비, 유리 파스퇴르 피펫, 피펫 팁, 필터 장치, 및 탈 이온수를 오토 클레이브에 의해 멸균한다. 탈 이온수 및 필터 소독에 스톡 포도당 용액,을 20 % (1.1 M / V w) 준비한다. …

Representative Results

주 신경 세포 배양액의 "샌드위치"방법에있어서, 해마 신경 세포 (도 3) 파라핀 비드 (도 2)에 의해 분리 된 아교 세포 (도 1)의 침대에 성장한다. 이 신경 세포가 선택적으로 최소한의 아교 세포 오염 커버 글라스에 성장하지만, 조직 배양 접시에 성장 교세포에서 적절한 영양 지원을받을 것을 보장한다. 일반적으로, 뉴런> 3주?…

Discussion

배양 신경 세포의 "샌드위치"방법은 다른 곳에서 잘 설명 하였지만 2, 11, 그것을 채택하고자하는 연구자에 대한 불만으로 이어질 수 있습니다 만 텍스트를 설명하는 것은 매우 어려운 프로토콜에 걸쳐 여러 단계가있다.

아교 문화, 커버 슬립 준비 및 신경 세포의 문화 및 유지 보수 :이 방법은 세 가지 흐름으로 나눌 수 있습…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

이 작품은 CIHR의 MOP-142209 TJS에 의해 지원되었다.

Materials

Dissection Instruments
Micro Dissecting Scissors Roboz RS-5910
Micro Dissecting Spring Scissors Roboz RS-5650
Micro Dissecting Spring Scissors Roboz RS-5605
Dumont Forceps (#5) Roboz RS-5045
Dumont Forceps (#PP) Roboz RS-4950
Name Company Catalog Number Comments
Tissue Preparation
Trypsin (2.5%) Gibco 15-090-046
Trypsin-EDTA (0.25%) Gibco 25-200-072
Swinnex Filter Holder, 25 mm EMD Millipore SX0002500 Used as cell strainer. Assemble first with filter and autoclave
Isoflorane Pharmaceutical Partners of Canada Inc. CP0406V2
Hemocytometer Hausser Scientific 1492
Grade 105 Lens Cleaning Tissue GE Healthcare 2105-841 Used as cell strainer. Assemble first in filter holder and autoclave
Glass Pasteur pipettes with cotton filter VWR 14672-412
HEPES (1 M) Gibco 15-630-080
Hank's Balanced Salt Solution without Calcium, Magnesium, Phenol Red (HBSS, 10x) Gibco 14-185-052
Glass Pasteur pipettes VWR 14672-380
Deoxyribonuclease I from bovine pancreas (Dnase) Sigma-Aldrich DN25-100mg
Butane bunsen burner Wall-Lenk Mfg. Co. Model 65
Centrifuge Eppendorf 5810R
Name Company Catalog Number Comments
Tissue Culture
Penicillin-Streptomycin (10,000 U/mL) Gibco 15-140-122
Petri Dish (100 mm) Fisher FB0875712
Petri Dish (60 mm) Fisher FB0875713A
Horse Serum Gibco 16050-122 Can be used in place of BGS, but each lot must be tested due to inter-lot variation. Heat-inactivation of serum is recommended.  
Sodium Hydroxide Fisher Scientific S318-1
Sodium Pyruvate Sigma-Aldrich P2256
Minimum Essential Medium (MEM) Gibco 11-095-080
Neurobasal Medium Gibco 21-103-049
L-Glutamine (200 mM) Gibco 25-030-081
GlutaMAX Supplement Gibco 35050061 Can be used in place of L-Glutamine in the NBG medium
Culture Dish (60 mm) Corning, Inc 353002
Culture Flasks (75 cm^2) Greiner Bio-One 658170
Cytarabine (Ara-C) Sigma-Aldrich C3350000
D-(+)-Glucose Sigma-Aldrich G8270
Bovine Growth Serum (BGS) HyClone SH3054103 Heat-inactivation is recommended before use.
B27 Supplement (50x) Gibco 17-504-044
Dimethyl Sulfoxide (DMSO) Sigma-Aldrich D8418-100ml
Cryogenic Vials VWR 89094-806
DL-2-Amino-5-phosphonopentanoic acid (APV) Sigma-Aldrich A5282
Name Company Catalog Number Comments
Coverslip Preparation
Sodium tetraborate decahydrate (borax) Sigma-Aldrich B9876-1KG
Poly-L-Lysine Hydrobromide Sigma-Aldrich P2636
Histoplast Paraffin Wax Fisher 22-900-700
Gravity Convection Oven VWR 89511-404 Used for alternative coverslip cleaning method discussed in protocol
Ultrasonic Bath (Sonicator) Fisher Scientific 15337400
Nitric Acid Anachemia 62786-460
Ceramic Staining Racks Thomas Scientific 8542E40 Used for alternative coverslip cleaning method discussed in protocol
Coverslips Glaswarenfabrik Karl Hecht GmbH 1001/18 Manufacturer is very important, as neurons do not adhere well to lower quality glass 
Boric Acid Sigma-Aldrich B0252
Name Company Catalog Number Comments
Miscellaneous
Sterile Syringe Filters VWR 28145-477 Used with BD syringe for filter-sterilization
Syringe  BD 302832 Used with VWR sterile syringe filters for fliter-sterilization
Water Bath Fisher Scientific 15-460-16Q
Inverted Microscope Olympus CKX41
15 mL Conical Sterile Centrifuge Tubes ThermoScientific 339650
50 mL Conical Sterile Centrifuge Tubes ThermoScientific 339652

References

  1. Banker, G. A., Cowan, W. M. Rat hippocampal neurons in dispersed cell culture. Brain Res. 126, 397-425 (1977).
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  3. Adamantidis, A., et al. Optogenetics: 10 years after ChR2 in neurons–views from the community. Nat Neurosci. 18, 1202-1212 (2015).
  4. Ho, V. M., Lee, J. A., Martin, K. C. The cell biology of synaptic plasticity. Science. 334, 623-628 (2011).
  5. Huganir, R. L., Nicoll, R. A. AMPARs and synaptic plasticity: the last 25 years. Neuron. 80, 704-717 (2013).
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  7. Varoqueaux, F., et al. Neuroligins determine synapse maturation and function. Neuron. 51, 741-754 (2006).
  8. Huettner, J. E., Baughman, R. W. Primary culture of identified neurons from the visual cortex of postnatal rats. J Neurosci. 6, 3044-3060 (1986).
  9. Lester, R. A., Quarum, M. L., Parker, J. D., Weber, E., Jahr, C. E. Interaction of 6-cyano-7-nitroquinoxaline-2,3-dione with the N-methyl-D-aspartate receptor-associated glycine binding site. Mol Pharmacol. 35, 565-570 (1989).
  10. Brewer, G. J., Torricelli, J. R., Evege, E. K., Price, P. J. Optimized survival of hippocampal neurons in B27-supplemented Neurobasal, a new serum-free medium combination. J Neurosci Res. 35, 567-576 (1993).
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check_url/kr/55000?article_type=t

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Cite This Article
Roppongi, R. T., Champagne-Jorgensen, K. P., Siddiqui, T. J. Low-Density Primary Hippocampal Neuron Culture. J. Vis. Exp. (122), e55000, doi:10.3791/55000 (2017).

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