프로토콜은 iCRISPR 플랫폼을 사용 hPSC 돌연변이 라인을 생성하고 설명하는 글루코스 응답 형 β 세포로 hPSCs 차별화. hPSC 지시 분화와 게놈 편집 기술을 결합하면 인간 발달 및 질병 진행의 계보 결정의 역할의 체계적인 분석을위한 강력한 플랫폼을 제공합니다.
자기 갱신 또는 인간 다 능성 줄기 세포를 분화 (hPSCs)에 질의 유전자 기능은 인간 발달을 이해하고 접시에 질병 메커니즘을 해부으로 가치있는 플랫폼을 제공합니다. 이 잠재적 인 응용 프로그램을 활용하는 것은 밀접하게 자신의 생체 대응 요점을 되풀이 질환 관련 세포 유형을 생산하기 위해 질병 관련 유전자 hPSC 돌연변이뿐만 아니라 체외 hPSC 차별화 프로토콜을 생성하는 효율적인 게놈 편집 도구가 필요합니다. iCRISPR라는 hPSCs위한 효율적인 유전자 편집 플랫폼은 AAVS1 궤적에 Cas9 발현 카세트의 TALEN 매개 타겟팅을 통해 개발되고있다. 여기서, 화학적으로 정의 된 배지 및 공급없는 상태에서 배양 된 세포를 사용하여 유도 Cas9 hPSC 라인의 생성을위한 프로토콜을 설명한다. N을 통해 하나의 유전자 녹아웃 또는 hPSCs의 정확한 유전 적 변화에 대한 iCRISPR 시스템 사용에 대한 자세한 절차,온 – 동종 (NHEJ)에 가입 종료 또는 동성 지시 수리 (HDR) 템플릿을 사용하여 정확한 염기 변화를 통해 각각 포함되어 있습니다. 이러한 기술적 인 절차는 설계, 생산의 설명 및 CRISPR 가이드 RNA를 (gRNAs)의 형질을 포함한다; T7E1 또는 RFLP 분석에 의한 CRISPR 돌연변이 속도의 측정; 설립과 클론 돌연변이 라인의 검증 및. 마지막으로, 생체 췌장 배아 발달에 모방에 의한 포도당 응답 췌장 β와 같은 세포로 hPSC 차별화 우리 연대기 절차. 감독 hPSC 차별화와 iCRISPR 기술을 결합하면 췌장 개발과 당뇨병 질병 메커니즘에 대한 우리의 이해를 촉진하는 유전자 기능의 체계적인 검사를 할 수 있습니다.
인간 만능 줄기 세포 (hPSCs는) 할 수있는 기능이 모두 자기 갱신과 세 개의 배아 생식 계통의 모든 파생 상품에 상승을 제공합니다. 이들은 인간 개발 환경에서 세포 과정 요점을 되풀이하기위한 고유 한 플랫폼으로서 작용하여 세포 대체 요법, 질병 모델링 귀중한 자원을 제공한다. 또한 스케일 러블 고 처리량 분석에 대한 실험 세포의 공급원이다. 효율적인 유전자 조작 도구의 부족 및 배양 접시에 배아 복잡한 발육 단계 recapitulating 어렵다는 : 그러나, 진보로 인해 두 가지 문제를 한정하고있다.
유전 적 변형은 정상 개발 및 질병의 유전자 기능을 연구하는 필수적인 도구입니다. 상동 재조합을 통해 접근을 대상으로 고전적인 유전자를 입증하면서 그러나, 마우스 배아 줄기 세포 (mESCs)에서 유전자 기능을 해부하는 강력한 도구 하나,이 방법이 될 수 있습니다hPSCs 2, 3에 적용 할 때 매우 비효율적이었다. 징크 핑거 뉴 클레아 제 (ZFNs), 전사 활성제와 같은 이펙터 뉴 클레아 제 (TALENs) 및 클러스터 정기적으로 interspaced 짧은 회문 반복 (CRISPR) / CRISPR은 관련을 포함하여 실험실 사용에 자연 프로그램, 사이트 별 클레아의 최근 활발한 가입 (CAS) 시스템 (4)은 유전체 공학 hPSCs 포함한 유기체 및 세포주의 넓은 범위에서 훨씬 쉽게 작업이 될 것을 의미한다. 이러한 유전자 편집 도구 등 Cas9 효소로서 키메라 클레아 어느 비 – 상동 활성화 정확한 위치에서 이중 가닥 나누기 (DSBs)을 유발하는 내인성 DNA 수리 장치를 트리거하여 유전 적 변형의 전체 범위를 허용 할 수 있다는 사실을 활용 (NHEJ)에 가입 종료하거나 상동 – 감독 수리 (HDR). 두기구는 eith을 유도하여 유전자 조작을 위해 이용 될 수있다어 임의 삽입과 삭제 돌연변이 (삽입과 삭제, NHEJ을 통해)은 인간의 질병 모델링을위한 환자 돌연변이 요점을 되풀이하거나 유전자 치료를위한 질병을 유발하는 돌연변이를 해결하기 위해, 유전자 대립 유전자, 또는 (HDR 통해) 정확한 염기 치환을 무효화 프레임 이동 돌연변이를 만드는 방법 .
DNA 대상 인식을 지정 DNA 절단 및 가변 CRISPR의 RNA (crRNA) 및 트랜스 활성화 (tracrRNA) 양면 인쇄에 필요한 일정 RNA 유도 Cas9 효소 : CRISPR / 카스 매개 게놈 엔지니어링은 두 가지 구성 요소가 필요합니다. crRNA / tracrRNA 듀플렉스보다 효율적 5, 6, 7 일 밝혀졌다 단일 키메라 가이드 RNA (gRNA)로 대체 될 수있다. CRISPR / Cas9 시스템은 대부분의 유기체 실험 세포주 Cas9 및 gRNA 크게 변동의 전달 및 발현에 적응해야되었지만 상기 아치하도록 최적화 될hPSCs 8 등 많은 시스템에서 이브 효율적인 게놈 편집. 효율적인 게놈 편집 플랫폼, iCRISPR는 hPSCs 5 년에 설립되었습니다. 이 시스템에서, TALEN 중재 접근 방식은 (TRE를 역 테트라 사이클린 제어 transactivator (M2rtTA)과 테트라 사이클린 응답 요소와 다른와 트랜스, 하나의 대립 유전자의 "유전자 안전한 항구의 궤적"AAVS1의 두 대립 유전자를 대상으로 사용되어왔다 )이 hPSCs에서 Cas9 (iCas9의 표현)를 구동. 설립 클론 라인 (iCas9 hPSCs)에서 Cas9은 매우 독시사이클린 처리로 표현된다. 한편, 인해 작은 크기 (100 NT), 하나 또는 여러 개의 gRNAs 쉽게 높은 효율로 iCas9 hPSCs에 전달 될 수 있으며, HDR-매개뿐만 아니라, 효율적인 NHEJ 매개 유전자 중단을 가능하게, 사이트 별 분열에 대한 Cas9을 안내 할 수 있습니다 짧은 단일 가닥 DNA (ssDNA를) 기증자 템플릿의 존재 정확한 염기 수정. iCRISPR 시스템이 될 수 있습니다성공적 9 중요한 발달 유전자 5 biallelic (동형 접합성 또는 이형 화합물) 또는 이형 기능 상실 돌연변이 질병 모방 hPSC 라인의 패널을 생성하는 데 사용된다. 그룹의 개수에 hPSCs CRISPR / CAS를 이용한 효율적인 유전자 편집보고되었지만, 성공은 기술적으로 숙련 실험실 소수의 제한 남아있다. iCRISPR 플랫폼은 상이한 기술 수준의 연구자 루틴 유전자 편집 효율적인하면서도 간단한 해결책을 제공하며, 이는 이미 기 등 9, 10, 11, 12에 의해 출판 다수의 연구에 사용되었다. 이 방법은 또한 상기 dCas9-KRAB (13)의 식에 기초하여 유도 침묵으로 확장되었다.
게놈 편집 테크노의 진행과 함께말의 뜻, 상당한 개선도 hPSC 유지 관리 및 감독 차별화를 달성했다. hPSCs을위한 배양 조건은 조사 된 마우스 배아 섬유 아세포 (IMEF) 공급에 의존하는 정의 된 세포 외 기질 구성 요소에 대한 공급이없는 상태로, 복잡한 미디어 제제에서이 화학적으로하는 매체 조건 (14)로부터 진화했다. 이러한 개선은 IMEF 준비와 녹아웃 혈청 교체 부품의 배치 별 차이로 인해 hPSCs의 변동성을 감소하고, 따라서 hPSC 차별화에 대한 더 많은 재생 가능한 환경을 제공하고있다. 한편, 높은 처리량 약물 스크리닝에서 인간 배아 발달에 적용 경로뿐 아니라 발견 시그널링 향상된 기술이 향상 분화 프로토콜 15, 16, 17, 18을 이끌어왔다. 이러한 프로토콜은 더 밀접하게 비브에서 모방오 발달 단계는 밀접하게 자신의 생체 대응 요점을 되풀이 세포 유형을 생성합니다. 췌장 혈통에 hPSC 차별화를 들어, 초기 프로토콜은 비교적 잘하지만 결국 미성숙 한 태아의 표현형의했다 포도당 자극에 제대로 반응 polyhormonal β 세포를 발생 초기에 췌장 개발을 모방. 최근의 진보 16, 17, 19, 20 등의 형성 및 monohormonal β 세포의 더 성숙 후술 사건을 조사 할 수있게된다 글루코스 응답 췌장 β 형 세포의 생성을 허용하고있다.
여기서는 상세히 글루코스 응답 pancr 향해 hPSC 기반 체외 분화 플랫폼으로 iCRISPR 시스템을 조합함으로써 췌장 발달의 연구 게놈 변성 라인의인가eatic β와 같은 세포. 개선 된 hPSC 차별화 프로토콜과 강력한 게놈 편집 도구의 결합은 질병의 인과 관계 검증에 대한 증가하는 수요를 충족하는 데 필요한 속도와 규모를 제공 할뿐만 아니라 정상적인 개발 및 질병 (9)을 기본 전사 컨트롤에 더 기계적인 조사에 대한 정교한 유전자 조작을 할 수 있습니다뿐만 아니라, .
생성 돌연변이 라인을위한 시간 고려 사항
게놈 편집 CRISPR / 카스 시스템을 기반으로 최근의 접근 방식이 성공적으로 타겟팅 주도하고 있지만,보다 효과적인 보편적 인 플랫폼은 유전자 기능 분석 대규모 바람직 할 것이다. iCRISPR 플랫폼은 관심 5, 9의 유전자에 돌연변이를 소개하는 신속하고 효율적인 방법을 제공합니다. 우선, PCR 기반 gRNA 합성법은 시간 소모적 클로닝 단계없이 하루에 배열 형식 gRNAs 수백의 생산을 허용한다. 둘째, iCas9 hPSCs에서 독시사이클린 – 유도 Cas9 식으로 gRNA 형질 관련된 공정 작업의 최소량을 필요로하며, 따라서, 여러 gRNA 타겟팅 실험을 동시에 수행 될 수있다. 우리의 시스템의 분석을 달성 셋째, 높은 타겟팅으로 인해 효율성 ~ 24 – 형질 전환 gRNA 당 48 콜로니 suff해야한다효율이 목표 궤적에 따라 달라질 수 있지만 icient는 단일 유전자에 대해 여러 monoallelic 및 biallelic 돌연변이 라인을 설정합니다. 훈련 된 개인 기계적 단번에 384 콜로니 (4 × 96 웰 플레이트)을 선택하는 해부 현미경 ~ 4 시간이 소요되는 것이 가능하기 때문에, 숙련 된 개인은 내 12 유전자에 영향을 미치는 돌연변이 라인을 생성하는 것으로 할 수있다 12 개월. 단시간 hPSC 돌연변이 유선형 생성 발달 과정 (9)을 조절, 서로 상호 작용하는 전사 인자 및 / 또는 신호 경로 성분의 배열을 체계적으로 분석 할 수있다. 또한, 효율적인 다중 유전자 타겟팅은 유전 적 상호 작용을 기본 복잡한 인간의 특성을 조사에 문을 엽니 다.
정확한 유전 수정의 생성
쉽게 접근 할 수 체세포 유형에서 환자 맞춤형 iPSCs의 유도 의 질병 관련 세포 유형으로 분화 질병 관련 돌연변이의 기능 검증을위한 좋은 기회를 제공합니다. 그러나, 개인 간의 유전 적 배경에서 상당한 변화로, 환자의 iPSCs 사이의 건강한 기증자로부터 직접 비교 한 배경 효과에서 질병 표현형을 구별 할 수 없습니다 수 있습니다. 따라서, 위로 야생형 서열 질환 돌연변이를 정정하여 동질 제어 iPSCs를 생성하거나 타인 25, 26에 의해 제안 된 바와 같이, 야생형 hPSC 배경으로 환자의 특정 돌연변이를 도입하는 것이 필요하다. 기능 상실 (NULL) 돌연변이에 더하여, 하나는 더욱 정확하게 hypermorphic hypomorphic, neomorphic 또는 우성 음성 환자 포함 hPSCs에서 내인성 궤적으로 환자 별 서열 변화의 도입을 통해 질병 메커니즘을 해부 수도 돌연변이.
이 NHEJ 매개 DNA 수선보다 훨씬 덜 효율적 때문이다. 수리 템플릿의 존재 DSB 수리를 위해 HDR 고용 정확한 유전자 변형 ntent "> 환자 특이 돌연변이 약물 선택 카세트와 상 동성 암을 포함하는 도너 플라스미드 가장 널리 사용되는 Cre 호텔-에 loxP 및 FLP-FRT 시스템 남겨진 동안 이전 수리 서식이 사용되고있다. 약물 선택 및 환자 특이적인 변이의 확인 후, 제 2 단계는 일반적. 약물 선택 카세트를 제거하는 데 필요한 내인성 유전자좌 잔류 시퀀스는 피기 백 트랜스포존의 사용은 약물의 선택, 카세트 (27)의 완벽한 제거를 위해 사용할 수있다.보다 최근에, 짧은 ssDNA를 템플릿이 또한 설계 DNA 엔도 뉴 클레아 28 효율적인 HDR을 지원하기 위해 도시되어있다. 도너 플라스미드에 비해 , ssDNA를 직접 합성하고, 따라서 많은 시간이 소요되는 복제 단계를 회피 할 수있다. 여기서, 보유 될도시 욕실, 그 공동 형질 상동 – 감독 수리를 유도하는 gRNA 및 ssDNA를 템플릿을 iCRISPR 높은 효율로 특정 염기 변형을 도입하는 데 사용할 수 있습니다로. 이것은뿐만 아니라 인간 질환 돌연변이를 모델링하고 잠재적으로 치료 학적 개입이 질환 – 관련된 돌연변이를 보정하기위한 단백질의 기능적 도메인 내 필수적인 뉴클레오티드의 역할을 절개하지 중요하다. 때문에 각 당뇨병과 같은 복잡하고 multigenic 질병 모델링, 여러 시퀀스 변형과 관련된 감수성 유전자좌의 많은 수의 유전에 대한 도전이었다. iCRISPR 플랫폼은 대립 시리즈의 급속한 발전 또는 multiplexable 유전자 타겟팅 관대 같이, 개별적으로 또는 동종의 배경과 함께, 다수의 질병 – 관련 궤적의 조사를 용이하게 할 수있다.효율성 오프 대상 효과를 타겟팅
우리는이 T7E1 및 RFLP 분석 결과 및 시퀀싱에 의해 식별 돌연변이 라인의 수 사이의 상관 관계를 발견 하였다. 이 클론 라인의 설립과 평행이 분석을 수행의 중요성을 강조한다. 대부분 단일 유전자 타겟팅 실험에서 유전자 좌위에 따라 달라질 수 달성 타겟팅 효율이 20 동안 – 클론의 60 %가 두 대립 유전자가 돌연변이가 발견되었다 (프레임 이동 돌연변이를 포함하고 프레임 내의) 9. 다중 유전자 타겟팅이 수행 된 경우, 5 ~ 10 %의 효율 트리플 biallelic 돌연변이 클론 5를 얻었다. 10 % – 5 여러 유전자 ssDNA를 매개 HDR은 노크 1에서부터 클론 동형 획득 효율과 정확한 유전 적 변형을 수득 하였다. 같은 gRNA 대상 시퀀스를 공유하지 않는 잠재적 인 오프 대상 사이트에 hPSCs에 CRISPR / 카스 어떤 돌연변이를 작업 아직 검출한다아가씨 = "외부 참조"> 5, 9, 12. 최근의 연구에서 수행 전체 게놈 시퀀싱은 CRISPR / 카스 (29)를 사용하여 생성 된 클론 hPSC 라인에 상당한 오프 대상 돌연변이를 식별하는 데 실패했습니다. 그러나 오프 – 타겟 효과 부위에서 돌연변이에 의해 도입 된 표현형을 교란의 잠재적 효과를 최소화하기 위해, 동일한 유전자 내에서 상이한 서열을 타겟팅 적어도 두 개의 독립적 gRNAs 독립된 돌연변이 라인을 생성하기 위해 제안된다. 다열 관찰 유사한 표현형은 주로 표현형 오프 – 타겟 효과에서 유래한다는 가능성을 배제 할 수있는 다른 gRNAs을 이용하여 생성.
공급 장치에 의존하는 독립적 인 문화 타겟팅 대
hPSC 문화에 대한 전통적인 방법은 동물의 자극을 포함 혈청 또는 혈청 교체를 포함하는 배지에서 피더 세포에 자신의 유지 보수 및 확장을 포함예컨대 소 혈청 알부민 ucts을. 피더 세포, 혈청, 혈청 교체 및 모든 알부민은 복잡하고 정의되지 않은 성분을 함유하고 상당한 배치 변동성을 보여줍니다. 피더 – 무료 및 화학적 조건에 적응하는 것은 크게, 더 중요한 것은, 분화 실험의 일관성을 증가 hPSC의 유지 보수를 위해 노력을 줄일 수 있습니다. 현재, 완전히 정의 배양 조건 (30)에 배양 hPSCs에 게놈 편집 절차를 설명 거의 연구가있다. 우리는 gRNA 형질 전환 및 클론 증착 장치에 의존하는 배양 조건에 비해 공급이없는 조건에서 수행했을 때 효율성을 대상으로 높은 CRISPR을 발견했다. 우리는이 식민지 형성을위한 형질 전환 및 단일 세포 파종 후 증가 된 세포 생존에 기인한다고 믿는다. 또, 피더 세포는 이전시켜 형질 전환 효율을 저하 형질 전환 시약을 격리시키는 것으로 나타났다.
결합감독 차별화와 게놈 편집
이전 분화 프로토콜 인슐린 양성 세포의 작은 분획을 수득 한 대다수의 polyhormonal 있었다 태아 내분비 세포 (23)를 닮았다. 최근의 진보는 더 성숙 글루코스 응답 베타 형 셀 16, 17, 19, 20로 hPSCs의 분화를 허용하고있다. 우리는 일상적으로 HUES8 hPSCs (9)를 사용하여 75 % 이상 최종 내배엽 세포, 40 % PDX1 + NKX6.1 + 췌장 전구 세포, 그리고 20 %의 NKX6.1 + CPEP + 포도당 응답 베타 – 유사 세포를 얻을 수 있습니다. iCRISPR 게놈 편집 시스템과 결합이보다 견고한 분화 프로토콜 췌장 분화 췌장 전구 세포와 내분비 단계에 중요하다 전사 인자의 분석을 용이하게하고있다. 이 것그것은 가능한 미래 연구에서 당뇨병 9 기초 메커니즘으로 기능 검증 및 조사 후보 질환 유전자의 다수를 조사.
미래 응용 프로그램 또는 방향
등을 통해 기자 대립 유전자의 생성과 같은보다 복잡한 유전자 변형의 발생을 용이하게 할 수있다 우리의 iCRISPR 시스템 긴 기증자의 DNA 템플릿 인코딩 단백질 태그 또는 형광 기자 (12)를 사용하여 표적 유전자를 HDR은 중재. 우리 인해 시스템 효율을 달성 타겟팅 높은 CRISPR에 그렇게 도시 한이 프로세스는 또한 약물의 선택 (12) 없이도 hPSCs 수행 될 수있다. 또한, 표적 유전자는 다중화 우리는 직장 (31)의 첫번째 예를 판단 우리의 최근의 연구에서와 같이, 기본 복합 인간 질병 유전자의 상호 작용을 조사 할 수있다. ICRISPR 또한 프로모터 및 인핸서와 같은 조절 영역, 결실을 생성하여 하나의 RNA 비 암호화 유전자 또는 유전자 규제 제어를 이해하는데 사용될 수있다. 효율적 iCRISPR를 사용 규제 돌연변이를 생성하기 gRNAs을 포함하는 DNA 결합 단백질의 결합 부위를 방해하도록 설계되지만 기저 전사 기계 또는 조직 – 특이 적 전사 인자로 제한되지 않을 수있다. ssDNA를 템플릿 매개 HDR은 특정 단백질 – 결합 부위를 돌연변이를 위해 사용될 수있다. 마지막으로, 체외 분화 프로토콜과 결합 될 때 더 최적화 능성 표현형 또는 질환 표현형의 높은 처리량에 대한 유전자 분석 hPSCs에서 iCRISPR 플랫폼의 사용을 가능하게 할 것으로 예상 할. 이 iCRISPR 중재 연구는 후보의 질병 관련 유전자 및 기능 관련 연구의보다 신속한 식별을 위해 허용 할 수있다.
The authors have nothing to disclose.
이 작품은 NIH / NIDDK (R01DK096239) 및 뉴욕 주 줄기 세포 과학 (NYSTEM C029156)에 의해 부분적으로 투자되었다. ZZ는 슬로안 케터링 연구소의 줄기 세포 생물학 센터에서 NYSTEM 박사 친교에 의해 지원되었다.
Chemically defined medium (E8) | Thermo Fisher Scientific | A1517001 | Essential 8 basal medium and Essential 8 supplement included |
Truncated recombinant human form of vitronectin | Thermo Fisher Scientific | A14700 | |
ROCK inhibitor Y-27632 | Selleck Chemicals | S1049 | |
Dissociation reagent (TrypLE Select enzyme) | Thermo Fisher Scientific | 12563029 | 1X, animal origin free, recombinant enzyme |
G418 Sulfate | Thermo Fisher Scientific | 10131035 | Geneticin Selective Antibiotic |
Puromycin dihydrochloride | Sigma-Aldrich | P8833 | Puromycin Selective Antibiotic |
DNA Polymerase (Herculase II Fusion) | Agilent Technologies | 600679 | PCR kit |
MEGAshortscript T7 Transcription kit | Thermo Fisher Scientific | AM1354 | |
MEGAclear Transcription Clean-Up Kit | Thermo Fisher Scientific | AM1908 | |
Doxycycline hyclate | Sigma-Aldrich | D9891 | |
Opti-MEM medium | Thermo Fisher Scientific | 31985062 | Reduced Serum Medium |
Lipofectamine RNAiMAX Transfection Reagent | Thermo Fisher Scientific | 13778150 | |
DNeasy Blood & Tissue Kit | QIAGEN | 69504 | Genomic DNA extraction kit |
Proteinase K | Roche | 3115879001 | |
MCDB 131 medium | Thermo Fisher Scientific | 10372-019 | |
BLAR medium | Thermo Fisher Scientific | Custom-made with a published formulation (Rezania et al., 2014) | |
L-glutamine supplement (GlutaMAX) | Thermo Fisher Scientific | 35050061 | |
NaHCO3 | Thermo Fisher Scientific | 144-55-8 | |
Glucose | Sigma-Aldrich | G8769 | |
BSA | LAMPIRE Biological Laboratories | 7500855 | Fatty acid free |
GDF8 | PeproTech | 120-00 | |
CHIR-99021 | Stemgent | 04-0004 | GSK-3 inhibitor |
L-Ascorbic acid | Sigma-Aldrich | A4544 | Vitamin C |
FGF7 | R&D Systems | 251-KG | |
SANT1 | Tocris Bioscience | 1974 | Hedgehog inhibitor |
RA | Sigma-Aldrich | R2625 | Retinoic acid |
LDN | Stemgent | 04-0019 | BMP inhibitor |
IWP-2 | Tocris Bioscience | 3533 | Wnt antagonist |
ITS-X | Thermo Fisher Scientific | 51500-056 | |
TPB | EMD Millipore | 565740-1MG | PKC activator |
3,3’,5-Triiodo-L-thyronine (T3) | Sigma-Aldrich | T6397 | |
ALK5i II | Enzo Life Sciences | ALX-270-445 | ALK5 inhibitor II |
ZnSO4 | Sigma-Aldrich | Z0251 | |
Heparin | Sigma-Aldrich | H3149 | |
GSiXX | EMD Millipore | 565789 | Gamma secretase inhibitor XX, NOTCH signaling inhibitor |
N-Cys (N-acetyl cysteine) | Sigma-Aldrich | A9165 | |
Trolox | EMD Millipore | 648471 | Vitamin E analogue |
R428 | Selleck Chemicals | S2841 | AXL receptor tyrosine kinase inhibitor |
24mm Transwell with insert | Corning Life Sciences | 3414 | |
Gene Pulser Xcell Electroporation System | Bio-Rad | 1652660 | |
0.4 cm Electroporation Cuvettes | Bio-Rad | 1652081 | |
AAVS1-TALEN-L | Addgene | 59025 | |
AAVS1-TALEN-R | Addgene | 59026 | |
AAVS1-Neo-M2rtTA | Addgene | 60843 | |
AAVS1-Puro-iCas9 | Addgene | 58409 | |
T7 Endonuclease I | NEB | M0302L | |
Buffer 2 | NEB | B7002S | NEBuffer 2 |
Long oligonucleotide | Eton Bioscience or IDT | ||
SOX17 antibody | R&D Systems | AF1924 | 1: 500 |
FOXA2 antibody | Millipore | 07-633 | 1: 100 |
CXCR4-APC antibody | R&D Systems | FAB170A | 1: 25 |
PDX1 antibody | R&D Systems | AF2419 | 1: 500 |
NKX6.1 antibody | DSHB | F55A12 | 1: 500 |
NKX2.2 antibody | DSHB | 74.5A5 | 1: 100 |
NEUROD1 antibody | Santa Cruz Biotechnology | sc-1084 | 1: 100 |
Insulin antibody | Dako | A0564 | 1: 2000 |
C-peptide antibody | DSHB | GN-ID4-c | 1: 2000 |
Glucagon antibody | Sigma-Aldrich | G2654 | 1: 1000 |