Summary

Tillverkning av Tredimensionell Pappersbaserade Mikrofluidikanordningar för Immun

Published: March 09, 2017
doi:

Summary

Vi detalj en metod för att tillverka tredimensionella pappersbaserade mikrofluidanordningar för användning i utvecklingen av immunanalyser. Vårt förhållningssätt till sammansatta enheten är en typ av flerskikts, additiv tillverkning. Vi visar en sandwich immun att tillhandahålla representativa resultat för dessa typer av pappersbaserade enheter.

Abstract

Papper vekar vätskor självständigt på grund av kapillärkraften. Genom mönstring papper med hydrofoba barriärer kan transporten av vätskor styras och riktas inom ett skikt av papper. Dessutom stapla flera skikt av mönstrat papper skapar sofistikerade tredimensionella mikroflödes nätverk som kan stödja utvecklingen av analytiska och bioanalytiska analyserna. Pappersbaserade mikrofluidikanordningar är billiga, bärbara, lätta att använda, och kräver ingen extern utrustning för att fungera. Som ett resultat håller de mycket lovande som en plattform för point-of-care diagnostik. För att kunna utvärdera användbarheten och analytiska prestanda pappersbaserade enheter måste lämpliga metoder utvecklas för att säkerställa deras tillverkning är reproducerbar och på en skala som är lämplig för laboratoriemiljö. I detta manuskript, till ett förfarande fabricera en allmän anordning arkitektur som kan användas för pappersbaserade immunanalyser beskrivs. Vi använder en form av additiv tillverkar byg (multi-layer laminering) för att framställa anordningar som innefattar flera skikt av mönstrat papper och mönstrat lim. Förutom att påvisa en korrekt användning av dessa tredimensionella pappersbaserade mikroflödessystem enheter med en immunanalys för humant koriongonadotropin (hCG) är fel i tillverkningsprocessen som kan resultera i enhets misslyckanden diskuteras. Vi förväntar oss att detta sätt att tillverka pappersbaserade enheter kommer att finna bred användbarhet i utvecklingen av analytiska applikationer som utformats speciellt för inställningar begränsad resurs.

Introduction

Papper är allmänt tillgänglig i en rad olika formuleringar eller kvaliteter, kan funktionaliseras för att ställa sina egenskaper, och kan transportera vätskor självständigt genom kapillärverkan eller uppsugning. Om papperet är mönstrad med en hydrofob substans (t.ex. fotoresist en eller vax 2), uppsugning av vätskor kan styras rums inom ett skikt av papper. Till exempel kan en pålagd vattenhaltigt prov riktas in i ett antal olika zoner för att reagera med kemiska och biokemiska reagenser lagrade i papperet. Dessa pappersbaserade mikroflödessystem enheter har visat sig vara en användbar plattform för utveckling av bärbara och billiga analytiska analyser 3, 4, 5, 6, 7. Tillämpningar av pappersbaserade mikroflödessystem enheter inkluderar point-of-care diagnostikef "> 8, övervakning av miljöföroreningar 9, upptäckt av förfalskade läkemedel 10, och delokaliserad hälso- och sjukvård (eller" telemedicin ") i begränsad resurs inställningar 11.

Flera lager av mönstrat papper kan sättas samman till en integrerad enhet där hydrofila zoner från grannskikten (dvs över eller under) ansluter för att bilda kontinuerliga fluid nätverk vars inlopp och utlopp kan vara kopplade eller vänster oberoende. 12 Varje skikt kan innefatta ett unikt mönster, som möjliggör den rumsliga separation av reagens och multipla analyser som skall utföras på en enda anordning. Den resulterande tredimensionella mikroflödessystem enhet är inte bara kan uppsugning vätskor för att möjliggöra analytiska analyser (t.ex. leverfunktionstester 13 och elektrokemisk detektering av små molekyler 14), men det kan också support ett antal sofistikerade funktioner (t.ex. ventilerna 15 och enkla maskiner 16) som är gemensamma för de traditionella mikroflödes metoder. Viktigt, eftersom papper transporterar vätskor genom kapillärverkan, dessa enheter kan drivas med minimal ansträngning från användaren.

Eftersom reagens kan lagras i den tredimensionella strukturen för en pappersbaserad enhet, kan komplexa protokoll reduceras till en enda tillsats av vattenhaltigt prov till en enhet. Nyligen införde vi en generell tredimensionell enhet arkitektur som kan användas för att utveckla pappersbaserade immun använder vax-tryckteknik för att skapa mönstrade skikt. 17, 18 Dessa studier fokuserade på hur aspekter i samband med utformningen av enhets antal staplade lager används, sammansättningen av lagren, och mönstret av den tredimensionella mikroflödesnätverks kontrollerade totalt perprestanda av immunanalysen. I slutändan kunde vi använda dessa konstruktionsregler för att underlätta en snabb utveckling av en multiplex immun 19. I detta manuskript, en tidigare utvecklat immun för humant koriongonadotropin (hCG, graviditetshormon) är 17 som ett exempel för att illustrera de strategier som vi har utvecklat för montering och tillverkning av tredimensionella pappersbaserade immun. Följaktligen fokuserar vi på montering och drift av en anordning i stället för utveckling av en analys.

I en sandwich-immunanalys, vilket är det format som används för att detektera hCG, en infångningsantikropp som är specifik för en subenhet av hormonet beläggs på ett fast substrat, som därefter blockeras för att begränsa icke-specifik adsorption av ett prov eller efter en efterföljande reagens. Detta substrat är oftast en polystyren-mikrobrunnsplatta (t.ex. för en enzymkopplad immunabsorberande analys eller ELISA). Provet är sedansattes till en brunn och fick inkubera under en tidsperiod. Efter noggrann tvättning, är en antikropp specifik för den andra subenheten av hCG sattes och fick inkubera. Denna detekteringsantikroppen kan konjugeras till en kolloidal partikel, ett enzym, eller fluorofor i syfte att producera en mätbar signal. Brunnen åter tvättas före tolkningen av resultaten av en analys (t.ex., med användning av en plattläsare). Medan kommersiella kit förlita sig på denna tidsödande flerstegsprocess, kan alla dessa steg utföras snabbt i pappersbaserade mikroflödessystem enheter med minimal inblandning av användaren.

Den anordning som används för hCG immun består av sex aktiva skikt, som är, från topp till botten, som används för provtillsats, konjugat lagring, inkubation, fånga, tvätt, och blot (Figur 1). Provet Dessutom lagret består av kvalitativt filterpapper. Den underlättar införandet av ett vätskeprov och skyddar reagenserna i konjugatet layer från föroreningar från omgivningen eller oavsiktlig beröring av användaren. Konjugatet skiktet (kvalitativt filterpapper) håller färgproducerande reagens (t.ex. kolloidalt guld-märkt antikropp) för immunanalys. Inkubationen skiktet (kvalitativt filtrerpapper) tillåter provet att resa sig i sidled inom planet av papperet för att främja bindning av analyten med reagens innan den når nästa lager, infångningsskiktet. Infångningsskiktet (nylonmembran) innehåller ligander specifika för analyten adsorberas till materialet. Efter analysen är slutförd, är detta skikt avslöjade att möjliggöra visualisering av det färdiga immunokomplex. Tvättskiktet (kvalitativt filterpapper) drar överflödig vätska inklusive gratis konjugerade reagens bort från ansiktet av infångningsskiktet i blot skiktet (tjock kromatografi papper). Den sex-skiktet enheten hålls samman av fem skikt av mönstrat, dubbelsidig självhäftande: fyra skikt av permanent självhäftande upprätthålla integriteten i den monblödde enhet och ett skikt av borttagbart lim underlättar skalar av enheten för att inspektera resultatet av immun på infångningsskiktet.

Vid tillämpningen av detta manuskript, använder vi bara negativa och positiva kontrollprover av hCG (0 mIU / ml och 81 mIU / ml, respektive) för att ge representativa resultat av ett pappersbaserat immun, som tillåter en särskild diskussion om förhållandet mellan tillverkningsmetoder och prestandan hos en enhet. Förutom att visa hur man tillverkar enheter framgångsrikt markerar vi flera tillverkningsfel som kan leda till fel på en enhet eller reproducerbara analysresultat. Protokollet och diskussion som beskrivs i detta manuskript ger forskarna värdefull insikt i hur pappersbaserade immun är utformade och tillverkade. Medan vi fokuserar vår demonstration på immun, räknar vi med att de riktlinjer som presenteras häri kommer att vara i stort sett användbar för tillverkning av trednella pappersbaserade mikrofluidikanordningar.

Protocol

1. Beredning av pappersbaserade mikroflödessystem enhet Lager Förbered mönster för lager av papper, nylon, och lim med hjälp av en grafisk design program. 6 Varje skikt kan ha ett annat mönster. OBS: Mönstret kan innefatta inriktnings hål som inte krävs för en fungerande pappersbaserad immun, men hjälpa till med reproducerbar tillverkning av tredimensionella enheter. Placering av dessa hål kommer att skilja sig om enheter monteras individuellt, i remsor eller som hel…

Representative Results

Erhålla reproducerbara analys föreställningar tredimensionella pappersbaserade mikroflödessystem enheter förlitar sig på en tillverkningsmetod som säkerställer överensstämmelse mellan enheter. Mot detta mål, har vi identifierat ett antal tillverkningsprocesser och material överväganden och diskutera dem här i samband med att visa en pappersbaserad immunanalys. Vi använder ett vax tryckmetod för att bilda hydrofoba barriärer inom pappersbaserade mikrofluidikanordningar <s…

Discussion

Identifiera en reproducerbar tillverkningsstrategi är en viktig del av analysutveckling. 22 Vi använder en sekventiell, skikt-för-skikt tillvägagångssätt för tillverkning av tredimensionella pappersbaserade mikrofluidikanordningar. I motsats till de metoder som gäller fällbara eller origami tekniker för att producera flerskikts enheter från ett enda pappersark 23, erbjuder 24 additiv tillverkning en rad fördelar: (i) Flera mat…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work was supported by Tufts University and by a generous gift from Dr. James Kanagy. This material is based upon work supported by the National Science Foundation Graduate Research Fellowship Program under Grant No. (DGE-1325256) that was awarded to S.C.F. D.J.W. was supported by a U.S. Department of Education GAANN fellowship. We thank Dr. Jeremy Schonhorn (JanaCare), Dr. Jason Rolland (Carbon3D), and Rachel Deraney (Brown University) for helping develop the design of the three-dimensional paper-based microfluidic device and immunoassay.

Materials

Illustrator CC Adobe to design patterns for layers of paper and adhesive
Xerox ColorQube 8580 printer Amazon B00R92C9DI to print wax patterns onto layers of paper and Nylon
Isotemp General Purpose Heating and Drying Oven Fisher Scientific 15-103-0509 to melt wax into paper
Artograph LightTracer Amazon B000KNHRH6 to assist with alignment of layers
Apache AL13P laminator Amazon B00AXHSZU2 to laminate layers together
Graphtec CE6000 Cutting Plotter Graphtec America CE6000-40 to pattern adhesive films
Swingline paper cutter Amazon B0006VNY4C to cut paper or devices
Epson Perfection V500 photo scanner Amazon B000VG4AY0 to scan images of readout layer
economy plier-action hole punch McMaster-Carr 3488A9 to remove alignment holes 
Whatman chromatogrpahy paper, Grade 4 Sigma Aldrich WHA1004917
Fisherbrand chromatography paper (thick)  Fisher Scientific 05-714-4 to function as blot layer
Immunodyne ABC (0.45 µm pore size ) Pall Corporation NBCHI3R to function as material for capture layer
removable/permanent adhesive-double faced liner FLEXcon DF021621 to facilitate peeling
permanent adhesive-double faced liner FLEXcon DF051521
wax liner FLEXcon FLEXMARK 80 D/F PFW LINER to assist with patterning adhesive
acrylic sheet McMaster-Carr 8560K266  to fabricate frame
self-adhesive sheets Fellowes CRC52215 to use as protective slip
absolute ethanol VWR 89125-172 to sanitize work area
bovine serum albumin AMRESCO 0332
Sekisui Diagnostics OSOM hCG Urine Controls Fisher Scientific 22-071-066 to use as positive and negative samples
anti-β-hCG monoclonal antibody colloidal gold conjugate (clone 1) Arista Biologicals  CGBCG-0701 to treat conjugate layer
goat anti-α-hCG antibody Arista Biologicals  ABACG-0500 to treat capture layer
10X phosphate buffered saline Fisher Scientific BP3991
Oxoid skim milk powder Thermo Scientific OXLP0031B
Tween 20 AMRESCO M147

References

  1. Martinez, A. W., Phillips, S. T., Wiley, B. J., Gupta, M., Whitesides, G. M. FLASH: A rapid method for prototyping paper-based microfluidic devices. Lab Chip. 8 (12), 2146-2150 (2008).
  2. Carrilho, E., Martinez, A. W., Whitesides, G. M. Understanding wax printing: a simple micropatterning process for paper-based microfluidic devices. Anal. Chem. 81 (16), 7091-7095 (2009).
  3. Martinez, A. W., Phillips, S. T., Butte, M. J., Whitesides, G. M. Patterned paper as a platform for inexpensive, low-volume, portable bioassays. Angew. Chem. Int. Ed. 46 (8), 1318-1320 (2007).
  4. Martinez, A. W., Phillips, S. T., Whitesides, G. M. Diagnostics for the developing world: microfluidic paper-based analytical devices. Anal. Chem. 82 (1), 2-10 (2010).
  5. Cate, D. M., Adkins, J. A., Mettakoonpitak, J., Henry, C. S. Recent developments in paper-based microfluidic devices. Anal. Chem. 87 (1), 19-41 (2015).
  6. Li, X., Ballerini, D. R., Shen, W. A perspective on paper-based microfluidics: Current status and future trends. Biomicrofluidics. 6, 011301 (2012).
  7. Lisowski, P., Zarzycki, P. K. Microfluidic paper-based analytical devices (µPADs) and micro total analysis systems (µTAS): Development, applications and future trends. Chromatographia. 76, 1201-1214 (2013).
  8. Pollock, N. R., et al. A paper-based multiplexed transaminase test for low-cost, point-of-care liver function testing. Sci. Transl. Med. 4 (152), 152ra129 (2012).
  9. Mentele, M. M., Cunningham, J., Koehler, K., Volckens, J., Henry, C. S. Microfluidic paper-based analytical device for particulate metals. Anal. Chem. 84 (10), 4474-4480 (2012).
  10. Weaver, A. A., et al. Paper analytical devices for fast field screening of beta lactam antibiotics and antituberculosis pharmaceuticals. Anal. Chem. 85 (13), 6453-6460 (2013).
  11. Martinez, A. W., Phillips, S. T., Carrilho, E., Thomas, S. W., Sindi, H., Whitesides, G. M. Simple telemedicine for developing regions: camera phones and paper-based microfluidic devices for real-time, off-site diagnosis. Anal. Chem. 80 (10), 3699-3707 (2008).
  12. Martinez, A. W., Phillips, S. T., Whitesides, G. M. Three-dimensional microfluidic devices fabricated in layered paper and tape. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 105 (50), 19606-19611 (2008).
  13. Vella, S. J., et al. Measuring markers of liver function using a micro-patterned paper device designed for blood from a fingerprick. Anal Chem. 84 (6), 2883-2891 (2012).
  14. Nie, Z., Deiss, F., Liu, X., Akbulut, O., Whitesides, G. M. Integration of paper-based microfluidic devices with commercial electrochemical readers. Lab Chip. 10 (22), 3163-3169 (2010).
  15. Martinez, A. W., et al. Programmable diagnostic devices made from paper and tape. Lab Chip. 10 (19), 2499-2504 (2010).
  16. Connelly, J. T., Rolland, J. P., Whitesides, G. M. "Paper machine" for molecular diagnostics. Anal. Chem. 87 (15), 7595-7601 (2015).
  17. Schonhorn, J. E., Fernandes, S. C., Rajaratnam, A., Deraney, R. N., Rolland, J. P., Mace, C. R. A device architecture for three-dimensional, patterned paper immunoassays. Lab Chip. 14 (24), 4653-4658 (2014).
  18. Fernandes, S. C., Logounov, G. S., Munro, J. B., Mace, C. R. Comparison of three indirect immunoassay formats on a common paper-based microfluidic device architecture. Anal. Methods. 8 (26), 5204-5211 (2016).
  19. Deraney, R. N., Mace, C. R., Rolland, J. P., Multiplexed Schonhorn, J. E. patterned-paper immunoassay for detection of malaria and dengue fever. Anal. Chem. 88 (12), 6161-6165 (2016).
  20. Abramoff, M., Magalhaes, P. J., Ram, S. J. Image processing with ImageJ. Biophotonics Int. 11 (7), 36-42 (2004).
  21. Derda, R., et al. Multizone paper platform for 3D cell cultures. PLoS ONE. 6 (5), e18940 (2011).
  22. Mace, C. R., Deraney, R. N. Manufacturing prototypes for paper-based diagnostic devices. Microfluid. Nanofluidics. 16 (5), 801-809 (2014).
  23. Liu, H., Crooks, R. M. Three-dimensional paper microfluidic devices assembled using the principles of origami. J. Am. Chem. Soc. 133 (44), 17564-17566 (2011).
  24. Kalish, B., Tsutsui, H. Using Adhesive patterning to construct 3D paper microfluidic devices. J. Vis. Exp. (110), e53805 (2016).
  25. Scida, K., Cunningham, J. C., Renault, C., Richards, I., Crooks, R. M. Simple, sensitive, and quantitative electrochemical detection method for paper analytical devices. Anal. Chem. 86 (13), 6501-6507 (2014).
  26. Lewis, G. G., DiTucci, M. J., Baker, M. S., Phillips, S. T. High throughput method for prototyping three-dimensional, paper-based microfluidic devices. Lab Chip. 12 (15), 2630-2633 (2012).
  27. Kalish, B., Tsutsui, H. Patterned adhesive enables construction of nonplanar three-dimensional paper microfluidic circuits. Lab Chip. 14 (22), 4354-4361 (2014).
  28. Camplisson, C. K., Schilling, K. M., Pedrotti, W. L., Stone, H. A., Martinez, A. W. Two-ply channels for faster wicking in paper-based microfluidic devices. Lab Chip. 15 (23), 4461-4466 (2015).

Play Video

Cite This Article
Fernandes, S. C., Wilson, D. J., Mace, C. R. Fabrication of Three-dimensional Paper-based Microfluidic Devices for Immunoassays. J. Vis. Exp. (121), e55287, doi:10.3791/55287 (2017).

View Video