Ein Verfahren zur Trocknung induzierte Selbst Integration von megamolecular Biopolymeren auf der Luft-Flüssigkeit-kristalline Grenzfläche ist vorgesehen. Diese Methodik wird nützlich sein, nicht nur für das Verständnis der makroskopischen Potentiale von Biopolymeren, sondern auch als ein Bewertungsverfahren für weiche Materialien in der biomedizinischen und Umwelt.
Lebende Organismen, die Wasser verwenden, sind immer anfällig in der Umwelt zu trocknen. Ihre Aktivitäten werden angetrieben von Biopolymer-basierten Mikro- und Makrostrukturen, wie in den Fällen gesehen Wasser in Leitbündel bewegten und feuchtigkeitsspendende Wasser in Hautschichten. In dieser Studie haben wir ein Verfahren zur Bewertung der Wirkung von wässrigem flüssigkristallinen (LC) Lösungen von Biopolymeren beim Trocknen zusammen. Als LC Biopolymere megamolecular Gewicht haben, wählten wir Polysaccharide, Cytoskelett-Proteine und DNA zu untersuchen. Die Beobachtung von Biopolymer-Lösungen während zeigt aus der instabilen Luft-LC-Schnittstelle beginnend milliscale Selbstintegration unter polarisiertem Licht trocknet. Die Dynamik der wässrigen LC-Biopolymer-Lösungen kann durch Verdampfen von Wasser aus einer einseitig offenen Zellen überwacht werden. Durch die Analyse der Bilder kreuzpolarisiertem Licht genommen, ist es möglich , die räumlich-zeitlichen Veränderungen des Orientierungsordnungsparameter zu erkennen. DiesVerfahren für die Charakterisierung von nicht nur künstlichen Materialien in verschiedenen Bereichen, aber auch natürliches Leben Geweben nützlich sein. Wir glauben, dass es ein Bewertungsverfahren für weiche Materialien in der biomedizinischen und Umweltbereich bieten.
Durch die Fokussierung auf den starren, stabförmigen Strukturen von Biopolymeren, dynamisch weichen Materialien wurden für verschiedene Anwendungen, einschließlich Polysaccharids Biofilm Matrices 1 „aktiven Gele“ bestehend aus Zytoskelett – Proteinen 2 und „DNA origami“ gewünschten Formen 3 verwendet. Um zu klären, haben die strukturellen Eigenschaften, viele Strategien wurden untersucht, wie die Transmissionselektronenmikroskopie, Rasterelektronenmikroskopie, Rasterkraftmikroskopie und konfokale Fluoreszenzmikroskopie. Da jedoch diese Methoden meist in einem ausgetrockneten oder statischen Zustand durchgeführt werden, ist es schwierig, die dynamischen Verhalten in der makroskopischen Ebene zu erklären, wie es in der tatsächlichen lebenden Systemen gesehen. Vor kurzem haben wir beobachtet , erfolgreich das dynamische Verhalten von Biopolymeren auf die wässrige Luft-LC – Schnittstelle durch polarisiertes Licht 4. Bei der Visualisierung der Struktur ausgerichtet, während das Trocknen des BiopolymersLösung zeigten die zeitlichen Veränderungen Selbst Integration von Biopolymeren auf der instabilen Luft-LC-Schnittstelle.
Hier beschreiben wir ein Protokoll für die Trocknung von LC-Biopolymer-Lösungen an der Luft-LC-Schnittstelle unter Verwendung von polarisiertem Instrumenten. Durch Auswertung des Orientierungsordnungsparameters in der Seitenansicht der Fluidphase in einer offenen einseitiges-Zelle im Gegensatz Phase auf andere Analysen der LC , dass 5 nicht die Ansicht , Trocknen, 6 wurde die LC Dynamik während des Trocknungsvorganges hier untersucht . Die Kombination der Zelle der Verdampfung und die Verwendung von polarisiertem Instrumenten zur makroskopischen Überwachung mit einer kontrollierten Verdampfungsrichtung erlaubt. Darüber hinaus war es möglich , die Trocknungs Aufzeichnungen durch die Konzentration auf den kristallinen Strukturen der adsorbierten Mikrodomänen zu validieren, die durch das Molekulargewicht beeinflußt wurde, Konzentration, usw. Um die Wirksamkeit des Verfahrens wird die Trocknung Pro zu demonstrierenzesse basischer Biopolymeren mit starren Stabformen, wie Polysaccharide, Mikrotubuli (MTs), und DNA, wurden untersucht. Wir haben uns für diese Biopolymere, weil sie typische Beispiele für hierarchische Makromoleküle mit megamolecular Gewichte sind, und ihre intermolekularen Wechselwirkungen ermöglichen ihnen LC Staaten zu bilden.
Es war manchmal schwierig, für die Kamera auf der Probe zu konzentrieren, aufgrund der durchgelassenen Lichtintensität zu gering zu sein. In solchen Fällen auf der Bühne eine erweiterte transparenten Kunststoffilm Platzieren half, den Fokus zu arrangieren. Die Begrenzung der beobachtbaren Auflösung war abhängig von der Kameralinse, ~ 10 & mgr; m in diesem Fall. Die beobachtbare Begrenzung der Probendicke, & Delta; y, waren abhängig von der maximalen Lichtintensität der Lampe, ~ 10 mm in diesem Fall.
…The authors have nothing to disclose.
Diese Arbeit wurde durch Gewährung-in-Hilfe für junge Wissenschaftler (16K17956) vom Ministerium für Bildung, Kultur, Sport, Wissenschaft und Technologie von Japan, der Kyoto-Techno Center und The Mitani Stiftung für Forschung und Entwicklung unterstützt.
sacran | Green Science Materials Inc., Japan | From Aphanothece sacrum. Mw = 1.9 × 107 g mol-1 |
|
xanthan gum | Taiyo Kagaku Co., Japan | Neosoft XC | From Xanthomonas campestris. Mw = 4.7 × 106 g mol-1 |
tubulin | Cytoskeleton, Inc., USA | T240 | From porcine brain. |
GpCpp | Jena Bioscience, Germany | NU405L | |
piperazine-N,N′-bis(2-ethanesulfonic acid) | Sigma-Aldrichi, Co. LLC. | P6757-500G | PIPES |
ethylene glycol-bis(β-aminoethyl ether)-N,N,N',N'-tetraacetic acid | Dojindo Molecular Technologies, Inc. | 342-01314 | EGTA |
MgCl2-6H2O | Wako Pure Chemical Industries, Ltd. | 135-15055 | |
KOH | Wako Pure Chemical Industries, Ltd. | 162-21813 | pellet |
DNA | Sigma-Aldrich, Co. LLC. | D1626 | From salmon testes. Mw = 1.3 × 106 Da (~2000 bp) |
Tris-EDTA buffer solution | Sigma-Aldrich, Co. LLC. | T9285-100ML | 10 mM Tris, pH 8.0, with 1 mM EDTA |
slide glass | Matsunami Glass Ind., Ltd., Japan | S1111 | |
silicon rubber sheet | Asone Co. | 6-611-32 | Thickness: 1 mm |
centrifuge | Beckman-Coulter, Inc., USA | Avanti J-25 | equipped with a JA-20 rotor |
light source | Sumita Optical Glass, Inc., Japan | LS-LHA | |
light guide | Sumita Optical Glass, Inc., Japan | GF7.2-1-L1500R-M80 (AAAR-015M) | 80 mm × 80 mm |
halogen lamp | Ushio Inc., Japan | JCR 15V150WBN | |
polarizer | Luceo, Co.,Ltd. | POLAX-42S | 40 x 80 x 2t (45˚) |
holder | Sigmakoki, Co.,Ltd. | KMH-80 | |
sample stage | Sigmakoki, Co.,Ltd. | TARW-25503L | |
sample holder | Sigmakoki, Co.,Ltd. | SHA-25RO | |
rod | Sigmakoki, Co.,Ltd. | ROU-12-40 | |
posts holder | Sigmakoki, Co.,Ltd. | RS-6-40 | |
posts holder | Sigmakoki, Co.,Ltd. | RS-12-60 | |
posts holder | Sigmakoki, Co.,Ltd. | RS-12-80 | |
posts holder | Sigmakoki, Co.,Ltd. | RS-12-130 | |
carrier | Sigmakoki, Co.,Ltd. | CAA-25LS | |
camera holder | Sigmakoki, Co.,Ltd. | CMH-2 | |
medium optical rail | Sigmakoki, Co.,Ltd. | OBA-500SH | |
lenstube | Tomytech, BORG | lenstube BK | 80φ, L25 mm |
lenstube | Tomytech, BORG | lenstube BK | 80φ, L50 mm |
multiband | Tomytech, BORG | 80φ | |
V plate | Tomytech, BORG | V plate 60S | |
plate holder | Viexen, Co.,Ltd. | plate holder SX | |
EOS Kiss X7i | Canon Inc., Japan | 8594B001 | with a standard zoom lens, EFP 18-55 mm |
photographic software | Canon Inc., Japan | EOS Utility | |
PC | Microsoft | Surface | |
polarization microscope | Olympus | BX51 | |
first order retardation plate | Olympus | U-TP530 | λ = 530 nm |
CCD camera | Olympus | DP80 | |
photographic software | Olympus | cellSens Standard | |
Java-based image processing program | the National Institutes of Health | ImageJ |