Summary

Isolasjon og berikelse av lever stamfar Delsett identifisert av en roman overflaten markør Kombinasjon

Published: February 18, 2017
doi:

Summary

Leverskade er ledsaget av stamcelleekspansjon som representerer en heterogen cellepopulasjon. Ny klassifisering av denne cellerommet gjør det mulig å skille av flere undergrupper. Metoden som beskrives her illustrerer strømningscytometri-analyse og med høy renhet isolasjon av ulike undergrupper som kan brukes for videre analyser.

Abstract

I løpet av kroniske leverskader, stamceller ekspandere i en prosess som kalles ductular reaksjon, noe som også medfører forekomsten av inflammatoriske cellulære infiltrat og epitelial celleaktivering. Den stamcelle befolkningen under slike betennelsesreaksjoner har hovedsakelig blitt undersøkt ved hjelp av enkle overflatemarkører, enten ved histologisk analyse eller ved flowcytometri-baserte teknikker. Men nye overflatemarkører identifisert ulike funksjonelt distinkte undergrupper innenfor leveren stamfar / stamcellerommet. Metoden som presenteres her beskriver isolering og detaljert flyt cytometri analyse av progenitor undergrupper ved hjelp av ny overflatemarkør kombinasjoner. Videre viser det hvordan de ulike stamcelle undergrupper kan isoleres med høy renhet ved hjelp av automatisert magnetisk og FACS sortering-baserte metoder. Viktigere, ny og forenklet enzymatisk dissosiasjon av leveren gjør det mulig for isolering av disse sjeldne cellepopulasjoner med en høy levedyktighetsom er overlegen i forhold til andre eksisterende metoder. Dette er spesielt aktuelt for ytterligere å studere stamceller in vitro, eller for isolering av høy kvalitet RNA for å analysere genekspresjon profilen.

Introduction

Leveren regenerering er hovedsakelig knyttet til selvfornyelse kapasitet på hepatocytter. Ikke desto mindre forekommer kroniske leverskader med stamcelle aktivering og ekspansjon, som er blitt forbundet med deres evne til å differensiere til hepatocytter og cholangiocytes 1, 2, 3, 4. Dette er spesielt relevant fordi, i løpet av kroniske skader, er hepatocytter spredning ikke er effektive. Til tross for flere genetiske Tracing studier rettet mot stamceller, deres rolle i leveren regenerering er fortsatt kontroversielt 5, 6, 7, 8. Videre har aktiveringen av progenitorceller vært knyttet til økt fibrotisk reaksjon i leveren, noe som stiller spørsmål om deres eksakte rolle under skader 9, 10.

Den heterogene natur av stamcelle kammeret har lenge vært foreslått av genuttrykkstudier det isolerte progenitor-celler som uttrykker et enkelt overflatemarkør ved hjelp av mikrodisseksjon eller cellesortering-baserte metoder 1, 11. Faktisk nylig en ny overflate markør kombinasjon hjelp gp38 (podoplanin) utvetydig knyttes tidligere enkeltmarkører stamceller til ulike undergrupper 12. Viktigere, disse undergrupper ikke bare skilte seg i deres overflate markør uttrykk, men også utstilt funksjonelle endringer i løpet av skader 12.

Flere dyremodeller er blitt benyttet for å undersøke progenitor-celleaktivering og leveren regenerering. Det virker som de ulike skadetyper fremme aktivering av ulike undergrupper av stamceller 12. Dette kan forklare phenotypic divergens av ductular reaksjon er observert hos mennesker 4. Dermed komplekse fenotypiske og funksjonelle analyser av stamceller er avgjørende for å forstå sin rolle i skader og den sanne betydningen av ductular reaksjon i leversykdommer.

Foruten overflate markør kombinasjoner, de avgjørende forskjeller i celle isolasjon protokoller ytterligere komplisere konklusjonene basert på tidligere studier 2. En betydelig mengde av studier rettet rollen til stamceller som i stor grad har forskjellig isolasjonsprotokoll (f.eks lever dissosiasjon (enzymkombinasjon og varigheten av prosessen), tetthet medium og sentrifugehastighet) 2. En optimalisert isolert teknikk, noe som gir bedre levedyktighet for sjeldne celle populasjoner og reflekterende av undergruppe sammensetning, har blitt utviklet og utgitt nylig 12. Målet med denne artikkelen er å gi en mer Fondetfeilte protokoll fra denne levercelleisoleringsprosedyren og den undergruppe analyse for å tillate riktig gjengivelse av teknikken. I tillegg omfatter protokoll en sammenligning med den tidligere isolasjonsmetoden for å vise forskjellene i forhold til den nye protokoll.

Protocol

Alle eksperimentelle prosedyrer ble gjennomført med godkjenning av etikk og dyr omsorg komiteer av Homburg University Medical Center. 1. Utarbeidelse av materialer og buffere Fersk forberede alle buffere som kreves for leveren fordøyelse ved hjelp av sterile komponenter og en laminær hette for å unngå bakteriell forurensning. Forbered oppsamlingsbufferen (CB) ved å blande 49,5 ml RPMI-medium og 0,5 ml føtalt bovint serum (FBS; lav endotoksin, varme-inaktivert) for…

Representative Results

Fremgangsmåten presentert her for fordøyelsen av leveren ved anvendelse av en ny blanding av enzymer resulterer i en enkeltcellesuspensjon inneholdende parenchymale og ikke-parenchymale leverceller (figur 1 og 2a). Når ACK-lysering av røde blodlegemer, den direkte flowcytometri analyse av enkeltcellesuspensjonen er mulig (figur 1 og 2). Den gating strategien innebærer utelukkelse av dubletter og døde celler <strong…

Discussion

Leverbetennelse og skader av ulik opprinnelse utløse regenerative prosesser i leveren som er ledsaget av stamcelleekspansjon og aktivering to, tre. Disse lever stamceller har stamcelleegenskaper og sannsynligvis spille en betydelig rolle i pathomechanism av ulike leversykdommer.

Heterogeniteten av lever progenitorceller har lenge vært foreslått. Den revurdering av lever progenitor undergrupper ved hjelp av en ny overflate markør …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble støttet av Alexander von Humboldt Foundation Sofja Kovalevskaja Award til VLK.

Materials

RPMI Life Technologies 21875-034
phenol red free DMEM Life Technologies 31053-028
FBS Life Technologies 10270-106
Collagenase P Sigma-Aldrich 11249002001
DNAse-I Sigma-Aldrich 10104159001
Dispase Life Technologies 17105041
ACK Lysing Buffer Life Technologies A10492-01
HBSS Life Technologies 14025-050
PBS Sigma-Aldrich D8537
Sodium Azide Sigma-Aldrich S2002 Prepare 1 % stock solution
10 % BSA Miltenyi Biotec 130-091-376
autoMACS Rinsing Solution Miltenyi Biotec 130-091-222 add 0.5 % (v/v) BSA and store on ice
Phenol-red free DMEM Sigma-Aldrich D1145
counting Beads Count Bright Life Technologies C36950
PI Miltenyi Biotec 130-093-233
FcR Blocking Reagent Miltenyi Biotec 130-092-575
anti-CD31 MicroBeads Miltenyi Biotec 130-097-418
anti-CD45 MicroBeads Miltenyi Biotec 130-052-301
Dead Cell Removal Kit Miltenyi Biotec 130-090-101
anti-Biotin MicroBeads Miltenyi Biotec 130-090-485
CD64 Purified BioLegend 139302 Dilution: 1:100
CD16/32 Purified BioLegend 101302 Dilution: 1:100
CD45 APC/Cy7 BioLegend 103116 Dilution: 1:200, marks hematopoetic cells
CD31 Biotin BioLegend 102504 Dilution: 1:200, marks endothelial cells
ASGPR1 Purified Bio-Techne AF2755-SP Dilution: 1:100, marks hepatocytes
Podoplanin APC BioLegend 127410 Dilution: 1:1400, marks progenior cells
Podoplanin Biotin BioLegend 127404 Dilution: 1:1400
CD133 PE Miltenyi Biotec 130-102-210 use 3 µl, marks progenitor cells
CD133 Biotin BioLegend 141206 Dilution: 1:100
CD34 Biotin eBioScience 13-0341-81 Dilution: 1:100
CD90.2 Pacific Blue BioLegend 140306 Dilution: 1:800
CD157 PE BioLegend 140203 Dilution: 1:600
EpCAM Brilliant Violet 421 BioLegend 118225 Dilution: 1:100
Sca-1 Biotin Miltenyi Biotec 130-101-885 use 10 µl
Mouse IgG2b, κ PE BioLegend 400311
Rat IgG1 PE BioLegend 400407
Rat IgG2b, κ APC/Cy7 BioLegend 400624
Rat IgG2a, κ Biotin BioLegend 400504
Rat IgG2a, κ Brilliant Violet 421 BioLegend 400535
Syrian Hamster IgG APC BioLegend 402012
Syrian Hamster IgG Biotin BioLegend 402004
Normal Goat IgG Control Purified Bio-Techne AB-108-C
Donkey anti-Goat IgG Alexa Fluor 488 Life Technologies A11055 Dilution: 1:800
Streptavidin Alexa Fluor 405 Life Technologies S32351 Dilution: 1:400
100 µm Filter mesh A. Hartenstein PAS3
LS Column Miltenyi Biotec 130-042-401
QuadroMACS separator Miltenyi Biotec 130-090-976
MACSQuant Analyzer 10 Miltenyi Biotec 130-096-343
AutoMACS Pro Separator Miltenyi Biotec 130-092-545
FACS AriaTMIII BD Biosciences
FACSDiva sofware BD Biosciences
Polypropylene Round bottom tube Falcon 352063
Rneasy plus mini kit Qiagen 74134 RLT lysis buffer is included

References

  1. Dolle, L., et al. Successful isolation of liver progenitor cells by aldehyde dehydrogenase activity in naive mice. Hepatology. 55 (2), 540-552 (2012).
  2. Dolle, L., et al. The quest for liver progenitor cells: a practical point of view. J Hepatol. 52 (1), 117-129 (2010).
  3. Dorrell, C., et al. Surface markers for the murine oval cell response. Hepatology. 48 (4), 1282-1291 (2008).
  4. Gouw, A. S., Clouston, A. D., Theise, N. D. Ductular reactions in human liver: diversity at the interface. Hepatology. 54 (5), 1853-1863 (2011).
  5. Tarlow, B. D., Finegold, M. J., Grompe, M. Clonal tracing of Sox9+ liver progenitors in mouse oval cell injury. Hepatology. 60 (1), 278-289 (2014).
  6. Shin, S., et al. Foxl1-Cre-marked adult hepatic progenitors have clonogenic and bilineage differentiation potential. Genes Dev. 25 (11), 1185-1192 (2011).
  7. Furuyama, K., et al. Continuous cell supply from a Sox9-expressing progenitor zone in adult liver, exocrine pancreas and intestine. Nat Genet. 43 (1), 34-41 (2011).
  8. Font-Burgada, J., et al. Hybrid Periportal Hepatocytes Regenerate the Injured Liver without Giving Rise to Cancer. Cell. 162 (4), 766-779 (2015).
  9. Kuramitsu, K., et al. Failure of fibrotic liver regeneration in mice is linked to a severe fibrogenic response driven by hepatic progenitor cell activation. Am J Pathol. 183 (1), 182-194 (2013).
  10. Pritchard, M. T., Nagy, L. E. Hepatic fibrosis is enhanced and accompanied by robust oval cell activation after chronic carbon tetrachloride administration to Egr-1-deficient mice. Am J Pathol. 176 (6), 2743-2752 (2010).
  11. Spee, B., et al. Characterisation of the liver progenitor cell niche in liver diseases: potential involvement of Wnt and Notch signalling. Gut. 59 (2), 247-257 (2010).
  12. Eckert, C., et al. Podoplanin discriminates distinct stromal cell populations and a novel progenitor subset in the liver. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 310 (1), G1-G12 (2016).
  13. Epting, C. L., et al. Stem cell antigen-1 is necessary for cell-cycle withdrawal and myoblast differentiation in C2C12 cells. J Cell Sci. 117 (Pt 25), 6185-6195 (2004).
  14. Tirnitz-Parker, J. E., Tonkin, J. N., Knight, B., Olynyk, J. K., Yeoh, G. C. Isolation, culture and immortalisation of hepatic oval cells from adult mice fed a choline-deficient, ethionine-supplemented diet. Int J Biochem Cell Biol. 39 (12), 2226-2239 (2007).
  15. Rountree, C. B., et al. A CD133-expressing murine liver oval cell population with bilineage potential. Stem Cells. 25 (10), 2419-2429 (2007).
  16. Rountree, C. B., Ding, W., Dang, H., Vankirk, C., Crooks, G. M. Isolation of CD133+ liver stem cells for clonal expansion. J Vis Exp. (56), (2011).
  17. Sidney, L. E., McIntosh, O. D., Hopkinson, A. Phenotypic Change and Induction of Cytokeratin Expression During In Vitro Culture of Corneal Stromal Cells. Invest Ophthalmol Vis Sci. 56 (12), 7225-7235 (2015).
  18. Hass, R., Kasper, C., Bohm, S., Jacobs, R. Different populations and sources of human mesenchymal stem cells (MSC): A comparison of adult and neonatal tissue-derived MSC. Cell Commun Signal. 9, 12 (2011).
  19. Schmelzer, E., et al. Human hepatic stem cells from fetal and postnatal donors. J Exp Med. 204 (8), 1973-1987 (2007).
check_url/kr/55284?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Julich-Haertel, H., Tiwari, M., Mehrfeld, C., Krause, E., Kornek, M., Lukacs-Kornek, V. Isolation and Enrichment of Liver Progenitor Subsets Identified by a Novel Surface Marker Combination. J. Vis. Exp. (120), e55284, doi:10.3791/55284 (2017).

View Video